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      端粒DNA形成不同構(gòu)象的關(guān)鍵因素

      2012-10-16 06:23:06武宇亭張文梅李小衛(wèi)趙紅衛(wèi)
      核技術(shù) 2012年2期
      關(guān)鍵詞:單鏈雙螺旋端粒

      武宇亭 張文梅 李小衛(wèi) 趙紅衛(wèi)

      1(山西大學(xué)物理電子工程學(xué)院 現(xiàn)代通信技術(shù)研究所 太原 030006)

      2(上海交通大學(xué)上海系統(tǒng)生物醫(yī)學(xué)中心教育部系統(tǒng)生物醫(yī)學(xué)重點實驗室 上海 200240)

      3(中國科學(xué)院上海應(yīng)用物理研究所 上海 201800)

      端粒是真核細(xì)胞內(nèi)線狀染色體末端的一種特殊結(jié)構(gòu),由 DNA簡單重復(fù)序列以及與序列專一性結(jié)合的蛋白質(zhì)構(gòu)成。端粒對染色體有保護作用,避免染色體末端融合、重組。人體端粒 DNA含有大量的重復(fù)單元,它們有雙鏈,也有單鏈形式。在富G(鳥嘌呤)單鏈中,G和 G間可通過氫鍵、陽離子偶極作用和范得華力形成 G-四聚體(G-quartet)平面結(jié)構(gòu),各G-quartet平面相互堆積便形成G-quadruplex結(jié)構(gòu)[1,2]。與其互補的單鏈為富C(胞嘧啶)序列,通過C堿基的半質(zhì)子化,C+?C堿基對形成穩(wěn)定的平行雙螺旋,兩個平行雙螺旋 C+?C堿基對交替排列和相互嵌入形成 I-motif結(jié)構(gòu)[3–5]。研究表明,正常細(xì)胞每次分裂會損失50–200個端粒DNA核苷酸,當(dāng)端粒 DNA的長度減至足夠短時,細(xì)胞開始衰老和死亡[6]。與正常細(xì)胞不同,85%–90%的癌細(xì)胞中高活性端粒 DNA酶能不斷合成細(xì)胞分裂后損失的端粒DNA,從而使癌細(xì)胞無限制的分裂和繁殖。據(jù)文獻[7],可通過蛋白適配復(fù)合體來抑制DNA的復(fù)制。近年來發(fā)現(xiàn),富G序列形成的G-quadruplex結(jié)構(gòu)能影響端粒酶的活性,也可抑制癌細(xì)胞分裂,因此,研究端粒 DNA G-quadruplex的形成對癌癥治療具有重要意義[8]。

      相比于G-quadruplex,人們對I-motif的了解不足,但其與人體端粒DNA、著絲粒DNA、RNA夾層結(jié)構(gòu)的相互作用及與某些蛋白結(jié)合,都表明I-motif有重要的生物作用。I-motif也可與G-quadruplex一樣作為抗癌藥物的作用靶點,其研究具有有重要的生物醫(yī)學(xué)意義[4]。

      人們用核磁共振(Nuclear Magnetic Resonance)、圓二色譜(Circular Dichroism Spectrum)、凝膠電泳等方法研究了G-quadruplex、I-motif的形成條件及其穩(wěn)定性[9–13],但對富C和富G序列共存條件下結(jié)構(gòu)特征的報道并不多見。由不對稱分子組成的物質(zhì)對左、右旋束圓偏振光吸收程度不同,這種吸收程度的不同與波長的關(guān)系稱圓二色譜。本文用圓二色譜考察了不同單鏈分別形成四鏈體的關(guān)鍵影響因素,并研究了兩單鏈混合時的結(jié)構(gòu)特征。結(jié)果表明,在dAG3(T2AG3)3和 d(C3TA2)3C3T的混合溶液中很容易形成duplex結(jié)構(gòu),但去除對duplex結(jié)構(gòu)有穩(wěn)定作用的離子后則形成G-quadruplex、I-motif混合狀態(tài)。

      1 材料和方法

      1.1 樣品制備

      由生工生物工程(上海)公司提供的寡核糖核酸5'-AGGGTTAGGGTTAGGGTTAGGG-3'及其互補鏈 5'-CCCTAACCCTAACCCTAACCCT-3', 經(jīng)ULTRAPAGE純化,并由質(zhì)譜檢測,分子量誤差≤0.1%,其純度達實驗要求。將寡核糖核酸溶于去離子超純水,測試樣品濃度為 50 μg/mL(約 2.5 mmol/L),由HCl/NaOH調(diào)節(jié)溶液pH值,測試樣品中 Na+離子濃度為 50 mmol/L,所用 EDTA 為 1 mmol/L。

      1.2 CD譜實驗

      實驗所用圓二色光譜儀為日本分光公司JASCO J-815,采用1 mm樣品池,掃描范圍320–200 nm,掃描速度100 nm/min,步長1 nm。測定溫度為20oC,以同種離子條件緩沖液作參比。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 dAG3(T2AG3)3與金屬離子

      圖1為 dAG3(T2AG3)3在不同緩沖液中的 CD譜。溶于去離子超純水未添加其它試劑的樣品在235 nm處有一負(fù)峰,在255 nm和295 nm處各有一正峰,表明dAG3(T2AG3)3以單鏈形式存在。pH值為7的純水時,在240 nm附近有一負(fù)峰,在265 nm附近有一很小的正峰,同時在295 nm附近形成一個較強的正峰,對應(yīng)于正平行G-quadruplex結(jié)構(gòu)。這與文獻報道一致[11,14,15]。文獻[14]也提到 K+離子能促使這種結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定。將dAG3(T2AG3)3溶于NaCl溶液中并調(diào)節(jié)溶液呈中性,dAG3(T2AG3)3會在295 nm處形成一正峰,在265 nm處形成一負(fù)峰,這與反平行G-quadruplex結(jié)構(gòu)的CD譜特征峰相符。

      圖1 dAG3(T2AG3)3溶于純水、pH 7水、50 mmol/L NaCl溶液中的CD譜Fig.1 CD spectra of dAG3(T2AG3)3 in pure water, water at pH 7, and 50 mmol/L NaCl solution.

      研究表明,溶液中的 Na+離子會促使dAG3(T2AG3)3從正平行轉(zhuǎn)換到反平行四鏈體結(jié)構(gòu)。這可能是由于正反平行四鏈形成的G-quadruplex中間孔徑大小不同,不同半徑的離子會促使不同結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定,Na+離子與堿基中負(fù)性氧原子相互配位,從而促使反平行 G-quadruplex結(jié)構(gòu)的形成和穩(wěn)定[11]。文獻[16]認(rèn)為與金屬離子的脫水自由能有關(guān)。但可以肯定的是在這個過程中伴隨有氫鍵的斷裂和重組以及糖苷鍵角的變化[15]。

      2.2 dAG3(T2AG3)3與溶液pH

      圖2為dAG3(T2AG3)3形成構(gòu)象與溶液pH的關(guān)系。將dAG3(T2AG3)3溶于純水,在不同pH下,都形成了正平行G-quadruplex結(jié)構(gòu)。將dAG3(T2AG3)3溶于 NaCl溶液,在不同的 pH下形成了反平行G-quadruplex結(jié)構(gòu)。表明溶液 pH對正反平行G-quadruplex結(jié)構(gòu)影響較小。結(jié)果與文獻[14]報道相符,但文獻[15]中指出pH會影響G-quadruplex結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性,在 pH=6.5時,其結(jié)構(gòu)最為穩(wěn)定,過酸過堿都會使G-quadruplex結(jié)構(gòu)遭到破壞。

      圖2 dAG3(T2AG3)3溶于pH 4.5和7.0的純水及pH 4.5和7.0的50 mmol/L NaCl溶液中的CD譜Fig.2 CD spectra of dAG3(T2AG3)3 in water at pH 4.5 and 7.0, and in 50 mmol/L NaCl at pH 4.5 and 7.0.

      2.3 d(C3TA2)3C3T與溶液pH

      圖3是d(C3TA2)3C3T在不同溶液環(huán)境下形成的構(gòu)象。將d(C3TA2)3C3T溶于pH 4.5的NaCl溶液,在255 nm處呈現(xiàn)一負(fù)峰,在284 nm處有一正峰,對應(yīng)于I-motif結(jié)構(gòu)。在NaCl溶液中,當(dāng)pH=7時,正負(fù)峰均產(chǎn)生紅移,分別位于250、275 nm,核磁共振實驗已證實,此時并未形成I-motif結(jié)構(gòu)[9],這些峰對應(yīng)于單鏈結(jié)構(gòu)。說明d(C3TA2)3C3T是否形成I-motif主要受溶液pH影響,而與金屬Na+關(guān)系不大,與文獻[14]結(jié)論相符。d(C3TA2)3C3T溶于純水CDS正負(fù)峰的位置與在pH 4.5的NaCl溶液中一致,說明純水中也形成了 I-motif結(jié)構(gòu),這是由于d(C3TA2)3C3T溶于水中使溶液呈酸性的緣故。

      圖3 d(C3TA2)3C3T純水溶液和pH 4.5與pH 7.050 mmol/L NaCl溶液的CD譜Fig.3 CD spectra of d(C3TA2)3C3T in pure water,and in 50 mmol/L NaCl solution at pH 4.5 and 7.0.

      2.4 dAG3(T2AG3)3/d(C3TA2)3C3T等摩爾混合

      將等摩爾的單鏈 dAG3(T2AG3)3和d(C3TA2)3C3T溶于NaCl溶液,獲CD光譜(圖4)。

      圖4 dAG3(T2AG3)3、d(C3TA2)3C3T等摩爾混合溶于50 mmol/L NaCl溶液( pH 4.5)和不同pH值添加EDTA的CD譜Fig.4 CD spectra of the equimolar mixture of dAG3(T2AG3)3 and d(C3TA2)3C3T in 50mmol/L NaCl solution at pH 4.5 or 7, and with EDTA added at pH 4.5.

      當(dāng)pH為4.5或7時,在265 nm處均有一個正峰,這是由于雙螺旋DNA堿基的堆積,而240 nm的負(fù)峰對應(yīng)于DNA 雙螺旋B型構(gòu)象[17]。然而加入EDTA后,在288 nm附近形成一個正峰,表明雙螺旋結(jié)構(gòu)發(fā)生某種轉(zhuǎn)變。文獻[14]中提到在Na+及酸性的溶液中,會發(fā)生duplex和G-quadruplex、I-motif的競爭,三種結(jié)構(gòu)會并存。但當(dāng)其中含有Mg2+時,由于 Mg2+有穩(wěn)固 duplex破壞四鏈體結(jié)構(gòu)的作用,則僅有duplex結(jié)構(gòu)。本研究中,可能所購DNA引物中含微量 Mg2+,使 duplex的形成有一定優(yōu)勢,這樣就呈現(xiàn)出duplex特征譜。

      圖5為將此 CD譜與 G-quadruplex、I-motif、duplex的CD譜進行對比,288 nm的正峰恰好位于I-motif 285 nm及G-quadruplex 294 nm兩正峰間,而 255 nm的負(fù)峰也恰好位于 I-motif 250 nm及G-quadruplex 263 nm兩負(fù)峰間。因此可推斷兩單鏈等摩爾混合及含有EDTA時未形成duplex結(jié)構(gòu),而是分別形成四鏈體結(jié)構(gòu),所得 CD譜中的峰是G-quadruplex、I-motif CD譜中峰的疊加。這是由于EDTA可以螯合溶液中微量 Mg2+離子,從而破壞duplex使單鏈分別形成了四鏈結(jié)構(gòu)。

      圖5 pH為4.5的50 mmol/L NaCl溶液中dAG3(T2AG3)3(22AG)、d(C3TA2)3C3(22CT)及其等摩爾混合液和加入EDTA的CD譜Fig.5 CD spectra of dAG3(T2AG3)3(22AG),d(C3TA2)3C3(22CT) and equimolar mixture with EDTA in 50 mmol/L NaCl at pH 4.5.

      3 結(jié)語

      本文利用圓二色譜研究了單鏈 dAG3(T2AG3)3和d(C3TA2)3C3T及其混合溶液形成不同構(gòu)象的主要影響因素。研究結(jié)果表明,dAG3(T2AG3)3很容易形成正平行G-quadruplex結(jié)構(gòu),當(dāng)溶液中含有Na+離子時形成反平行G-quadruplex結(jié)構(gòu),而pH值對于這種構(gòu)象的改變影響甚微。d(C3TA2)3C3T形成四鏈則主要受pH值影響,其在酸性條件下形成I-motif結(jié)構(gòu)。等摩爾dAG3(T2AG3)3和 d(C3TA2)3C3T的混合溶液中容易形成duplex雙螺旋結(jié)構(gòu),加入EDTA螯合溶液中穩(wěn)定 duplex的離子后則形成G-quadruplex、I-motif混合狀態(tài)。

      1 Xue Y, Kan Z Y, Wang Q,et al. Human telomeric DNA forms parallel-stranded intramolecular G-quadruplex in K+solution under molecular crowding condition[J]. J Am Chem Soc, 2007, 129(36): 11185–11191

      2 Skolakova P, Bednarova K, Vorlickova M,et al.Quadruplexes of human telomere dG(3)(TTAG(3))(3)sequences containing guanine abasic sites[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2010, 399(2): 203–208

      3 Pasternak A, Wengel J. Modulation of I-motif thermodynamic stability by the introduction of UNA(unlocked nucleic acid) monomers[J].Bioorg Med Chem Lett, 2011, 21(2): 752–755

      4 Li X, Peng Y H, Ren J S,et al. Carboxyl-modified single-walled carbon nanotubes selectively induce human telomeric I-motif formation[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2006, 103(52): 19658–19663

      5 Moyzis R K, Buckingham J M, Cram L S,et al. A Highly conserved repetitive DNA-sequence, (Ttaggg)N, present at the telomeres of human-chromosomes[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1988, 85(18): 6622–6626

      6 Greider C W. Telomerase activity, cell proliferation, and cancer[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1998, 95(1):90–92

      7 Zhu C F, Wen Y Q, Li D,et al. Inhibition of the in vitro replication of DNA by an Aptamer-protein complex in an autonomous DNA machine[J]. Chem Eur J, 2009, 15:11898–11903

      8 Hurley L H. Secondary DNA structures as molecular targets for cancer therapeutics[J]. Biochem Soct,2001, 29:692–696

      9 Phan A T, Mergny J L.Mergny, Human telomeric DNA:G-quadruplex, I-motif and Watson±Crick double helix[J].Nucleic Acids Research, 2002, 30(21): 4618–4625

      10 Shi S, Zhao J, Geng X T,et al. Molecular "light switch"for G-quadruplexes and I-motif of human telomeric DNA:[Ru(phen)(2)(dppz)](2+)[J]. Dalton T, 2010, 39(10):2490–2493

      11 Zhang X Y, Cao E H, Sun X G,et al. Circular dichroism spectroscopic studies on structures formed by telomeric DNA sequencesin vitro[J]. Chinese Sci Bull, 2000,45(21): 1959–1963

      12 Renciuk D, Kejnovska I, Skolakova P,et al.Arrangements of human telomere DNA quadruplex in physiologically relevant K(+) solutions[J]. Nucleic Acids Research, 2009, 37(19): 6625–6634

      13 Tomasko M, Vorlickova M, Sagi J. Substitution of adenine for guanine in the quadruplex-forming human telomere DNA sequence G(3)(T(2)AG(3))(3) [J].Biochimie, 2009, 91(2): 171–179

      14 Li W, Wu P, Ohmichi T,et al. Characterization and thermodynamic properties of quadruplex/duplex competition[J]. Febs Letters, 2002, 526(1-3): 77–81

      15 周江, 袁谷.溶液 pH和陽離子對端粒 G-四鏈體 DNA形成和結(jié)構(gòu)的影響[J]. 化學(xué)學(xué)報, 2007, 65(16):1728–1732 ZHOU Jiang, YUAN Gu. Effect of pH and cations on the formation and structure of human telomeric G-quadruplex DNA[J]. Acta Chimica Sinica, 2007, 65(16): 1728–1732

      16 Hud N V, Smith F W, Anet A L,et al. The selectivity for K+versus Na+in DNA quadruplexes is dominated by relative free energies of hydration: A Thermodynamic Analysis by1H NMR?[J]. Biochemistry, 1996, 35(48):15383–15390

      17 卜曉陽, 吳敏, 周家宏, 等.光譜法研究有機農(nóng)藥污染物與 DNA的相互作用[J]. 應(yīng)用化學(xué), 2011, 28(4):458–463 BO Xiaoyang, WU Min, ZHOU Jiahong,et al.Spectrometric study on the interactions between organic pesticide pollutants and DNA[J]. Chinese Journal of Applied Chemistry, 2011, 28(4): 458–463

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