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      飼糧NFC/NDF對奶山羊瘤胃上皮細(xì)胞胰島素樣生長因子Ⅰ及其受體的基因表達(dá)的影響

      2012-09-11 07:35:22周向麗劉大程胡紅蓮
      動物營養(yǎng)學(xué)報(bào) 2012年10期
      關(guān)鍵詞:奶山羊飼糧乳頭

      周向麗 劉大程* 孫 鴿 高 民 胡紅蓮

      (1.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院,呼和浩特 010018;2.內(nèi)蒙古農(nóng)牧業(yè)科學(xué)院,呼和浩特 010030)

      近些年隨著高精料飼糧的大量使用,反芻動物的生產(chǎn)性能得到了極大的提高。這種以淀粉為能量來源高精料飼糧的大量使用極易導(dǎo)致瘤胃酸中毒等代謝性疾病的發(fā)生[1]。正常情況下,反芻動物瘤胃發(fā)酵產(chǎn)生的揮發(fā)性脂肪酸(VFA)大多被瘤胃上皮細(xì)胞吸收[2],而瘤胃對VFA的吸收是一個被動過程,位于瘤胃壁上的瘤胃乳頭可增強(qiáng)此被動吸收過程[3],因此,增加瘤胃乳頭長度和表面積可增強(qiáng)其對VFA的吸收,在一定程度上避免了VFA堆積。飼糧的營養(yǎng)水平會影響胰島素樣生長因子Ⅰ(insulin-like growth factor Ⅰ,IGF-Ⅰ)的基因表達(dá)和濃度。高營養(yǎng)飼糧能夠增加瘤胃上皮細(xì)胞胰島素樣生長因子Ⅰ受體(IGF-Ⅰ receptor,IGF-ⅠR)的基因表達(dá),同時(shí)血液中IGF-Ⅰ的濃度也顯著高于低營養(yǎng)飼糧組[4]。與此同時(shí)許多體內(nèi)外試驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn)反芻動物瘤胃上皮生長發(fā)育受IGF-Ⅰ等激素或生長因子的調(diào)節(jié)。IGF-Ⅰ具有調(diào)節(jié)細(xì)胞代謝,促進(jìn)細(xì)胞生長、分化和分裂以及抑制細(xì)胞死亡的作用。此外,IGF-Ⅰ又可促進(jìn)體外培養(yǎng)的山羊瘤胃上皮細(xì)胞DNA合成[4]。因此一些學(xué)者推斷高營養(yǎng)飼糧可經(jīng)IGF-Ⅰ系統(tǒng)增加瘤胃上皮乳頭的數(shù)量及大?。?]。目前,關(guān)于亞急性瘤胃酸中毒(SARA)發(fā)生、發(fā)展過程中,瘤胃上皮細(xì)胞IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量變化以及SARA過程中IGF-Ⅰ與瘤胃上皮生長之間存在的聯(lián)系,鮮見報(bào)道。因此,本試驗(yàn)在逐漸增加飼糧非纖維性碳水化合物和中性洗滌纖維比(NFC/NDF)誘導(dǎo)奶山羊發(fā)生SARA的基礎(chǔ)上,采用實(shí)時(shí)定量 PCR(qRTPCR)技術(shù)研究SARA發(fā)生、發(fā)展過程中瘤胃上皮細(xì)胞IGF-Ⅰ及IGF-ⅠR的基因表達(dá)量的變化。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)動物與試驗(yàn)設(shè)計(jì)

      選用12只體況良好的泌乳期關(guān)中奶山羊,平均體重30~35 kg,年齡2~3歲。整個試驗(yàn)期,試驗(yàn)動物單籠飼養(yǎng),每天06:00和18:00 2次等量飼喂,自由飲水。

      試驗(yàn)飼糧參照NRC(1981)山羊營養(yǎng)需求[6]和文獻(xiàn)[7]配制,以玉米、豆粕、麥麩、青干草為主要原料。試驗(yàn)分4期進(jìn)行,每期15 d,依次飼喂NFC/NDF為1.02(Ⅰ期)、1.24(Ⅱ期)、1.63(Ⅲ期)、2.58(Ⅳ期)的4組飼糧誘導(dǎo)奶山羊發(fā)生SARA。試驗(yàn)飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1。

      1.2 樣品采集與處理

      試驗(yàn)分4期進(jìn)行,通過觀察動物的精神狀態(tài)、采食量及糞便的變化等判定動物發(fā)生酸中毒,SARA誘導(dǎo)成功。在每期試驗(yàn)結(jié)束后,選3只奶山羊宰殺取樣,每只羊取3個平行樣。所有山羊宰殺前禁食12 h,奶山羊屠宰后,迅速打開瘤胃,為了便于定位每次采取后腹盲囊靠近后溝處組織,鈍性分離其黏膜,生理鹽水洗凈表層瘤胃內(nèi)容物后,剪成糊狀裝入1支1.5 mL離心管,迅速置于液氮中保存,后轉(zhuǎn)于-80℃冰箱保存,用于qRTPCR定量分析。

      表1 試驗(yàn)飼糧組成及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets(air-dry basis) %

      1.3 瘤胃上皮細(xì)胞總RNA的提取

      用總RNA提取試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司]提取瘤胃上皮細(xì)胞總RNA并用紫外分光光度計(jì)測定吸光度,以O(shè)D260nm/OD280nm來判斷提取總RNA的純度。

      1.4 cDNA第1鏈的合成

      定量取山羊瘤胃組織總RNA為模板,建立反轉(zhuǎn)錄PCR檢測方法。以oligo(dT)18引物進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,合成 cDNA第1鏈,采用20 μL反應(yīng)體系,組成如下:總 RNA 5~500 ng、Anchored Oligo(dT)18(0.5 μg/μL)1 μL、2 × TS Reaction Mix 10 μL、TransScript RT/RI Enzyme Mix 1 μL,加RNase-free Water至 20 μL。

      1.5 目標(biāo)片斷的擴(kuò)增與鑒定

      3對特異性引物設(shè)計(jì)參照文獻(xiàn)[8],所有引物均由大連寶生物有限公司合成,引物序列及參數(shù)見表2。反應(yīng)使用反轉(zhuǎn)錄PCR試劑盒購自日本TaKaRa公司。25 μL反應(yīng)體系如下:模板cDNA 3 μL、上游和下游引物(10 μmol/L) 各 0.5 μL、2 × TransTaq-T PCR SuperMix 12.5 μL,加雙蒸水至 25 μL。

      反轉(zhuǎn)錄PCR擴(kuò)增參數(shù)如下:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,退火溫度(表2)下退火30 s,72℃延伸45 s,32個循環(huán);72℃最終延伸7 min。

      產(chǎn)物經(jīng)2.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

      表2 引物序列及參數(shù)Table 2 Sequences and parameters of primers

      1.6 目的片段膠回收、克隆及鑒定

      用膠回收試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司]對反轉(zhuǎn)錄PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行膠回收,按照pEASY-T1 Cloning Kit試劑盒(北京全式金生物技術(shù)有限公司)將3個膠回收片段分別與pEASY-T1載體連接,轉(zhuǎn)化入感受態(tài)細(xì)胞(Trans1-T1 Phage Resistant),隨機(jī)挑取幾個白色菌落,分別以其裂解液為模板,用上述引物進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄PCR擴(kuò)增,其反應(yīng)體系和反應(yīng)條件均與1.5相同,用2.0%的瓊脂糖凝膠電泳檢測擴(kuò)增片段的大小以鑒定重組質(zhì)粒。挑選反轉(zhuǎn)錄PCR鑒定陽性菌落分別接種于1 mL含有 1.4 μL 氨芐青霉素(Amp,100 μg/mL)的LB液體培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng)過夜,送至大連寶生物有限公司進(jìn)行測序。

      1.7 重組質(zhì)粒的提取及qRT-PCR

      用質(zhì)粒提取試劑盒(美國AXYGEN公司)提取含有目的片段的重組質(zhì)粒,使用微量紫外分光光度計(jì)(德國Eppendorf公司)測定質(zhì)粒DNA溶液的濃度,將提取的質(zhì)粒進(jìn)行10倍系列稀釋,制備10~105拷貝的反應(yīng)用模板共5個梯度濃度,用Premix Ex TaqTM試劑盒(日本TaKaRa公司)配制25 μL 反應(yīng)體系,組成如下:模板 cDNA 3 μL、SYBRB Premix Ex TaqTMⅡ(2 ×)12.5 μL、上游和下游引物(10 μmol/L)各 0.5 μL、8.5 μL 雙蒸水。

      美國Bio-Rad公司 iQTM5多重 qRT-PCR儀上進(jìn)行qRT-PCR擴(kuò)增,反應(yīng)參數(shù)如下:95℃預(yù)變性30 s;95℃變性10 s,退火溫度(表2)下退火30 s,72℃延伸30 s(收集熒光),40個循環(huán)。

      反應(yīng)結(jié)束后軟件自動繪制以拷貝數(shù)的對數(shù)為橫坐標(biāo),以qRT-PCR反應(yīng)過程中到達(dá)熒光閾值的初始循環(huán)數(shù)(Ct)為縱坐標(biāo)的標(biāo)準(zhǔn)曲線。

      1.8 樣品DNA的測定

      獲得樣品Ct,計(jì)算相對表達(dá)量。計(jì)算公式[9]如下:

      1.9 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

      數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析采用SPSS 17.0軟件ANOVA過程進(jìn)行方差分析,多重比較用Duncan氏法。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 瘤胃上皮細(xì)胞總RNA的提取及質(zhì)量檢測

      提取的總RNA經(jīng)紫外分光光度計(jì)檢測,其OD260nm/OD280nm在1.8~2.0之間,說明提取的總RNA有較好的純度。經(jīng)2.0%的瓊脂糖凝膠電泳鑒定樣品總RNA的完整性,如圖1所示,18S和28S條帶清晰,無DNA污染,無明顯降解,表明提取的總RNA質(zhì)量較高。

      圖1 RNA凝膠電泳圖譜Fig.1 Agarose gel image of total RNA

      2.2 目標(biāo)片段擴(kuò)增與序列分析

      用2.0%瓊膠糖凝膠電泳檢測,反轉(zhuǎn)錄PCR擴(kuò)增產(chǎn)物專一且內(nèi)參 β-肌動蛋白、IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR目標(biāo)片段大小分別在330、393和215 bp(圖2、圖3和圖4)。每種引物實(shí)際擴(kuò)增片段大小與預(yù)期目的片段大小相符。將這3種反轉(zhuǎn)錄PCR產(chǎn)物回收、克隆、陽性重組質(zhì)粒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄PCR,擴(kuò)增出的條帶與目標(biāo)片段大小一致(圖5)。

      2.3 熔解曲線分析

      內(nèi)參β-肌動蛋白、IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因的熔解曲線各只有1個特異性峰(圖6),表明無引物二聚體及非特異性產(chǎn)物形成,說明所設(shè)計(jì)引物有很好的特異性,PCR反應(yīng)條件得到了較好的優(yōu)化。

      圖2 β-肌動蛋白反轉(zhuǎn)錄PCR電泳檢測結(jié)果Fig.2 Reverse transcription PCR electrophoresis results of β-actin

      圖3 IGF-Ⅰ反轉(zhuǎn)錄PCR電泳檢測結(jié)果Fig.3 Reverse transcription PCR electrophoresis results of IGF-Ⅰ

      圖4 IGF-ⅠR反轉(zhuǎn)錄PCR電泳檢測結(jié)果Fig.4 Reverse transcription PCR electrophoresis results IGF-ⅠR

      圖5 含有目的片段的質(zhì)粒反轉(zhuǎn)錄PCR電泳結(jié)果Fig.5 Reverse transcription PCR electrophoresis results of plasmids with target fragments

      2.4 質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)曲線的構(gòu)建

      經(jīng)紫外分光光度計(jì)測定β-肌動蛋白、IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR質(zhì)粒DNA溶液的濃度分別為31、29和34 μg/mL。qRT-PCR儀中軟件自動生成的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品擴(kuò)增反應(yīng)曲線,Ct和拷貝數(shù)呈線性關(guān)系,所構(gòu)建的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品起始模板為10~105,繪制出的拷貝數(shù)log值(y)和Ct(x)的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程分別為:β-肌動蛋白,y= -3.283x+24.874(R2=0.992);IGF-Ⅰ,y= - 3.637x+29.076(R2=0.995);IGF-ⅠR,y= - 3.935x+22.893(R2=0.997)。表明拷貝數(shù)的Log值與Ct之間的線性關(guān)系良好,其他非特異性反應(yīng)產(chǎn)生的雙鏈干擾較少,所建立的標(biāo)準(zhǔn)曲線符合qRT-PCR定量的要求。

      圖6 β-肌動蛋白、IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR熔解曲線Fig.6 Melting curves of β-actin,IGF-Ⅰ and IGF-ⅠR

      2.5 IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR定量分析結(jié)果

      本試驗(yàn)用qRT-PCR分別檢測出各組目的基因和內(nèi)參基因的Ct(表3),代入公式進(jìn)行相對定量(表4)。隨著 NFC/NDF的逐漸增大,IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量均呈現(xiàn)不同程度的增加,且二者表達(dá)量的變化趨勢具有很好的一致性。以Ⅰ期瘤胃中的IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量作為對照,Ⅱ期IGF-Ⅰ和 IGF-ⅠR的基因表達(dá)量分別是Ⅰ期的1.70和1.88倍,2組之間無顯著差異(P >0.05)。Ⅲ期較Ⅱ期相比,IGF-Ⅰ和 IGF-ⅠR的基因表達(dá)量出現(xiàn)顯著增加(P<0.05),且分別是Ⅰ期的2.71和3.09倍。Ⅳ期(SARA期)較Ⅲ期相比,IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量分別出現(xiàn)極顯著(P<0.01)和顯著(P<0.05)增加,且分別是Ⅰ期的9.61和10.19倍,極顯著高于Ⅰ期(P<0.01)。

      3 討論

      qRT-PCR技術(shù)目前已成為一種被廣泛用于對未知模板進(jìn)行定量分析的必要手段。本試驗(yàn)在測定不同飼糧NFC/NDF條件下,奶山羊瘤胃上皮細(xì)胞IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量時(shí),通過特異性引物的設(shè)計(jì)、反應(yīng)體系的優(yōu)化等,使目的熔解曲線只有1個特異性峰,由此說明試驗(yàn)過程中沒有引物二聚體及其他非特異性產(chǎn)物的生成,進(jìn)而保證qRT-PCR反應(yīng)的高質(zhì)量。試驗(yàn)結(jié)果得到的標(biāo)準(zhǔn)曲線R2均在0.990以上,表明拷貝數(shù)的log值與Ct之間的線性關(guān)系良好,其他非特異性雙鏈干擾較少。結(jié)果表明,目的片段成功制備、重組并保持了序列的完整性和特異性,為qRT-PCR表達(dá)檢測的順利進(jìn)行奠定了良好的基礎(chǔ)。

      表3 qRT-PCR所測的各樣品的CtTable 3 The Ct values of samples determined by the qRT-PCR

      表4 IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR qRT-PCR定量結(jié)果Table 4 The results of qRT-PCR of IGF-Ⅰ and IGF-ⅠR

      IGF-Ⅰ是一種合成代謝激素,在動物體內(nèi)各組織器官中均有該基因的表達(dá)產(chǎn)物,可促進(jìn)細(xì)胞對氨基酸和葡萄糖的攝取,增加蛋白質(zhì)、脂肪和糖原合成,刺激DNA復(fù)制和細(xì)胞增殖分化,對許多組織細(xì)胞增殖、分化起調(diào)節(jié)作用,是動物生長發(fā)育過程中一種重要的生長因子。IGF-Ⅰ的功能主要依靠與IGF-ⅠR結(jié)合來執(zhí)行,IGF-ⅠR廣泛分布于多種組織及培養(yǎng)細(xì)胞中,在新生犢牛瘤胃上皮細(xì)胞[10]和青年山羊瘤胃上皮細(xì)胞均存在 IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)。IGF-Ⅰ的基因表達(dá)受到生長激素、營養(yǎng)狀態(tài)等因素的調(diào)控,營養(yǎng)素對IGF-Ⅰ具有直接調(diào)控作用,飼糧中蛋白質(zhì)水平對IGF-Ⅰ的基因表達(dá)有顯著影響,營養(yǎng)不良時(shí),肝臟、肌肉等組織中 IGF-Ⅰ的基因表達(dá)發(fā)生變化,血液中IGF-Ⅰ水平降低[11-12]。飼糧蛋白質(zhì)水平低于生長需要時(shí),大鼠[13]及肥育豬[14]血漿 IGF-Ⅰ濃度均下降。本試驗(yàn)結(jié)果顯示隨著飼糧NFC/NDF增高,即飼糧營養(yǎng)水平逐漸增加時(shí),瘤胃上皮細(xì)胞中IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量均呈現(xiàn)不同程度的增加,特別是在NFC/NDF為2.58時(shí),IGF-Ⅰ的基因表達(dá)量是試驗(yàn)初期的9.61倍,而IGF-ⅠR的基因表達(dá)量也是試驗(yàn)初期的10.19倍,這不僅說明高營養(yǎng)飼糧有利于促進(jìn)瘤胃上皮細(xì)胞IGF-Ⅰ的基因表達(dá),同時(shí)也說明IGF-Ⅰ和 IGF-ⅠR的基因表達(dá)具有很好的一致性,這有助于IGF-Ⅰ更好的發(fā)揮其生物學(xué)功效。

      IGF-Ⅰ對動物胃腸道的發(fā)育和更新具有重要的調(diào)節(jié)作用??诜亟M人胰島素樣生長因子Ⅰ(rhIGF-Ⅰ)有助于新生反芻動物胃腸道的生長發(fā)育。而體外培養(yǎng)的瘤胃上皮細(xì)胞經(jīng)IGF-Ⅰ處理后,細(xì)胞分裂加快,細(xì)胞DNA合成增多,促進(jìn)了細(xì)胞增殖。體內(nèi)外試驗(yàn)都表明IGF-Ⅰ對瘤胃上皮的生長發(fā)育具有促進(jìn)作用。本試驗(yàn)結(jié)果中IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量隨飼糧NFC/NDF的增加而增加。試驗(yàn)過程中,由于瘤胃體積較大,取材部位與取材標(biāo)準(zhǔn)會對試驗(yàn)產(chǎn)生很大影響,因此在取材的過程中為統(tǒng)一定位,每次采取瘤胃后腹盲囊靠近后溝處組織作為研究對象。在此過程中我們發(fā)現(xiàn)前2期瘤胃上皮乳頭的長度和密度沒有明顯的區(qū)別,瘤胃黏膜上密布著棕褐色扁平而凸起的乳頭。到Ⅲ期時(shí),視覺上可見瘤胃上皮乳頭長度比Ⅰ、Ⅱ期有所增加,乳頭密度沒有太大變化,但Ⅳ期時(shí),瘤胃上皮乳頭長度與前幾期相比變短,乳頭密度變稀疏,且在某些部位出現(xiàn)損傷和脫落現(xiàn)象。之前報(bào)道IGF-Ⅰ具有促進(jìn)瘤胃上皮乳頭生長的作用,而本試驗(yàn)出現(xiàn)的這種結(jié)果與之相反。由課題組前期研究可知出現(xiàn)瘤胃上皮損傷的主要原因是飼糧 NFC/NDF為2.58時(shí),試驗(yàn)動物發(fā)生SARA,瘤胃內(nèi)VFA大量堆積,瘤胃液pH急劇下降[15],瘤胃上皮細(xì)胞長時(shí)間浸潤在高滲和低 pH環(huán)境下導(dǎo)致的。而此時(shí)瘤胃上皮細(xì)胞IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá)量均大大增加,有利于瘤胃上皮細(xì)胞對VFA的吸收,也可能是瘤胃內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定性遭到破壞時(shí)動物機(jī)體的一種代償表現(xiàn)。同時(shí)研究發(fā)現(xiàn),SARA狀態(tài)時(shí),丁酸濃度顯著升高是導(dǎo)致瘤胃總揮發(fā)性脂肪酸(TVFA)濃度升高的主要因素,瘤胃中VFA蓄積增多對SARA發(fā)生起著決定性作用。當(dāng)給瘤胃灌注丁酸后,血漿胰島素濃度升高,瘤胃上皮細(xì)胞分裂增強(qiáng)[16]。因此推測丁酸濃度的增加可能會刺激瘤胃上皮細(xì)胞IGF-Ⅰ和IGF-ⅠR的基因表達(dá),以促進(jìn)瘤胃上皮細(xì)胞生長并且增加瘤胃上皮細(xì)胞對丁酸的吸收,以此來減弱酸性環(huán)境對瘤胃的損傷。

      4 結(jié)論

      以提高飼糧NFC/NDF的方法逐漸誘導(dǎo)SARA,IGF-Ⅰ及 IGF-ⅠR 的基因表達(dá)量顯著提高,SARA發(fā)生后,它們的表達(dá)量有大幅增加。

      [1]OWENS F N,SECRIST D S,HILL W J.Acidosis in cattle:a review[J].Journal of Animal Science,1998,76:275-286.

      [2]何軍,陳代文.反芻動物瘤胃上皮發(fā)育規(guī)律及影響因素[J].中國草食動物,2007,27(5):56-58.

      [3]BERGMAN E N.Energy contributions of volatile fatty acids from the gastrointestinal tract in various species[J].Physiological Reviews,1990,70:1580 - 1588.

      [4]SHEN Z,SEYFERT H M,LOHRKE B,et al.An energy-rich diet causes rumen papillae proliferation associated with more IGF typeⅠreceptors and increased plasma IGF-Ⅰ concentrations in young goats[J].The Journal of Nutrition,2004,134:11 -7.

      [5]曾求生.日糧營養(yǎng)水平對山羊瘤胃、瓣胃上皮生長及SCFA濃度的影響[D].碩士學(xué)位論文.南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2006.

      [6]NRC.Nutrient requirements of goats:angora,dairy and meat goats in temperate and tropical countries[S].Washington,D.C.:National Academy Press,1981.

      [7]金公亮.奶山羊飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)[J].畜牧獸醫(yī)雜志,1989,2:7-12.

      [8]龔虹.羊乳腺中IGF-Ⅰ與其受體基因表達(dá)量的相關(guān)性研究[D].碩士學(xué)位論文.呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2007.

      [9]LIVAK K J,SCHMITGEN T D.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-△△Ctmethod[J].Methods,2001,25:402 -408.

      [10]ONTSOUKA E C,HAMMON H M,BLUM J W.Expression ofinsulin-like growth factors(IGF)-Ⅰand-Ⅱ,IGF-binding proteins-Ⅱ and -Ⅲ,and receptors for growth hormone,IGF type-Ⅰ and -Ⅱ and insulin in the gastrointestinal tract of neonatal calves[J].Growth Factors,2004,22(l):63 - 69.

      [11]BREIER B H.Regulation of protein and energy metabolism by the somatotropic axis[J].Dourest Animal Endocrinol,1999,17(23):209 -218.

      [12]SIMMEN F A,BADINGA L,GERRN M L,et al.The porcine insulin-like growth factor system:at the interface of nutrition,growth and reproduction[J].The Journal of Nutrition,1998,128(2):315S -320S.

      [13]MACRAE J C.Regulation of protein metabolism[R]//Rowett research institute annual report.[S.l.]:Rowett Research Institute,1992:84 -90.

      [14]WHANG K Y,DONOVAN S M,EASTER R A.Effects of protein deprivation on subsequent efficiency of dietary protein utiliza-tion in finishing pigs[J].Asian-Austrilia Journal of Animal Science,2000,13:659-665.

      [15]韓昊奇,劉大程,高民,等.日糧不同NFC/NDF比對奶山羊瘤胃微生物及瘤胃pH變化的影響[J].動物營養(yǎng)學(xué)報(bào),2011,23(4):597 -643.

      [16]NEOGRADY Z,GALFI P,KUTAS F.Effect of intraruminal butyrate infusion on the plasma insulin level in sheep[J].Acta Veterinaria Hungarica,1989,37(3):247-53.

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      解放軍健康(2017年5期)2017-08-01 06:27:36
      被寶寶咬住乳頭,怎一個“痛”字了得!
      媽媽寶寶(2017年3期)2017-02-21 01:22:32
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