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      豬水皰疹病診斷技術的研究進展

      2012-08-06 01:23:12湯德元羅險峰曾智勇李春燕
      豬業(yè)科學 2012年8期
      關鍵詞:補體水皰懸液

      王 鳳,湯德元*,羅險峰,曾智勇,馬 萍,李春燕

      (1.貴州大學動物科學學院,貴州 貴陽 550025;2.貴州省動物疫病預防控制中心,貴州 貴陽 550008)

      豬水皰疹?。╒ES)是由豬水皰疹病毒(SESV)引起的豬的一種高度傳染性的急性疾病,其特征是在唇、齒齦、舌、腭、鼻鏡及四肢的蹄踵和趾間發(fā)生水皰性炎癥,臨床上很難與豬口蹄疫、豬水皰病和豬水皰性口炎相區(qū)別。本病最早(1932年)發(fā)現(xiàn)于美國加利福尼亞州,此后每年都有發(fā)生。1953年后蔓延至美國其他各州,42個以上的州經(jīng)常發(fā)生。隨后由于立法禁止以未煮熟的泔水喂豬,并對發(fā)病豬場采取屠殺對策,疫情明顯下降。最后一次暴發(fā)于1956年,美國官方于1959年宣布在全國范圍內(nèi)消滅了本病。1973年由海獅中分離到一株杯狀病毒,其特性與水皰疹病毒相同,稱為圣米吉爾海獅病毒(SMSV),將該病毒接種給豬,可引起典型的水皰疹病變。人們認為,SMSV和SESV實際上是同一種病毒。至少從5種水生動物和2種陸生動物體內(nèi)檢出了SMSV抗體,說明SESV雖已從家養(yǎng)豬群中清除,但野生的陸生或水生動物中仍然可能存在。目前為止我國還未發(fā)現(xiàn)該病的流行,但隨著我國與其他各國貿(mào)易往來的加大,以及我國廣闊的海洋動物資源的開發(fā)利用,該病的潛在威脅應引起足夠的重視,因此,本文綜述了豬水皰疹病診斷技術的研究進展,以期為豬水皰疹病的預防奠定基礎。

      近年來,隨著生物技術的迅速發(fā)展和儀器設備的不斷更新?lián)Q代,VES的檢測技術也得到了空前的發(fā)展。已經(jīng)建立了許多檢測方法,現(xiàn)將豬水皰疹病診斷技術的研究進展綜述如下:

      1 豬水皰疹病的臨床診斷

      豬感染本病毒12~48 h后,體溫升高(39.5~40.5 ℃),持續(xù)高熱24~72 h,病豬精神不振,食欲下降,不愛活動,數(shù)天后在鼻鏡、唇、齒齦、舌、口腔、乳房、背部、腹部、蹄冠、蹄踵和趾間等部位出現(xiàn)紅點狀成硬塊的小水皰,初期水皰外觀蒼白、隆起,直徑5~30 mm,隆起高度約l0~20 mm。這種水皰類似燒燙傷或真皮過度摩擦所形成的水皰,泡內(nèi)充滿透明或灰白色漿液性液體,內(nèi)含有大量病毒,有的水皰可融合,2 d后水皰破潰,皮膚糜爛、潰瘍,形成褐色干痂。硬塊部位皮膚變薄,一搓即破,露出鮮紅嫩肉(組織)。隨后體溫下降,初期水皰破裂,暴露出夾雜有鮮紅、蒼白和黃色纖維性滲出或壞死的真皮糜爛面,漸漸干涸形成褐色干痂,通常 5~7 d內(nèi)愈合,干痂脫落,遺留輕微的疤痕,同時體溫恢復正常,疼痛、腫脹隨之減輕,動物趨于恢復。單純感染本病時,病豬可以迅速康復,無其他后遺癥。若有化膿性繼發(fā)感染時,病期可長達1~3個月, 嚴重時可造成病豬蹄殼脫落,且?guī)в絮诵邪Y狀,不能行走,起立困難,驅(qū)趕時嚎叫。新舊蹄殼替換后,可出現(xiàn)一條暗棕色或黑色的替換線,據(jù)此,可做出SVEV感染的初診。該病病程較短,一般病程為l周左右,口部病變愈合較快,但蹄部受環(huán)境影響可能繼發(fā)細菌感染而引起持續(xù)幾周的跛行。如果整個豬群都受到感染,有時可持續(xù)幾星期到幾個月。成年豬死亡率很低,但哺乳仔豬死亡率升高。據(jù)報道,乳豬的死亡是由于鼻孔中形成的水皰窒息所致,或者由于母豬不泌乳而餓死或并發(fā)嚴重的腹瀉。

      2 豬水皰疹病的病理解剖診斷

      發(fā)病初期,病豬皮膚和黏膜出現(xiàn)小面積變白并且隆起的水皰,隨著水皰的形成而擴散增大,水皰破裂部位發(fā)紅、潰瘍、糜爛。高出皮膚的水皰,充滿透明液體,皮下組織充血、水腫,有時出血。在四肢的蹄部趾間和蹄冠及在嘴筒的鼻鏡處出現(xiàn)黃豆般大的小瘤,其內(nèi)充滿一些較澄清的液體,水皰破裂后患處即呈輕度潰瘍。扁桃腺是最易受SVEV侵襲的器官,解剖可見扁桃腺呈暗紅色腫脹。同時可見胸腹部皮膚發(fā)紺,胸腹腔和心包積液,并含有少量纖維蛋白。心臟軟而蒼白,心肌可見明顯心肌炎,心肌充血、水腫,心肌纖維變性、壞死以及淋巴細胞和巨噬細胞浸潤,灶性病變可見白堊中心,在右心室外膜最為多見,伸長到心肌的不同深度。壞死心肌有無機鹽沉著,形成鈣化。心膜層的滲出液中有嗜酸性細胞浸潤。肝臟和肺臟充血,輕度腫脹。脾褪色,輕度腦炎,可見點狀神經(jīng)元變性區(qū),腦膜輕度充血。局部淋巴結(jié)充血、水腫,大量淋巴細胞變性、壞死。水皰液、水皰皮和淋巴結(jié)中含有大量的病毒,有時血液中也可檢測到少量病毒。

      3 豬水皰疹病的的實驗室診斷

      通過常規(guī)診斷方法可初步診斷本病,但要確診本病主要依靠實驗室診斷。常用的實驗室診斷方法有:病原學診斷、中和試驗、酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)、補體結(jié)合試驗、免疫熒光試驗等。

      3.1 豬水皰疹病的病原學診斷

      3.1.1 病料采集

      水皰液、未破裂的水皰上皮或破裂的新鮮上皮是理想的病毒分離材料。無菌采取患豬水皰液或剛破潰的水皰皮,將水皰皮研磨,加入抗生素液,用PBS作5~10倍稀釋,4 ℃浸泡過夜,或置室溫4 h,離心除沉淀物,上清即為待檢病毒液。

      3.1.2 病毒分離

      取0.5 mL處理好的病毒懸液上清接種于豬源細胞或Vero猴腎細胞系單層細胞,置37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱,每間隔20 min輕輕振搖1 次,接種1 h后輕輕吸去接種液體后,加入5 mL細胞維持液,繼續(xù)培養(yǎng)并逐日觀察是否出現(xiàn)細胞病變,SVEV導致的典型細胞病變(CPE)表現(xiàn)為細胞圓縮、溶解和細胞單層完全破壞。若5~7 d未出現(xiàn)細胞病變,盲傳至少3代方可判為陰性[1]。

      3.1.3 電鏡觀察

      一般來說,電鏡法可以有效地做出病原的診斷,可以通過電鏡來觀察病毒的結(jié)構(gòu)、形態(tài)特征及立體構(gòu)型等特點。如將感染豬口腔黏膜細胞培養(yǎng)物制成超薄切片在電鏡下觀察,則可從平面上觀察到病毒的內(nèi)部結(jié)構(gòu),形態(tài)大小,復制方式等。采集病變部位材料做電鏡檢查,對區(qū)別豬水皰疹病與其他病毒引起的疾病是可行的。用采集的病料或培養(yǎng)物按常規(guī)方法初提純,在電鏡下觀察到嵌杯樣病毒典型粒子形態(tài),作為病原學診斷的參考。

      該法最為準確、可靠,但由于費時費力,需要昂貴的電鏡設備,限制其廣泛使用。

      3.2 豬水皰疹病的血清學診斷

      3.2.1 病毒中和試驗

      病毒中和試驗(VNT) 只適用于檢查已知特異性病毒抗原或抗體,因為杯狀樣病毒型多,型間又很少有交叉反應,因此中和試驗應用較少。VNT在平底微量組織培養(yǎng)板中進行,用滅活血清樣品、l 000TCID50(半數(shù)組織培養(yǎng)感染量)的新澤西型(NJ)或印第安型(IN)VES病毒和預先制備Vero單層細胞懸液檢測未中和的病毒。試驗程序:

      1)病毒:NJ或IN型VES病毒于Vero單層細胞單層上生長,并于液氮或-70 ℃保存。

      2)被檢樣品:在試驗前,血清于56 ℃滅活30 min,陽性和陰性標準對照血清用同樣的方法處理。

      3)病毒中和:從l∶4開始,將血清在平板上以2倍橫向連續(xù)稀釋,每份血清用2排孔,每孔加入相同體積的大約含l 000TCID5025μL的NJ或IN型VES病毒懸液,37 ℃孵育60 min進行中和,隨后,向長成單層的微量培養(yǎng)板上每孔加進50μL混合物,或?qū)⒑醒澹《净旌衔锖蚻50 μL Vero細胞懸液同時加到各孔內(nèi),用合適的蓋子蓋緊,于5%CO2下37 ℃培養(yǎng)48~72 h,或用膠帶封板在普通條件下培養(yǎng)(實驗已證明1000TCID50的病毒滴度可以減少非特異性反應而維持較高的試驗敏感性)。

      4)結(jié)果判定:沒有出現(xiàn)CPE的孔認為是被保護。當l 000TCID50的值在750~1330TCID50之間,而陽性和陰性標準血清的滴度在其平均值的2倍之內(nèi)時,用Spearmann-Karber方法計算終點滴度。每份血清100%的中和滴度以logl0表示。血清滴度值等于或大于1/32時,即判為VES陽性。

      3.2.2 酶聯(lián)免疫吸附試驗

      酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)具有快速、可靠、靈敏度高的優(yōu)點,不受補體和抗補體因子的影響而廣泛使用[2]。液相阻斷ELISA(LP-ELISA)是VES病毒抗體檢測和定量的首選方法。建議以病毒糖蛋白作為抗原,因其無感染性,檢測中和抗體、假陽性比VN試驗要低。試驗程序:

      1)包被:用pH9.6的碳酸鹽/碳酸氫鹽緩沖液將兔抗血清或正常兔血清作適當稀釋[3-4]后包被ELISA板,37 ℃孵育l h或4 ℃過夜。之后,用磷酸鹽緩沖液水(PBS)洗板1次和l%的卵白蛋白(用PBS稀釋)室溫下封閉1 h。該板可直接使用或洗3次以后保存在-20 ℃?zhèn)溆谩?/p>

      2)液相:從l∶4開始,將每份待檢血清在U型微量滴定板中2倍連續(xù)稀釋,每個稀釋度作雙份,將等體積的VES病毒NJ或IN糖蛋白稀釋液加到每個孔中,37 ℃孵育1 h,然后將50μL混合物轉(zhuǎn)移到包被的ELISA板中,置旋轉(zhuǎn)振蕩器上37 ℃反應30 min。

      3)特異性抗體:用含0.05%吐溫-20、1%卵白蛋白、2%正常兔血清及2%正常牛血清(PBSTB)將抗VES病毒NJ和IN血清型的單價或多價豚鼠抗血清作適當稀釋,分別加到相應的包被兔血清孔內(nèi),置旋轉(zhuǎn)振蕩器上37 ℃反應30 min。

      4)酶結(jié)合物:將過氧化物酶/兔或山羊抗豚鼠IgG結(jié)合物用PBSTB作適當稀釋后加入各孔,置旋轉(zhuǎn)振蕩器上37 ℃反應30 min。

      5)底物:每孔加H2O2活化的底物,在室溫下反應l5 min,隨后加入硫酸終止反應,用酶標儀測光吸收值。整個試驗均使用50μL試劑,每步之間反應板均用含0.05%吐溫20的PBS洗5次。所使用的試劑均做對照。

      6)結(jié)果判定:按照Spearmann-Karber方法,以陰性血清對照降到50%時的log10表示50%終點滴度,滴度等于或大于1/20時判為陽性。

      3.2.3 補體結(jié)合試驗

      ELISA比補體結(jié)合試驗(CF)敏感,不受前補體和抗補體因子的影響。當沒有ELISA試劑時,可用CF試驗進行診斷。試驗程序:

      1)抗血清:將豚鼠VES病毒抗NJ型的單價抗血清和豚鼠抗IN型VES病毒的多價抗血清,用巴比妥緩沖液(VB)稀釋成含2.5 CFU50(50%補體結(jié)合單位)的稀釋物,同相應的病毒作用后,并將其加到微量板相應孔內(nèi)。這些抗血清為ELISA中使用的特異性抗體血清。

      2)待檢樣品:將待測樣品的抗原懸液加入血清孔中,抗原懸液的制備同IS-ELISA。

      3)補體:將4 CHU50(50%補體溶血單位)加到上述含血清和抗原的各孔內(nèi)(試驗中也可選用7.5、10及20 CHU50)??寡?、待檢樣品和補體的混合物于37 ℃孵育30 min。

      4)溶血系統(tǒng):用10 HU50(50%溶血單位)兔抗綿羊紅細胞(SRBC)血清致敏SRBC的VB懸液,加到各孔中,溶血系統(tǒng)(即2個體積的溶血系加3個體積的蒸餾水)在545 nm波長下吸收值為0.66?;旌衔镉?7 ℃孵育30 min,隨后,離心微量板,并用肉眼觀察反應。要求抗血清、被檢樣品和補體的量是25μL,而溶血系統(tǒng)的量是50μL。同時要做與抗血清、抗原、補體和溶血系統(tǒng)相應的對照??梢杂帽任⒘堪宕?倍量的試劑在試管中作CF 50%試驗。這時,可用分光光度計在545 nm波長條件下讀取光吸收值表示試驗結(jié)果。

      5)結(jié)果解釋:當各種對照符合要求,而一個型的抗血清在與其他型抗血清以及對照相比其樣品溶血小于20%時,則認為其相應的血清型是陽性。將CF試驗為陰性的野外樣品接種于細胞培養(yǎng)物或斷乳的小鼠,如果連傳3代均為陰性,該樣品被認為是VES病毒陰性。

      3.2.4 免疫熒光試驗

      將熒光素標記在相應的抗體上,直接與相應抗原反應。其優(yōu)點是方法簡便,特異性高,非特異性熒光染色少。缺點是敏感性偏低,而且每檢查一種抗原都就需要制備一種熒光抗體,此法常用于病毒等微生物的快速檢查。試驗程序:

      1)將澄清組織懸液或水皰液接種于Leighton培養(yǎng)管及其25 cm2細胞瓶的培養(yǎng)細胞上。

      2)37 ℃孵育1 h。

      3)棄去接種物,用細胞培養(yǎng)液洗滌細胞3次,然后用含有2.5%胎牛血清(FBS)的細胞培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。

      4)將接種的Leighton管細胞培養(yǎng)物置于33~35 ℃并觀察CPE。

      5)接種后18~24 h,從接種每一樣品的Leighton管中取出培養(yǎng)的蓋片,用新澤西型(NJ)和印第安型(IN)VESV特異性熒光抗體(FA)結(jié)合物染色。

      6)將其余的接種的Leighton管和25 cm2細胞瓶在35~37 ℃培養(yǎng)6 d以上,并每天觀察CPE。

      7)接種后第7天,用FA結(jié)合物將Leighton管中剩余的培養(yǎng)蓋片染色。如果未觀察到熒光而且細胞瓶也無觀察到CPE,即可報告樣品為VES病毒分離陰性。

      8)如果觀察到CPE,而FA染色陰性,則按照如上程序,用25 cm2細胞瓶中的細胞進行傳代培養(yǎng)。

      3.3 豬水皰疹病的分子生物學診斷

      VES的診斷技術正在不斷地改進和創(chuàng)新,已從病原學與血清學診斷技術擴展到了分子生物學診斷技術的領域。這些新技術的最大優(yōu)點體現(xiàn)在簡便、快速、精確、靈敏,以及檢樣處理的高通量化。

      3.3.1 RT-PCR

      近幾年發(fā)展起來的RT-PCR 技術,具有簡單、易操作、結(jié)果直觀、敏感性高、特異性強、重復性好等優(yōu)點,已成為病原體檢測的重要方法。趙啟祖等[5]首次應用 RT-PCR 方法,以SVEV VP3 區(qū)編碼 VPg和蛋白酶基因序列合成的引物,檢測了2株 SVEV 感染 IBRS-2 細胞中的病毒 RNA,在同一RT-PCR 緩沖體系中成功地擴增出了目的基因片段,用 RT-PCR 檢測 TCID50為 1.0×10-8.5和乳鼠 LD50為1.0×10-9.0的病毒細胞培養(yǎng)物時,其靈敏度可達 1.0×10-11以上,而正常IBRS-2細胞和 SVEV 感染的IBRS-2 細胞均未擴增出 DNA 片段。

      表1 口蹄疫、豬水皰病、水皰性口炎及豬水皰疹病的鑒別[7]

      3.3.2 PCR-ELISA

      PCR-ELISA 相對于凝膠光密度定量,無論在靈敏度、特異性、精確度上都得到很大的提高,能滿足臨床診斷的要求。Callens等[6]根據(jù) RTPCR 和 ELISA 的原理,用地高辛標記的 dUTP 標記 212 bp 的擴增子,通過 RT-PCR-ELISA,無需使用巢式聚合酶鏈式反應即可對豬水皰病進行高效、特異地檢測。

      4 豬水皰疹病的鑒別診斷

      根據(jù)病豬突然高熱稽留,后唇、齒齦、舌、腭、鼻鏡以及四肢的蹄冠、蹄踵和趾間形成水皰,跛行,厭食等臨床癥狀和病理變化,可初步診斷本病。但由于本病臨床表現(xiàn)與口蹄疫、水皰性口炎及豬水皰病極為相似。因此,診斷本病必須與口蹄疫、水皰性口炎及豬水皰病進行鑒別。豬口蹄疫、豬水皰病、水皰性口炎和豬水皰疹病的鑒別診斷見表1。

      由于控制豬水皰疹病的關鍵之一在于早期診斷,因此,探索一種高效、快速、敏感的檢測方法是今后發(fā)展的方向。目前,應用于實驗室診斷的方面如RT-PCR法等已能夠較敏感的診斷出SESV。有的診斷方法還在研究中,有待進一步完善。隨著VES的研究不斷深入,分子生物學技術的不斷發(fā)展,一定會有更靈敏,更準確,操作更簡便的VES診斷技術不斷出現(xiàn)和應用。

      [1] 世界動物衛(wèi)生組織.哺乳動物,禽,蜜蜂A和B類疾病診斷試驗和疫苗標準手冊[M].農(nóng)業(yè)部畜牧獸醫(yī)局,譯.第4版.北京:中國農(nóng)業(yè)科技出版社,2002.

      [2] Kweon C H, Kwon B J, Kim I J,et al. Development of monoclonal antibody-linked ELISA for serodiagnosis of vesicular stomatitis virus(VSV-IN) using baculovirus expressed glycoprotein[J]. J Virol Methods,2005, 130(1-2):7-14.

      [3] Harrsion Stephen C.Viral membrane fusion[J].Nature Structural Molecular Biology, 2008, 15(7):690-698.

      [4] Detje C N, Meyer T, Schmidt,et a1.Local type I IFN receptor signaling protects against virus spread within the central nervous system[J].Joumal nmunolo gy,2009,182(4):2297-2304.

      [5] 趙啟祖,薛景山,謝慶閣,等.聚合酶鏈反應(PCR)檢測豬水皰疹病病毒的研究 [C]//青島:第3屆全國病毒學學術會議論文集,1994.

      [6] Callens M,Clercq K.Highly sensitive detection of swine vesicular disease virus based on a single tube RT-PCR system and DIG-ELISA detection[J].Journal of virological methods,1999(77):87-99.

      [7] 蔡寶祥.家畜傳染病學[M].第4版.北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2001.

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