任 丹,陳 曦,李娟娟,馮 鎮(zhèn)*
(東北農(nóng)業(yè)大學(xué) 乳品科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江 哈爾濱 150030)
我國(guó)傳統(tǒng)發(fā)酵大豆食品資源豐富,主要有豆醬、豆豉、醬油和腐乳等[1]。許多大豆發(fā)酵食品多以傳統(tǒng)的方式進(jìn)行生產(chǎn),因而存在生產(chǎn)周期長(zhǎng)的問(wèn)題。過(guò)長(zhǎng)的成熟期會(huì)導(dǎo)致較高的生產(chǎn)成本。為了縮短傳統(tǒng)發(fā)酵食品的成熟周期,國(guó)內(nèi)外學(xué)者做了大量研究,主要途徑為提高成熟溫度、使用經(jīng)過(guò)修飾的發(fā)酵劑、添加輔助發(fā)酵劑或是直接添加蛋白酶,而在這些途徑中,使用蛋白酶來(lái)縮短發(fā)酵周期被認(rèn)為是最簡(jiǎn)單和行之有效的方法[2-5]。研究表明,對(duì)于具體的發(fā)酵食品而言,使用非固有發(fā)酵劑雖然可以達(dá)到促進(jìn)成熟的目的,但往往改變了產(chǎn)品的特征質(zhì)構(gòu)與風(fēng)味[6]。對(duì)于外源酶的使用也存在相同的問(wèn)題。因此,為了不改變傳統(tǒng)發(fā)酵食品的特征質(zhì)構(gòu)與風(fēng)味,研究者往往是從發(fā)酵食品中篩選具有良好發(fā)酵特性的固有發(fā)酵劑菌株或是利用來(lái)源于固有發(fā)酵劑菌株的酶,進(jìn)行發(fā)酵食品的促熟研究。發(fā)酵食品特征風(fēng)味的形成是一個(gè)復(fù)雜生物化學(xué)反應(yīng)的綜合結(jié)果,包括由發(fā)酵微生物導(dǎo)致的糖酵解、脂肪水解和蛋白水解。對(duì)于發(fā)酵食品的風(fēng)味和質(zhì)構(gòu)特性而言,蛋白水解無(wú)疑是最重要的生化過(guò)程[7]。因此,發(fā)酵食品成熟的實(shí)質(zhì)之一是參與發(fā)酵的微生物所分泌蛋白酶作用于蛋白質(zhì)的結(jié)果。微生物所分泌的蛋白酶水解食品基質(zhì)中的蛋白質(zhì)產(chǎn)生游離氨基酸和肽,同時(shí)賦予發(fā)酵食品特征的風(fēng)味和質(zhì)構(gòu)。因此,研究參與食品發(fā)酵微生物所分泌蛋白酶的酶學(xué)性質(zhì)對(duì)于微生物及其蛋白酶的應(yīng)用至關(guān)重要。
在前期工作中,從我國(guó)傳統(tǒng)發(fā)酵腐乳中篩選出一株可以水解大豆蛋白的細(xì)菌,本研究是在此基礎(chǔ)上對(duì)該菌進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定。就酶制劑應(yīng)用于傳統(tǒng)大豆發(fā)酵食品而言,由于純酶制劑的價(jià)格較高,因此限制了其的應(yīng)用[8]。而粗酶的價(jià)格相對(duì)低廉更利于其推廣應(yīng)用。因此,在本研究中對(duì)該菌蛋白酶粗酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了研究,目的是為通過(guò)酶法促進(jìn)大豆發(fā)酵食品的成熟奠定基礎(chǔ)。
菌株F1來(lái)源于東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院保藏。菌株的活化培養(yǎng)基為胰蛋白酶消化大豆肉湯(TSB)(Becton,Dickinson and Co.,Sparks,USA)培養(yǎng)基。菌株的產(chǎn)酶培養(yǎng)基為含6%(w/v)脫脂乳粉的胰蛋白酶消化大豆肉湯(TSB)培養(yǎng)基。其他生化試劑均為分析純。
Bia-Rad電泳儀:美國(guó)Bia-Rad有限公司;T6型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;TDL-40B型離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器廠;DK-98-11A型電熱恒溫水浴鍋:天津市泰斯特儀器有限公司;ZWY-2102C/1102C型搖床培養(yǎng)箱:上海智城分析儀器制造有限公司;BX51-P型顯微鏡:奧林巴斯。
1.3.1 形態(tài)結(jié)構(gòu)觀察及分子生物學(xué)鑒定
形態(tài)結(jié)構(gòu)觀察參照文獻(xiàn)[9]。將經(jīng)過(guò)活化的菌株F1接種于滅菌的TSB液體培養(yǎng)基中,30℃搖瓶發(fā)酵12h。試劑盒法提取細(xì)菌的總DNA,以總DNA為模板進(jìn)行PCR反應(yīng),擴(kuò)增細(xì)菌的16s rDNA序列,測(cè)定該序列并進(jìn)行同源性分析(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)。所用的引物為細(xì)菌通用引物[27f(5′-AGAGTTTGATC CTGGCTCAG-3′)和1512r(5′-ACGGCTACCTT GTTACGACT-3′)]。
1.3.2 粗酶液的制備及蛋白酶分子量的測(cè)定
將經(jīng)過(guò)活化的菌株F1接種于產(chǎn)酶培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),30℃培養(yǎng)3d。4℃、12000r/min離心10min,除去菌體得粗酶液,4℃保存?zhèn)溆谩5鞍酌阜肿恿康臏y(cè)定通過(guò)聚丙烯酰胺凝膠電泳的方法[10]。采用不連續(xù)系統(tǒng),5%濃縮膠,12%分離膠,電泳緩沖液為Tris甘氨酸緩沖溶液(pH 8.0),加樣液與載樣液等量混合,煮沸2min~3min,考馬斯亮蘭染色。將粗酶液與上樣緩沖溶液混合,在進(jìn)行電泳之前樣品不經(jīng)歷任何加熱處理。電泳后將凝膠浸沒(méi)于含有2.5%(v/v)Triton X-100的100mmol/L glycine-NaOH(pH 9.0)緩沖溶液中,緩慢搖動(dòng)30min以除去SDS。用100mmol/L glycine-NaOH緩沖溶液(pH 9.0)清洗凝膠3次,以除去Triton X-100。在40℃的條件下,將凝膠在含有1%(w/v)酪蛋白的100mmol/L glycine-NaOH緩沖溶液(pH 9.0)中放置40min。最終用考馬斯亮藍(lán)R-250對(duì)凝膠進(jìn)行染色。
1.3.3 溫度對(duì)蛋白酶活性和穩(wěn)定性的影響
溫度對(duì)蛋白酶活性的影響,在50mmol/L Tris-HCl的緩沖溶液(pH 7.0)中,分別在20℃、30℃、40℃、50℃、60℃和70℃時(shí)測(cè)定蛋白酶的活性,在進(jìn)行試驗(yàn)前將酶樣品和含有底物的50mmol/L Tris-HCl緩沖溶液(pH 7.0)培養(yǎng)到預(yù)定的溫度。對(duì)于蛋白酶熱穩(wěn)定性的研究,將酶樣品分別在20℃、30℃、40℃、50℃、60℃和70℃的條件下培養(yǎng)1h,然后在標(biāo)準(zhǔn)的條件下測(cè)定殘留的酶活力,未進(jìn)行熱處理的酶樣品作為空白。
1.3.4 pH值對(duì)蛋白酶活性和穩(wěn)定性的影響
在pH 5.0~13.0的范圍研究pH值對(duì)蛋白酶活性的影響,應(yīng)用濃度為50mmol/L檸檬酸鈉(pH 5.0)、磷酸鉀(pH 6.0~8.0)、Tris-HCl(pH 7.0~9.0)、硼酸鈉(pH 9.0~10.0)和甘氨酸-氫氧化鈉(pH 11.0~13.0)的緩沖溶液。pH值對(duì)蛋白酶穩(wěn)定性的影響,將蛋白酶在上述不同pH值的緩沖溶液中于30℃的條件下培養(yǎng)1h,在標(biāo)準(zhǔn)的條件下測(cè)定殘留的蛋白水解活力。
1.3.5 NaCl和乙醇對(duì)蛋白酶活性和穩(wěn)定性的影響
在NaCl濃度為0~15%(w/v)和乙醇濃度為0~8%vol的條件下研究NaCl和乙醇對(duì)酶活力的影響,在標(biāo)準(zhǔn)的條件下測(cè)定酶活力。NaCl和乙醇對(duì)蛋白酶穩(wěn)定性的影響,酶在30℃的條件下于上述不同濃度的乙醇和NaCl溶液中培養(yǎng)1h。在標(biāo)準(zhǔn)的條件下測(cè)定殘留的酶活力。未經(jīng)NaCl和乙醇處理的酶樣品作為空白。
1.3.6 金屬離子對(duì)蛋白酶活性的影響
10mmol/L MgCl2、CaCl2、KCl、ZnCl2、FeSO4和MnCl2被用來(lái)研究金屬離子對(duì)蛋白酶活力的影響。在進(jìn)行試驗(yàn)之前,酶的樣品與金屬鹽在30℃培養(yǎng)60min。在標(biāo)準(zhǔn)的條件下測(cè)定殘留的酶活性。未經(jīng)金屬鹽處理的酶樣品作為空白。
1.3.7 蛋白酶活力的測(cè)定
蛋白酶活力的測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)參照參考文獻(xiàn)[11],以酪蛋白為底物。
圖1 菌株F1水解大豆蛋白與菌落及菌體形態(tài)圖Fig.1 Hydrolyzed soy protein,colony and cell morphology of F1
從我國(guó)傳統(tǒng)的腐乳中篩選出一株對(duì)大豆蛋白有較強(qiáng)水解活性的細(xì)菌F1,在大豆蛋白瓊脂培養(yǎng)基中產(chǎn)生的水解現(xiàn)象見(jiàn)圖1A。菌株F1的菌落和菌體的形態(tài)學(xué)特征見(jiàn)圖1B和圖1C。菌株F1在TSB平板上菌落光滑、濕潤(rùn)、橙黃色、邊緣整齊。采用革蘭氏染色顯微鏡下觀察,細(xì)胞為球形、無(wú)芽孢、過(guò)氧化氫酶陰性、革蘭氏陽(yáng)性。菌株F1的16S rDNA測(cè)序結(jié)果見(jiàn)圖2,在Genebank中進(jìn)行序列的同源性比對(duì),與模式菌株Staphylococcus carnosusATCC 51365T(AB009934)的16S rDNA序列的同源性為99.7%,因此確定菌株F1為肉葡萄球菌(Staphylococcus carnosus)。肉葡萄球菌是凝固酶陰性球菌的一種常見(jiàn)菌株(Coagulase-negative cocci,CNC),這類細(xì)菌廣泛的存在于各種發(fā)酵食品中[12]。因CNC具有亞硝酸鹽和硝酸鹽還原酶活性,因此可以抑制脂質(zhì)氧化和食品的腐敗。CNC具有較強(qiáng)的蛋白水解作用,可以將食品中的蛋白質(zhì)水解為肽和游離氨基酸,而這些小分子物質(zhì)是許多發(fā)酵食品的重要風(fēng)味物質(zhì)或是風(fēng)味物質(zhì)的前體,同時(shí)賦予發(fā)酵食品特殊的質(zhì)構(gòu)和風(fēng)味[13]。因此這類細(xì)菌作為食品發(fā)酵劑而被廣泛應(yīng)用于發(fā)酵食品的生產(chǎn)。
圖2 菌株F1的16S rDNA序列Fig.2 16S rDNA sequence of strain F1
按實(shí)驗(yàn)方法中的方法進(jìn)行粗酶液的制備,以酪蛋白為底物在標(biāo)準(zhǔn)的條件下進(jìn)行蛋白酶活力的測(cè)定,粗酶液的蛋白水解活力為83.87U/mL。SDS-PAGE 顯示該蛋白酶的分子量約為45ku。用酪蛋白作底物,在電泳圖中出現(xiàn)一條透明的條帶,說(shuō)明該酶具有較強(qiáng)的蛋白酶活性。
圖3 蛋白酶分子量的測(cè)定Fig.3 Electrophoretic analysis of protease molecular weight
溫度對(duì)蛋白酶催化活性和穩(wěn)定性影響結(jié)果見(jiàn)圖4。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,蛋白酶在30℃~50℃時(shí)(相對(duì)酶活力>50%)表現(xiàn)出較高的催化活性,蛋白酶的最佳催化溫度為40℃,此時(shí)的酶活力為92U/mL。就酶的穩(wěn)定性而言,當(dāng)酶在不同溫度經(jīng)歷1h的處理時(shí),蛋白酶在20℃~50℃時(shí)表現(xiàn)出較高的酶活力(殘留蛋白酶活力>80%),而當(dāng)溫度為70℃時(shí)相對(duì)殘留酶活力僅為2%,因此該酶具有較低的耐熱性。多數(shù)發(fā)酵豆制品的發(fā)酵溫度為30℃,在本研究中的蛋白酶在30℃~50℃時(shí)顯示出較高的催化活力和穩(wěn)定性,因此,該蛋白酶適合于應(yīng)用通過(guò)提高發(fā)酵溫度或者是酶法生產(chǎn)發(fā)酵豆制品而促進(jìn)發(fā)酵豆制品的成熟。此外,該酶具有較低的耐熱性,可以通過(guò)較高的熱處理溫度使其失活,從而防止其在應(yīng)用過(guò)程中造成過(guò)度成熟。
圖4 溫度對(duì)酶活力和穩(wěn)定性的影響Fig.4 Effect of temperature on the activity and stability of the protease
pH值對(duì)蛋白酶活力和穩(wěn)定性的影響見(jiàn)圖5。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,蛋白酶在pH 7.0~11.0(相對(duì)酶活力>50%)表現(xiàn)出較高的催化活力,最佳催化pH值為10.0,此時(shí)的蛋白酶活力為133U/mL。就pH值的穩(wěn)定性而言,當(dāng)酶在不同pH值條件下經(jīng)歷1h的處理時(shí),在pH 7.0~11.0(殘留相對(duì)酶活力>58%),實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,該蛋白酶為堿性蛋白酶,并且在較寬的pH范圍內(nèi)表現(xiàn)出較強(qiáng)的催化活性和穩(wěn)定性。本研究結(jié)果表明,該蛋白酶對(duì)pH值表現(xiàn)出的催化活性和穩(wěn)定性的特點(diǎn)對(duì)于許多發(fā)酵大豆食品是非常重要的,因?yàn)槎鄶?shù)發(fā)酵大豆食品為堿性發(fā)酵食品,如kinema、Natto、Hawaijar、Thua nao、douche和sufu[14-16]。因此,就蛋白酶對(duì)pH值表現(xiàn)出的催化活性和穩(wěn)定性而言,該酶適合于應(yīng)用在大豆發(fā)酵食品中通過(guò)酶法或輔助手段進(jìn)行促熟。
圖5 pH值對(duì)酶活力和穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effect of pH value on the activity and stability of the protease
NaCl對(duì)蛋白酶穩(wěn)定性和活力的影響見(jiàn)圖6。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,當(dāng)NaCl的濃度為0~1%時(shí),蛋白酶的活力明顯增加。當(dāng)NaCl的濃度大于1%時(shí),隨著NaCl濃度的不斷增加酶活力明顯下降。當(dāng)NaCl的濃度為9%時(shí),蛋白酶的相對(duì)活力為66%,其蛋白酶的催化活力為33U/mL。就酶的穩(wěn)定性而言,當(dāng)NaCl的濃度小于9%時(shí),蛋白酶相對(duì)殘留活力大于48%。乙醇對(duì)蛋白酶穩(wěn)定性和活力的影響見(jiàn)圖7,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,該蛋白酶對(duì)乙醇表現(xiàn)出較高的活力和穩(wěn)定性,當(dāng)乙醇的濃度為8%vol時(shí),蛋白酶的相對(duì)活力為76%。就酶的穩(wěn)定性而言,當(dāng)乙醇的濃度為8%vol時(shí),其蛋白酶相對(duì)殘留活力仍為70%。研究結(jié)果表明,該酶對(duì)乙醇具有較強(qiáng)的耐受性。
圖6 NaCl對(duì)酶活力和穩(wěn)定性的影響Fig.6 Effect of NaCl on the activity and stability of the protease
在發(fā)酵食品的成熟過(guò)程中,微生物所分泌的蛋白酶水解發(fā)酵基質(zhì)中的蛋白質(zhì)產(chǎn)生肽和氨基酸,但由微生物產(chǎn)生的蛋白酶可能會(huì)被一些鹽或者是添加劑所抑制,因此研究酶對(duì)具體的添加劑的耐受性是十分必要的[17]。該蛋白酶對(duì)NaCl和乙醇表現(xiàn)出較強(qiáng)的耐受性,這是非常重要的特性對(duì)于在發(fā)酵豆制品中的應(yīng)用,如sufu、miso、koji和soy sauce等,為了獲得較好的風(fēng)味和抑制一些治病菌的生長(zhǎng)和繁殖,這些大豆發(fā)酵食品中往往在配料中加入較高濃度的NaCl和乙醇[18]。
圖7 乙醇對(duì)酶活力和穩(wěn)定性的影響Fig.7 Effect of ethanol on the activity and stability of the protease
幾種金屬離子對(duì)蛋白酶活性的影響見(jiàn)附表。在實(shí)驗(yàn)考查的6種金屬離子中Mg2+、Ca2+、K+、Fe2+和Zn2+增強(qiáng)了蛋白酶的催化活性,而Mn2+減弱了蛋白酶的催化活性。許多金屬離子可以影響蛋白酶的催化活性,超過(guò)75%的酶需要金屬離子作為激活劑才能表現(xiàn)出催化活力[19]。本實(shí)驗(yàn)的研究結(jié)果為該蛋白酶在大豆發(fā)酵食品工業(yè)中的應(yīng)用過(guò)程中通過(guò)金屬離子來(lái)調(diào)節(jié)酶的催化活力奠定了基礎(chǔ)。
附表 金屬離子對(duì)蛋白酶活力的影響Attached table Effects of metal ions on the activity of the protease
本實(shí)驗(yàn)對(duì)篩選出的一株對(duì)大豆蛋白具有良好水解能力的細(xì)菌進(jìn)行了鑒定并對(duì)其粗酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了研究。16S rDNA測(cè)序結(jié)果表明該菌與模式菌株Staphylococcus carnosusATCC 51365T(AB009934)的16S rDNA序列的同源性為99.7%,因此確定菌株F1為肉葡萄球菌。電泳法測(cè)得菌株F1產(chǎn)蛋白酶的分子量約為45ku。菌株F1產(chǎn)蛋白酶的最適反應(yīng)溫度和pH值分別為40℃和10.0,在20℃~50℃和pH 7.0~11.0 范圍內(nèi)較穩(wěn)定。Ca2+、Mg2+、K+、Fe2+和Zn2+對(duì)粗酶的催化活性有增強(qiáng)作用。粗酶對(duì)較高濃度的NaCl和乙醇表現(xiàn)出較好的穩(wěn)定性。
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