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      低濃度亞硝酸鈉預(yù)處理對(duì)高濃度亞硝酸鈉損傷PC12細(xì)胞的保護(hù)作用

      2012-11-12 07:24:02李延紅周占業(yè)皇甫超申
      關(guān)鍵詞:低濃度高濃度亞硝酸鹽

      李延紅,周占業(yè),史 齊,皇甫超申

      (河南大學(xué)1.醫(yī)學(xué)院環(huán)境醫(yī)學(xué)研究所,2.第一附屬醫(yī)院,河南開(kāi)封 475004)

      亞硝酸鹽廣泛存在于自然界水體、土壤、植物中,常用于食品保鮮劑和工業(yè)防腐劑,也被用于臨床治療氰化物中毒。亞硝酸鹽對(duì)人體健康的影響目前存在很大爭(zhēng)議[1]。過(guò)去普遍認(rèn)為亞硝酸鹽可以導(dǎo)致高鐵血紅蛋白血癥并有致癌風(fēng)險(xiǎn),現(xiàn)在不斷有研究表明,低濃度亞硝酸鹽具有保護(hù)血管內(nèi)皮、降血壓和預(yù)防動(dòng)脈粥樣硬化等對(duì)人體有利的一面[2]。這就使得亞硝酸鹽這一古老的化合物有了新的研究?jī)r(jià)值。有實(shí)驗(yàn)表明,環(huán)境化學(xué)毒物或物理?yè)p傷因子對(duì)組織細(xì)胞的作用效應(yīng)呈現(xiàn)出低濃度和高濃度作用相反的現(xiàn)象,該現(xiàn)象被稱為低促效應(yīng)(hormesis)[3],化合物在低促效應(yīng)濃度范圍內(nèi)引起的促進(jìn)效應(yīng)超過(guò)對(duì)照組10%的濃度稱之為最低促進(jìn)濃度,用該濃度化合物預(yù)處理組織細(xì)胞,可以使其耐受該化合物高濃度的毒害作用[4]。為此,本文研究了低濃度亞硝酸鈉(NaNO2)預(yù)處理對(duì)高濃度NaNO2損傷PC細(xì)胞的保護(hù)作用。

      1 材料與方法

      1.1 試劑和儀器

      大鼠腎上腺嗜鉻細(xì)胞瘤未分化型細(xì)胞株P(guān)C12購(gòu)自中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所。硝酸鈉(NaNO3)、NaNO2,無(wú)水乙醇,天津市晨?;瘜W(xué)試劑廠(分析純);高糖DMEM培養(yǎng)基(Gibco);胎牛血清,杭州四季青生物公司產(chǎn)品;羧基-2-(4-羧基)苯基-4,4,5,5-四甲基咪唑啉-1-氧-3-氧化物(carboxy-2-(4-carbo-xyphenyl)-4,4,5,5-tetramethylimidazoline-1-oxyl-3-oxide,c-PTIO)、二甲亞砜(DMSO)、噻唑藍(lán)(MTT)、Hoechst33258和碘化丙啶(propodium iodiole,PI)購(gòu)自Sigma公司。FITC-AnnexinⅤ/PI細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒(Bender)增強(qiáng)型化學(xué)發(fā)光(enhanced chemiluminescence,ECL)顯色試劑盒、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔IgG及β肌動(dòng)蛋白抗體(碧云天公司)??梢?jiàn)光法丙二醛(malondialdehyde,MDA)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過(guò)氧化氫酶(catalase,CAT)和谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)測(cè)定試劑盒(南京建成生物工程研究所)。BX51型熒光顯微鏡(日本Olympus公司);FACS Salibur型流式細(xì)胞儀(美國(guó)BD公司)。

      1.2 細(xì)胞培養(yǎng)

      PC12細(xì)胞生長(zhǎng)在含10%的胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中,置5%CO237℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)。3 d換液1次為1代。

      1.3 MTT分析細(xì)胞存活率

      PC12細(xì)胞于5%CO237℃恒溫培養(yǎng)。至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,用胰酶和EDTA消化,調(diào)整細(xì)胞數(shù)為1×107L-1接種到96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,每孔0.2 ml,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后換液。根據(jù)前期實(shí)驗(yàn)結(jié)果[5],本實(shí)驗(yàn)分別選用NaNO20.14,1.4 和 45 mmol·L-1濃度組,同時(shí)設(shè)同濃度的 NaNO3或 c-PTIO 40 μmol·L-1+NaNO3組。細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)24 h,每孔加入 20 μl MTT 5 g·L-1培養(yǎng)4 h后,吸去培養(yǎng)液,每孔加入150μl DMSO于振蕩器上振搖,待藍(lán)色晶體完全溶解后,在酶標(biāo)儀上測(cè)定570 nm處的吸光度(absorbance,A)。以含有等體積的培養(yǎng)液和DMSO的無(wú)細(xì)胞孔測(cè)得的吸光度值為空白對(duì)照。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。細(xì)胞存活率(%)=(A處理組-A空白組)/(A對(duì)照組-A空白組)×100% 。

      1.4 活細(xì)胞熒光染色判定細(xì)胞生存狀態(tài)

      實(shí)驗(yàn)分4組:正常對(duì)照組,只加等體積的培養(yǎng)液;NaNO245 mmol·L-1組,NaNO245 mmol·L-1處理細(xì)胞2 h;預(yù)處理組,NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理24 h,然后再用 NaNO245 mmol·L-1處理 2 h;NO 清除組,c-PTIO 40 μmol·L-1+NaNO20.14 mmol·L-1共同預(yù)處理細(xì)胞24 h后再用NaNO245 mmol·L-1作用2 h。將不同處理的細(xì)胞培養(yǎng)在預(yù)置蓋玻片上,PBS洗3次,用特異結(jié)合DNA的熒光染料Hoechst 33258和PI聯(lián)染進(jìn)行活細(xì)胞聯(lián)染。加Hoechst33258 10 mg·L-1及 PI 10 mg·L-1,37℃染色 15 min 后,紫外激發(fā),熒光顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)變化,CCD拍片?;罴?xì)胞呈淺藍(lán)色,凋亡細(xì)胞呈凝集的紅色或亮白色。熒光顯微鏡下隨機(jī)選擇5個(gè)視野,每張爬片計(jì)數(shù)細(xì)胞不少于1000個(gè),實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,以凋亡細(xì)胞數(shù)與計(jì)數(shù)的總細(xì)胞數(shù)百分比表示細(xì)胞凋亡率。

      1.5 FITC-AnnexinⅤ/PI雙染法流式細(xì)胞術(shù)測(cè)定細(xì)胞凋亡

      按實(shí)驗(yàn)要求處理后,分別收集各組細(xì)胞到10 ml的離心管中,每樣本細(xì)胞數(shù)為1×109L-1,1000 ×g離心5 min,棄去培養(yǎng)液。用孵育緩沖液洗滌1次,1000×g離心5 min,用100μl的標(biāo)記溶液重懸細(xì)胞,室溫下避光孵育15 min,1000×g離心5 min,沉淀細(xì)胞孵育緩沖液洗1次。加入AnnexinⅤ-FITC/PI溶液5 μl,4℃下孵育20 min,最后補(bǔ) PBS 400 μl,以流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。每個(gè)樣品檢測(cè)1萬(wàn)個(gè)細(xì)胞,用Cellquest軟件進(jìn)行細(xì)胞凋亡分析。

      1.6 細(xì)胞內(nèi)MDA含量和GSH-Px,SOD,CAT酶活性分析

      實(shí)驗(yàn)步驟按試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行,比色法測(cè)定細(xì)胞內(nèi)MDA,GSH-Px含量和SOD,CAT酶活性。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

      1.7 Western印跡法檢測(cè)相關(guān)蛋白表達(dá)

      細(xì)胞于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期進(jìn)行各種處理,作用24 h后用RIPA 200μl充分裂解提取蛋白,考馬斯亮藍(lán)G-250法測(cè)樣品蛋白濃度,均衡每組蛋白濃度后,以12%SDS-PAGE凝膠電泳分離。電轉(zhuǎn)移蛋白至NC膜,5%脫脂奶粉封閉過(guò)夜,加入各種一抗(1∶200)于4℃封閉袋中孵育過(guò)夜,二抗(1∶4000)孵育1 h。化學(xué)發(fā)光法顯示結(jié)果,壓片曝光,凝膠圖像分析系統(tǒng)拍照,并測(cè)定蛋白質(zhì)印跡條帶積分吸光度值(integrated absorbance,IA),以 與β肌動(dòng)蛋白的IA比值為蛋白相對(duì)表達(dá)量。

      1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

      2 結(jié)果

      2.1 NaNO2對(duì)PC12細(xì)胞存活率的影響

      圖1 結(jié)果顯示,NaNO20.14 和 1.4 mmol·L-1組細(xì)胞存活率較正常對(duì)照組分別增加15%和56%,NaNO245 mmol·L-1組細(xì)胞存活率較正常對(duì)照組減少46%(P<0.05)。同時(shí)加入c-PTIO后,細(xì)胞存活率較相應(yīng)濃度單獨(dú)NaNO2組明顯降低(P<0.05),但NaNO2對(duì)細(xì)胞存活率的低濃度促進(jìn)高濃度抑制現(xiàn)象依然存在,未恢復(fù)至正常對(duì)照組水平(P<0.05)。NaNO30.14 ~45 mmol·L-1對(duì)細(xì)胞存活無(wú)明顯影響。

      Fig.1 Effect of sodium nitrite(NaNO2)on the survival rate of PC12 cells.PC12 cells were cultured with drugs for 24 h.Survival rate(%)=(A treatment - A blank)/(A control - A blank).ˉx ± s,n=3.*P <0.05,compared with normal control(0 mg·L -1)group;#P <0.05,compared with NaNO2 group.

      2.2 低濃度NaNO2預(yù)處理對(duì)高濃度NaNO2損傷PC12細(xì)胞存活率的影響

      如圖2所示,與正常對(duì)照組相比,NaNO245 mmol·L-1處理組細(xì)胞存活率明顯下降(P <0.05)。與NaNO245 mmol·L-1組相比,預(yù)處理組細(xì)胞存活率明顯增加(P<0.05)。與預(yù)處理組相比,預(yù)處理時(shí)同時(shí)加入c-PTIO 40μmol·L-1的NO清除組細(xì)胞存活率進(jìn)一步明顯下降(P<0.05)。

      Fig.2 Effect of NaNO2 0.14 mmol·L -1 preconditioning on cell survival exposed to NaNO2 45 mmol·L -1 by MTT.Cells were preconditioned with NaNO2 0.14 mmol· L-1 or NaNO2 0.14 mmol·L -1+c-PITO 40 μmol·L-1 for 24 h, then NaNO2 45 mmol·L -1 was added for anther 2 h cultivation.1:normal control group;2:NaNO2 group;3:NaNO2 0.14+NaNO2 45 group;4:c-PTIO+NaNO2 0.14+NaNO2 45 group.±s,n=3.*P<0.05,compared with normal control group;#P <0.05,compared with NaNO2 45 group;ΔP <0.05,compared with NaNO2 0.14+NaNO2 45 group.

      2.3 低濃度NaNO2預(yù)處理對(duì)高濃度NaNO2損傷PC12細(xì)胞凋亡的拮抗作用

      FITC-AnnexinⅤ/PI雙染法流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果(圖3)可見(jiàn),正常對(duì)照組PC12細(xì)胞有少量細(xì)胞凋亡,NaNO245 mmol·L-1可誘導(dǎo)大批細(xì)胞凋亡,與正常對(duì)照組相比差異顯著(P<0.05)。與NaNO245 mmol·L-1組相比,NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理組細(xì)胞凋亡率明顯減少(P<0.05);與 NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理組相比,c-PTIO+NaNO20.14+NaNO245 mmol·L-1組細(xì)胞凋亡率進(jìn)一步增高(P<0.05)。

      2.4 低濃度NaNO2預(yù)處理對(duì)NaNO2高度濃損傷PC12細(xì)胞的形態(tài)學(xué)變化

      Fig.3 Effect of NaNO2 0.14 mmol·L -1 preconditioning on cell apoptosis exposed to NaNO2 45 mmol·L -1 by FITC-annexinⅤ/PI double staining flow cytometry assay.See Fig.2 for the treatment.1:normal control group;2:NaNO2 group;3:NaNO2 0.14+NaNO2 45 group;4:c-PTIO+NaNO2 0.14+NaNO2 45 group.±s,n=3.*P<0.05,compared with normal control group;#P <0.05,compared with NaNO2 45 group;ΔP <0.05,compared with NaNO2 0.14+NaNO2 45 group.

      Hoechst33258/PI活細(xì)胞雙染結(jié)果可見(jiàn)(圖4),正常對(duì)照組細(xì)胞,生存狀態(tài)良好,有少量細(xì)胞凋亡;NaNO245 mmol·L-1處理導(dǎo)致大量細(xì)胞凋亡,凋亡率明顯高于正常對(duì)照組(P<0.05);預(yù)處理組細(xì)胞凋亡率與NaNO245 mmol·L-1組相比 ,明顯減少 (P<0.05);與預(yù)處理組相比,c-PTIO+NaNO20.14+NaNO245組細(xì)胞凋亡率明顯降低(P<0.05)。

      2.5 低濃度NaNO2預(yù)處理對(duì)高濃度NaNO2損傷PC12細(xì)胞抗氧化能力的影響

      如表1所示,與正常對(duì)照組相比,NaNO245 mmol·L-1處理組細(xì)胞內(nèi) CAT、SOD 和 GSH-Px活性明顯降低,MDA含量升高(P<0.05);與NaNO245 mmol·L-1組相比,NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理組細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶活力明顯升高,而MDA含量明顯下降(P <0.05)。與 NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理組相比,c-PTIO 40 μmol·L-1+NaNO20.14+NaNO245組抗氧化酶活性進(jìn)一步明顯降低,MDA含量明顯升高(P<0.05)。

      Fig.4 Effect of NaNO2 0.14 mmol·L -1 preconditioning on cell nucleus morphology exposed to NaNO2 45 mmol·L -1 by Hoechst33258/PI double staining.See Fig.3 for the legend.B was the statistical results of A.±s,n=3.*P<0.05,compared with control group;#P <0.05,compared with NaNO2 45 group;ΔP <0.05,compared with NaNO2 0.14+NaNO2 45 group.

      Tab.1 Effect of NaNO2 0.14 mmol·L -1 preconditioning on activities of catalase(CAT),superoxide dismutase(SOD),glutathione peroxidase(GSH-Px)and malondialdehyde(MDA)content in PC12 cells exposed to NaNO2 45 mmol·L -1

      2.6 低濃度NaNO2預(yù)處理對(duì)高濃度NaNO2損傷PC12細(xì)胞影響

      圖5結(jié)果顯示,與對(duì)正常照組相比,NaNO245 mmol·L-1處理細(xì)胞可明顯誘導(dǎo)細(xì)胞促凋亡蛋白Bax,胱天蛋白酶9,胱天蛋白酶3表達(dá)增加,而凋亡抑制蛋白Bcl-2表達(dá)減少(P<0.05)。與NaNO245 mmol·L-1組相比,NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理組細(xì)胞促凋亡蛋白 Bax,胱天蛋白酶9和胱天蛋白酶3表達(dá)量下降,而凋亡抑制蛋白 Bcl-2表達(dá)量增加(P<0.05)。與預(yù)處理組相比,c-PTIO+NaNO20.14+NaNO245組細(xì)胞促凋亡蛋白Bax,胱天蛋白酶9和胱天蛋白酶3表達(dá)量有所增加,而凋亡抑制蛋白Bcl-2表達(dá)量有所減少(P<0.05)。

      Fig.5 Effect of NaNO2 0.14 mmol·L-1 preconditioning on the expression of apoptosis-related proteins in cells exposed to NaNO2 45 mmol·L-1 by Western blotting assay.See Fig.3 for the legend.Bwas the statistical results of A.±s,n=3.*P<0.05,compared with normal control group;#P <0.05,compared with NaNO2 45 mmol·L -1 group;ΔP <0.05,compared with NaNO2 0.14+NaNO2 45 group.

      2.7 低濃度NaNO2預(yù)處理對(duì)高濃度NaNO2損傷PC12細(xì)胞HIF-1α蛋白表達(dá)的影響

      圖6結(jié)果顯示,與正常對(duì)照組相比,NaNO245 mmol·L-1組細(xì)胞 HIF-1α 表達(dá)量有所增加(P <0.05);與 NaNO245 mmol·L-1組相比,NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理組 HIF-1α 表達(dá)量明顯增加(P <0.05);與 NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理組相比,c-PTIO+NaNO20.14+NaNO245 組 HIF-1α 表達(dá)量進(jìn)一步明顯下降(P<0.05)。

      Fig.6 Effect of NaNO2 0.14 mmol·L -1 preconditioning on the expression of hypoxia-inducible factor-1α(HIF-1α)in PC12 cells exposed to NaNO2 45 mmol·L -1 by Western blotting assay.See Fig.3 for the legend.Fig.B was the statistical results of Fig.A.±s,n=3.*P<0.05,compared with normal control group;#P < 0.05,compared with NaNO2 45 mmol·L -1 group;ΔP <0.05,compared with NaNO2 0.14+NaNO2 45 group.

      3 討論

      高濃度NaNO2可以造成細(xì)胞膜損害和DNA過(guò)氧化損傷,并誘導(dǎo)細(xì)胞壞死和凋亡[6],低濃度NaNO2對(duì)組織細(xì)胞卻沒(méi)有明顯的毒害作用[7]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),NaNO20.14 和 1.4 mmol·L-1對(duì) PC12 細(xì)胞存活率有促進(jìn)作用,而 NaNO245 mmol·L-1明顯抑制細(xì)胞存活率;加入c-PTIO清除培養(yǎng)體系中的一氧化氮后,細(xì)胞存活率總體有所下降,但NaNO2對(duì)細(xì)胞存活率的低濃度促進(jìn)高濃度抑制現(xiàn)象依然存在,而相同濃度的硝酸鈉對(duì)細(xì)胞活力無(wú)影響。結(jié)果提示,NaNO2可以引起PC12細(xì)胞存活率低濃度促進(jìn)效應(yīng)(低促效應(yīng))。這種現(xiàn)象很可能與一氧化氮-可溶性鳥(niǎo)苷酸環(huán)化酶-環(huán)一磷酸鳥(niǎo)苷通路激活有關(guān)[8]。在低促效應(yīng)濃度范圍內(nèi),本實(shí)驗(yàn)選用最低促進(jìn)濃度,即 NaNO20.14 mmol·L-1預(yù)處理后,細(xì)胞抗氧化能力增強(qiáng)、脂質(zhì)過(guò)氧化水平降低、線粒體凋亡通路上促凋亡蛋白表達(dá)下降、凋亡抑制蛋白表達(dá)升高以及細(xì)胞凋亡減少。有研究認(rèn)為這種現(xiàn)象是由于低濃度毒物預(yù)處理,細(xì)胞通過(guò)自穩(wěn)態(tài)調(diào)整,獲得了耐受更高濃度毒物的損害作用[9]。也有研究認(rèn)為低濃度NaNO2在體內(nèi)缺氧酸性環(huán)境下可以還原為一氧化氮,一氧化氮抑制線粒體呼吸鏈,減少活性氧產(chǎn)生,抑制細(xì)胞色素C釋放,從而減輕細(xì)胞過(guò)氧化損害和拮抗線粒體途徑凋亡[10]。本實(shí)驗(yàn)是在普通條件下培養(yǎng)的,培養(yǎng)液pH值由實(shí)驗(yàn)開(kāi)始時(shí)的7.3,到實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)降到6.3左右,在這種環(huán)境,培養(yǎng)體系中的亞硝酸鹽有可能部分還原為一氧化氮。用低濃度NaNO2預(yù)處理 PC12細(xì)胞,細(xì)胞獲得耐受高濃度NaNO2誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡現(xiàn)象很可能與亞硝酸根離子和一氧化氮抑制線粒體呼吸鏈復(fù)合物,抑制細(xì)胞內(nèi)氧的消費(fèi),減少活性氧產(chǎn)生,同時(shí)抑制線粒體細(xì)胞色素C的釋放,減少線粒體途徑凋亡有關(guān)。這種現(xiàn)象在NaNO2預(yù)處理拮抗缺血再灌注時(shí)活性氧誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡實(shí)驗(yàn)中也得到證實(shí)[11]。

      細(xì)胞內(nèi)HIF是一類進(jìn)化上高度保守的核轉(zhuǎn)錄因子,在缺氧條件下累積,調(diào)控其下游紅細(xì)胞生成素、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子和糖酵解等一系列與細(xì)胞低氧存活有關(guān)的基因,使細(xì)胞耐受缺氧或其他應(yīng)激環(huán)境[12]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),低濃度NaNO2預(yù)處理的細(xì)胞,HIF表達(dá)增加,這可能與低濃度亞硝酸鹽抑制細(xì)胞氧消費(fèi)有關(guān)。結(jié)果提示,低濃度NaNO2促進(jìn)細(xì)胞存活率增加,拮抗高濃度NaNO2對(duì)細(xì)胞過(guò)氧化損傷誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡現(xiàn)象,與其促進(jìn)HIF在細(xì)胞內(nèi)累積增加有關(guān)。

      低濃度NaNO2促進(jìn)PC12細(xì)胞存活率,高濃度抑制其存活率;低濃度NaNO2預(yù)處理PC12細(xì)胞可以增強(qiáng)細(xì)胞抗氧化能力,增加HIF-1α在細(xì)胞內(nèi)累積,拮抗高濃度NaNO2過(guò)氧化誘導(dǎo)的細(xì)胞線粒體途徑凋亡,亞硝酸鹽還原的一氧化氮和亞硝酸根離子在其中協(xié)同發(fā)揮了重要作用。

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