張學(xué)乾,杜 蕊,楊慈清,2,陳樹林,趙慧英,趙善廷*
(1.西北農(nóng)林科技大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,陜西 楊凌 712100;2.新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院生命科學(xué)技術(shù)系,河南 新鄉(xiāng) 453003)
在哺乳類動物中,成體神經(jīng)發(fā)生主要局限于海馬結(jié)構(gòu)中的齒狀回和側(cè)腦室壁的亞室?guī)1-3],其中海馬作為腦中的一個重要結(jié)構(gòu),不僅在學(xué)習(xí)、記憶和認(rèn)知等過程中發(fā)揮著重要作用,而且還控制著動物的食欲及覓食行為[4],海馬損傷會導(dǎo)致一些神經(jīng)系統(tǒng)疾病的發(fā)生。海馬通過成體神經(jīng)發(fā)生源源不斷地產(chǎn)生新的神經(jīng)元[5-6],這些新生神經(jīng)元會融入到原有的神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)中[7-8],參與這些功能的行使,因此海馬功能的正常運轉(zhuǎn)與成體神經(jīng)發(fā)生密不可分[9-10]。豬作為一種重要的家畜,如果能夠控制其食欲和飲食,可降低其飼養(yǎng)難度,而想要達(dá)到這一點,需要對豬的海馬結(jié)構(gòu)進(jìn)行充分了解,而且對其功能行使的深入研究有助于一些神經(jīng)系統(tǒng)疾病的防治。但到目前為止,成體神經(jīng)發(fā)生的研究主要以小鼠、大鼠及鳥類為動物模型,而對大型家畜的研究卻很少,豬的成體神經(jīng)發(fā)生的研究尚未見報道。以前,對于成體神經(jīng)發(fā)生的研究主要靠一些標(biāo)記增殖細(xì)胞的技術(shù)來完成,其中以 BrdU(5-bromodeoxyuridine,5-溴脫氧尿嘧啶核苷)標(biāo)記技術(shù)應(yīng)用最為廣泛[11-13]。近年來雙皮質(zhì)素(doublecortin,DCX)作為一種新的未成熟神經(jīng)元的特異標(biāo)記物被廣泛應(yīng)用于成體神經(jīng)發(fā)生的研究,DCX是一種微管相關(guān)蛋白,與神經(jīng)元的遷移密切相關(guān)[14-15],在成體神經(jīng)發(fā)生期間,它隨著神經(jīng)母細(xì)胞的增殖開始表達(dá),在第二周達(dá)到頂峰,并隨著神經(jīng)元的成熟逐漸消失[16]。大量研究證明DCX可以作為一種可靠的標(biāo)記物來研究動物的成體神經(jīng)發(fā)生[17-18]。本課題對成年豬和小鼠海馬的結(jié)構(gòu)以及神經(jīng)發(fā)生的特點進(jìn)行對比分析,在對豬海馬結(jié)構(gòu)進(jìn)行分區(qū)、分層和細(xì)胞構(gòu)筑方面研究的基礎(chǔ)上,進(jìn)而對其成體神經(jīng)發(fā)生進(jìn)行初步觀察和研究,為大型哺乳動物海馬結(jié)構(gòu)的形態(tài)學(xué)研究,以及齒狀回中成體神經(jīng)發(fā)生的研究提供形態(tài)學(xué)方面的依據(jù),并為畜牧獸醫(yī)的臨床應(yīng)用提供參考。
1.1.1 試驗用動物 成年雄性昆白小鼠8只,體重38g左右,年齡3個月,購自西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院動物中心;成年雄性豬3頭,種系為光明豬配套系,6月齡左右,購自陜西楊凌本香集團(tuán)。
1.1.2 試劑與主要儀器 BrdU(Sigma),大鼠抗BrdU IgG(Serotec,Düsseldorf,Germany),羊 抗DCX IgG(Santa Cruz,heidelberg,Germany),小鼠抗NeuN IgG(Chemicon,Hofheim,Germany),兔抗GFAP IgG(Boehringer,Mannheim,Germany),免疫組化試劑盒、DAB試劑盒(福州邁新生物技術(shù)有限公司),驢抗羊568、羊抗大鼠488(Chemicon,Hofheim、),羊抗兔488(Jackson,Immunoresearch,Dianova),DAPI(Sigma);VT 1000S震蕩切片機(Leica)。
1.2.1 BrdU注射與動物取材 取試驗小鼠3只按50mg/kg進(jìn)行腹腔內(nèi)注射BrdU,每隔12h注射1次,連續(xù)注射3d,最后1次注射BrdU 24h后取材。豬不做BrdU注射處理,所得切片進(jìn)行DCX、NeuN和GFAP染色觀察。
3只經(jīng)BrdU注射處理和5只不做任何處理的小鼠,用40g/L多聚甲醛全身灌注的方法取全腦。3頭健康成年豬,經(jīng)放血處死后,斷頸取頭,通過頸動脈進(jìn)行頭部40g/L多聚甲醛固定然后立即開顱取腦,切取腦兩側(cè)海馬。取兩種動物海馬中部部分,垂直于海馬縱軸進(jìn)行震蕩切片,切片厚度50μm。所得小鼠BrdU標(biāo)記的海馬切片用于BrdU/DCX熒光雙標(biāo)記,對于沒有經(jīng)過處理的小鼠與豬的海馬切片,通過染色后對其成體神經(jīng)發(fā)生和結(jié)構(gòu)進(jìn)行對比分析。
1.2.2 免疫組化與免疫熒光染色(漂浮染色)
1.2.2.1 小鼠海馬的BrdU/DCX熒光雙標(biāo)記 ①取BrdU標(biāo)記的小鼠海馬切片,放入2mol/L濃度的HCl中,37℃孵育30min,打開DNA雙鏈,暴露抗原BrdU;②用0.1mol/L硼酸緩沖液沖洗,中和酸性,然后用0.1mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS)洗去殘留硼酸,加入一抗羊抗DCX(1∶800),4℃下?lián)u床孵育12h;③PBS充分洗后加入一抗大鼠抗BrdU(1∶800),繼續(xù)4℃下孵育12h;④PBS洗,加入二抗驢抗羊568(1∶300)室溫孵育4h;⑤PBS洗,然后再加入二抗羊抗大鼠488(1∶300),室溫孵育4 h;⑥PBS洗后裱片,熒光保護(hù)劑封片。
1.2.2.2 豬海馬DCX/DAPI、GFAP/DAPI熒光雙標(biāo)記 ①取豬海馬切片,加入一抗羊抗DCX(1∶800)(或兔抗GFAP,1∶800),4℃搖床孵育12h;②用PBS洗,加入熒光二抗驢抗羊568(1∶300)(羊抗兔488,1∶300),4℃搖床孵育12h;③PBS洗后用DAPI(1∶500)復(fù)染核15min,PBS洗去殘留 DAPI;④裱片,熒光保護(hù)劑封片。
1.2.2.3 豬和小鼠DCX-DAB、NeuN-DAB的免疫組織化學(xué)染色 ①取不做處理小鼠和豬的切片,放入30mL/L H2O2中孵育10min,封閉切片內(nèi)源性過氧化物酶活性;②PBS洗后加入一抗羊抗DCX(1∶800)(或小鼠抗 NeuN,1∶800),4℃下?lián)u床孵育12h;③然后PBS洗去殘留一抗,加入生物素偶聯(lián)的二抗兔抗羊(或羊抗小鼠),4℃搖床孵育12h;④PB洗后,加入鏈霉菌抗生物素蛋白結(jié)合的過氧化物酶室溫?fù)u床孵育1h;⑤PB洗后,以DAB試劑盒顯色;⑥洗去殘留顯色液后,硫堇復(fù)染10min,然后用750mL/L酒精洗去浮色;⑦脫水透明后中性樹膠封片。
1.2.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析 對5只不做任何處理小鼠與3頭豬海馬進(jìn)行切片后,每只動物各取10張切片,從單位齒狀回長度新生神經(jīng)元個數(shù)、新生神經(jīng)元胞體面積及其相對樹突長度(顆粒細(xì)胞層下層至海馬裂的距離)三個方面進(jìn)行統(tǒng)計分析。用Photoshop CS3軟件處理圖片,借助Images J,GraphPad Prism 5軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析。
BrdU作為一種核苷酸類似物可以整合到新生細(xì)胞的DNA鏈中,BrdU在體內(nèi)代謝時間大約只有2h,因此每一次BrdU注射均只標(biāo)記在BrdU注射后2h內(nèi)新生的細(xì)胞,然后通過抗BrdU抗體免疫組化技術(shù)就可顯示被標(biāo)記的這些新生細(xì)胞。
以BrdU標(biāo)記的小鼠切片進(jìn)行染色,所得結(jié)果如圖1所示,圖1A中箭頭所指的綠色細(xì)胞為BrdU標(biāo)記的新生的細(xì)胞,圖1B中箭頭所指的紅色細(xì)胞為DCX標(biāo)記的未成熟的神經(jīng)元,圖1C中上方箭頭所指的黃色細(xì)胞為2種標(biāo)記物同時標(biāo)記的細(xì)胞,表示這個新生的細(xì)胞向神經(jīng)元轉(zhuǎn)化,而下方箭頭所指的綠色細(xì)胞表示沒有向神經(jīng)元轉(zhuǎn)化的新生細(xì)胞,這證明DCX標(biāo)記方法可以把向神經(jīng)元轉(zhuǎn)化的新生細(xì)胞標(biāo)記上,而新生神經(jīng)元的增殖情況可以直接反映成體神經(jīng)發(fā)生的情況,因此,DCX標(biāo)記技術(shù)可以作為一種研究成體神經(jīng)發(fā)生的手段。
DCX標(biāo)記顯示成年小鼠海馬顆粒細(xì)胞層下層存在著神經(jīng)發(fā)生,源源不斷的產(chǎn)生新的神經(jīng)元,這些新生神經(jīng)元分布相對比較松散,軸突、樹突及其分支清晰可見,延伸方向明確,新生的神經(jīng)元通過樹突及軸突的延伸到固定位置建立起新的突觸連接,借此整合到已存在的神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)體系中并行使一定的功能,具體是新生神經(jīng)元的樹突穿過顆粒細(xì)胞層延伸到分子層終止于海馬裂,而軸突通過門區(qū)與CA3區(qū)內(nèi)側(cè)的錐體細(xì)胞建立起突觸聯(lián)系(圖2)。
對比分析兩種動物所染切片,小鼠海馬齒狀回呈圓滑的C型,而豬的呈現(xiàn)有2個突起的不規(guī)則C型,在形狀上有一定的差異,和小鼠一樣,豬海馬的神經(jīng)發(fā)生同樣位于齒狀回顆粒細(xì)胞層下層,如圖2和圖3。從單位齒狀回長度新生神經(jīng)元個數(shù)、新生神經(jīng)元胞體面積及其相對樹突長度(小鼠與豬新生神經(jīng)元胞體起始于顆粒細(xì)胞層下層,樹突伸入齒狀回分子層,最長終止于海馬裂,因此以顆粒細(xì)胞層下層至海馬裂的距離間接反映新生神經(jīng)元樹突長度)三個方面,對兩種哺乳動物的神經(jīng)發(fā)生的情況進(jìn)行對比分析,三方面差異均顯著,如圖4。圖4A顯示豬海馬齒狀回100μm長度內(nèi)平均有新生神經(jīng)元18.3個,而小鼠的為10.3個;圖4B顯示豬新生神經(jīng)元胞體平均面積為48.9μm2,小鼠的為86.9 μm2;圖4C顯示豬新生神經(jīng)元相對樹突長度為451.4μm,小鼠的為275.6μm。
圖1 成年小鼠海馬齒狀回BrdU/DCX免疫熒光雙標(biāo)Fig.1 BrdU/DCX immunofluorescence double labeling of the adult mouse dentate gyrus
圖2 成年小鼠海馬DCX-DAB免疫組織化學(xué)染色Fig.2 DCX-DAB immunohistochemical staining of adult mouse hippocampus
圖3 成年豬海馬DCX-DAB免疫組織化學(xué)染色Fig.3 DCX-DAB immunohistochemical staining of adult pig hippocampus
圖4 小鼠與豬齒狀回部位新生神經(jīng)元三種參數(shù)對比示意圖Fig.4 Three parameter comparison diagrams of dentate gyrus region's newborn neurons between mouse and pig
同小鼠一樣,豬海馬大體上亦由齒狀回和海馬本部兩部分組成,二者均含有一個明顯的細(xì)胞層,小“c”型的齒狀回位于海馬最內(nèi)側(cè),大“C”型的海馬本部包在齒狀回外側(cè)。海馬本部從腦室面至海馬裂依次為室床(alveus)、始層(stratum oriens)、錐體細(xì)胞層 (stratum pyramidale)、輻 射 層 (stratum radiatum)和腔隙分子層(stratum lacunosum-molecu-lare),如圖5F。海馬本部主要細(xì)胞為錐體細(xì)胞,構(gòu)成錐體細(xì)胞層,大致分為CA1區(qū)和CA3區(qū),CA1、CA3區(qū)的錐體細(xì)胞特點鮮明,細(xì)胞胞體比較密集地排成一條帶,胞體呈錐形或梭形,突起極性一致,頂部朝向分子層發(fā)出一個粗大的頂樹突,如圖5A,5B,5C;海馬齒狀回為三層結(jié)構(gòu),由海馬裂向內(nèi)依次為分子層(molecular layer)、顆粒細(xì)胞層(granule cell layer)和多形層(polymorphic cell layer)。分子層中主要含有來自顆粒細(xì)胞的樹突及分支,分子層細(xì)胞很少,主要是一些散在的中間神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞;顆粒層主要由大量密集排列的顆粒細(xì)胞胞體構(gòu)成,胞體大多呈卵形,顆粒層靠近門區(qū)一側(cè)的細(xì)胞排列較緊密而整齊,如圖5G,為成體神經(jīng)干細(xì)胞的存在位置,是成體神經(jīng)發(fā)生的起始位點,如圖5H;多行層為海馬門區(qū)靠近齒狀回的區(qū)域,其內(nèi)分布著大量的膠質(zhì)細(xì)胞,大小不等,這些膠質(zhì)細(xì)胞突起較短且無極性,發(fā)出許多微小分支,整體上呈絨球狀,如圖5F。
圖5 豬海馬結(jié)構(gòu)的免疫組織化學(xué)染色圖片F(xiàn)ig.5 Immunohistochemical pictures of pig’s hippocampal formation
BrdU標(biāo)記技術(shù)被廣泛用于成體神經(jīng)發(fā)生的研究,但這個技術(shù)存在著一些缺陷[19]:BrdU濃度會隨著細(xì)胞的連續(xù)分裂被稀釋,標(biāo)記效果就會下降,而且高劑量的BrdU會對組織產(chǎn)生毒性,過低的劑量又會導(dǎo)致不完全標(biāo)記,最重要的是BrdU標(biāo)記技術(shù)只能通過注射的方法對活體內(nèi)的增殖細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記,而不能進(jìn)行體外標(biāo)記,而且BrdU價格昂貴,因此以此種技術(shù)來研究大型動物的成體神經(jīng)發(fā)生就顯得不太現(xiàn)實。
因此,本研究采用DCX標(biāo)記技術(shù)來對比分析小鼠與豬成體神經(jīng)發(fā)生的特點,突顯豬成體神經(jīng)發(fā)生的與小鼠相比有哪些不同。DCX標(biāo)記技術(shù)具有很多優(yōu)點:DCX作為一種新生神經(jīng)元的標(biāo)記物它既不在神經(jīng)干細(xì)胞、膠質(zhì)細(xì)胞中表達(dá)也不在成熟的神經(jīng)元中表達(dá),可以從新生神經(jīng)元產(chǎn)生到成熟之前,整個時期都能瞬間地標(biāo)記這些新生神經(jīng)元;在幼體中,DCX表達(dá)只限于發(fā)育中樞神經(jīng)系統(tǒng)中所有遷移中的神經(jīng)元前體細(xì)胞,在成體,DCX表達(dá)只限于連續(xù)進(jìn)行神經(jīng)發(fā)生的區(qū)域,在其他區(qū)域很少表達(dá),具有區(qū)域特異性;DCX表達(dá)細(xì)胞的數(shù)量可以表示齒狀回中細(xì)胞增殖水平,而且,在外界因子的刺激下,仍可以通過DCX表達(dá)細(xì)胞的增加或減少來體現(xiàn)細(xì)胞增殖水平,因此DCX可被用于分析特定區(qū)域,以及在正常和病理條件下的神經(jīng)發(fā)生的水平;并且它不需要預(yù)先對活體內(nèi)的增殖細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記,可以直接在體外對DCX抗原進(jìn)行定位、定量標(biāo)記[20]。此外,DCX存在于細(xì)胞質(zhì)中,通過免疫組化染色可以把細(xì)胞胞體顯現(xiàn)出來,進(jìn)而可以對胞體形態(tài)和面積等進(jìn)行分析。因此,DCX標(biāo)記技術(shù)可以作為一種研究大型動物成體神經(jīng)發(fā)生的有效手段。
本試驗通過免疫組化染色和多種雙重免疫熒光標(biāo)記所得結(jié)果表明,在成體豬齒狀回顆粒細(xì)胞層下層也存在著DCX陽性細(xì)胞,即進(jìn)行著成體神經(jīng)發(fā)生。相對小鼠來說,豬海馬齒狀回顆粒細(xì)胞層下層單位長度內(nèi)的新生神經(jīng)元的數(shù)量以及其相對樹突長度都要大于小鼠,但產(chǎn)生的新生神經(jīng)元的胞體體積要明顯小于小鼠,這意味著豬海馬可以在相同的物質(zhì)能量條件下可以產(chǎn)生更多的神經(jīng)元,而更長的樹突意味著這些新生的神經(jīng)元可以與其他成熟的神經(jīng)元建立起更多的突觸聯(lián)系,以上都說明豬海馬部位的成體神經(jīng)發(fā)生的活躍程度要明顯高于小鼠,這都反映了豬腦的發(fā)達(dá)程度要高于小鼠,腦生理活動要比小鼠復(fù)雜。另外,通過 NeuN-DAB和 GFAP/DAPI的染色表明,豬海馬的結(jié)構(gòu)、分層以及細(xì)胞構(gòu)筑與小鼠的大致相同,只是在各個分層的形狀上有所差別,這說明海馬結(jié)構(gòu)在進(jìn)化過程中的保守性,以及哺乳動物在進(jìn)化過程的同源性。
本文主要通過免疫組織化學(xué)的方法,對比分析小鼠與豬海馬成體神經(jīng)發(fā)生的異同,并對成年豬海馬結(jié)構(gòu)的分區(qū)、分層以及細(xì)胞構(gòu)筑進(jìn)行了組織學(xué)水平的描述和定義,揭示大型動物豬海馬結(jié)構(gòu)及其成體神經(jīng)發(fā)生的特點,而關(guān)于豬海馬的主要纖維成分、齒狀回的內(nèi)部纖維聯(lián)系、以及齒狀回與外部的纖維聯(lián)系等,還需進(jìn)一步探索。
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