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      蜜蜂中腸一株耐氯霉素細(xì)菌的篩選與鑒定

      2012-11-28 09:58:32陳大福陳梅強(qiáng)李江紅
      中國(guó)蜂業(yè) 2012年4期
      關(guān)鍵詞:中腸氏菌克雷伯

      陳大福 陳梅強(qiáng) 李江紅 梁 勤

      (福建農(nóng)林大學(xué)蜂學(xué)學(xué)院,福州 350002)

      蜜蜂的腸道內(nèi)棲息著相當(dāng)數(shù)量的微生物類群。這些微生物對(duì)于蜜蜂的營(yíng)養(yǎng)和代謝起著重要的作用。根據(jù)微生物與蜜蜂的關(guān)系可將其大致分為兩類:病原微生物和共生菌。蜜蜂腸道內(nèi)存在一定量的病原微生物,其中細(xì)菌性病原菌主要包括擬幼蟲(chóng)芽孢桿菌、蜂房球菌、尤瑞狄斯桿菌、糞鏈球菌、蜂房芽孢桿菌、敗血病桿菌、塵埃芽孢桿菌等。其中對(duì)于引起美洲幼蟲(chóng)腐臭病的擬幼蟲(chóng)芽孢桿菌和引起歐洲幼蟲(chóng)腐臭病的蜂房球菌的研究報(bào)道最多。2006年,戎映君等分離了一種新的蜜蜂細(xì)菌性幼蟲(chóng)病病原菌,經(jīng)分離鑒定此致病菌為腸球菌屬的屎腸球菌[1]。蜜蜂與微生物的共生是一種普遍存在的現(xiàn)象,許多共生菌對(duì)蜜蜂的生長(zhǎng)、發(fā)育起著重要作用。蜜蜂與其他昆蟲(chóng)抵御疾病可能是通過(guò)與其共生的微生物的屏蔽效應(yīng)。Evans & Armstrong的研究表明,某些共生菌對(duì)蜜蜂主要病原細(xì)菌擬幼蟲(chóng)芽孢桿菌具有抑制效應(yīng),并且共生菌可能對(duì)普遍的病原體有自然的拮抗作用[2]。

      細(xì)菌的16S rRNA因其編碼基因集“保守、變異”于一身,作為生物系統(tǒng)指標(biāo)最為合適[3]。不同種細(xì)菌基因序列的比較研究表明,16S rRNA基因在同種細(xì)菌間高度保守,因此,在細(xì)菌“種”水平的鑒定上,16S rRNA基因的全序列分析可作為“金標(biāo)準(zhǔn)”[4,5]。16S rRNA基因保守性又是相對(duì)的,在保守區(qū)間存在著9或10個(gè)變異區(qū),不同細(xì)菌屬、種間有不同程度的差異。因此,可利用保守區(qū)序列設(shè)計(jì)細(xì)菌通用引物將細(xì)菌16S rRNA片斷擴(kuò)增出來(lái),利用可變區(qū)序列的差異來(lái)對(duì)不同菌屬、菌種的細(xì)菌進(jìn)行分類鑒定[6]。

      本研究通過(guò)用含氯霉素的LB培養(yǎng)基篩選和分離蜜蜂中腸中的細(xì)菌,并運(yùn)用PCR的方法體外擴(kuò)增并克隆該細(xì)菌的16S核糖體RNA基因的片段序列,通過(guò)比對(duì)序列對(duì)細(xì)菌進(jìn)行分類鑒定。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      意大利蜜蜂(Apis mellifera ligustica)采自福建農(nóng)林大學(xué)蜂學(xué)學(xué)院教學(xué)蜂場(chǎng);菌株是從意大利蜜蜂成年工蜂中腸中篩選分離培養(yǎng)所得。

      1.2 方法

      1.2.1 蜜蜂中腸細(xì)菌的篩選分離

      制作若干含終濃度為20 μg/mL氯霉素的LB培養(yǎng)基,取成年蜜蜂中腸的內(nèi)容物,搗碎加適當(dāng)?shù)臏缇♂寯噭?,均勻涂布在培養(yǎng)基上,挑取菌斑,提取細(xì)菌基因組DNA。

      1.2.2 細(xì)菌的裂解

      用滅菌移液槍的槍頭挑取單個(gè)菌斑,加入到含有200 μl細(xì)菌裂解液和1 μl蛋白酶K的離心管中,用震蕩器將之混勻,置PCR儀中裂解反應(yīng)。反應(yīng)程序:65 ℃溫育30 min,98 ℃裂解20 min,裂解反應(yīng)結(jié)束后12000 rpm離心5 min取上清液6μl做PCR反應(yīng)模板。

      1.2.3 引物的設(shè)計(jì)與合成

      在GenBank中檢索出多種細(xì)菌的16 S rRNA基因序列,通過(guò)Blast軟件在線進(jìn)行同源性比較,在16S rRNA基因序列的保守序列區(qū)間設(shè)計(jì)通用引物。引物由上海生工生物有限公司合成。

      1.2.4 細(xì)菌16s rRNA基因片段的克隆

      1.2.4.1 聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)

      (1)反應(yīng)體系:模板DNA(細(xì)菌裂解液)6 μl,10×PCR緩沖液5 μl,dNTPs 4 μl,引物F、R各2 μl,Taq酶2μl,補(bǔ)ddH2O至50 μl。

      (2)反應(yīng)程序:98 ℃預(yù)變性3 min,95 ℃ 變性45 s、52 ℃退火合成105 s、72 ℃延伸30 s,共30個(gè)循環(huán),最后72 ℃延伸10 min,8 ℃保存。

      1.2.4.216s rRNA基因片段的克隆與測(cè)序

      本研究采用低熔點(diǎn)瓊脂糖凝膠法,用DNA快速純化回收試劑盒(北京鼎國(guó)昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司產(chǎn)品)純化回收PCR產(chǎn)物。利用pGEM-T Easy Vector SystemⅠ試劑盒(Promega)進(jìn)行載體連接與轉(zhuǎn)化,用質(zhì)??焖偬崛≡噭┖校ū本┒?guó)昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司產(chǎn)品)提取質(zhì)粒DNA,經(jīng)限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ進(jìn)行酶切鑒定。一般反應(yīng)體系為:EcoRⅠ1 μl,10×Buffer 2 μl,質(zhì)粒DNA 3 μl(≤1 μg),滅菌水補(bǔ)至20 μl。37℃溫浴反應(yīng)2~3 h。反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳后,能切出相應(yīng)片段的即為陽(yáng)性。將鑒定為陽(yáng)性克隆的菌液,委托生工生物工程有限公司進(jìn)行測(cè)序。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 引物的設(shè)計(jì)與合成

      利用Primer-BLAST軟件在線與細(xì)菌的16S rRNA基因片段序列進(jìn)行多重比對(duì)分析各序列的保守區(qū)和變異區(qū),設(shè)計(jì)并合成細(xì)菌16S rRNA基因片段序列的通用引物:

      F:5'- GAGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'R:5'- CTACGGCTACCTTGTTACGA-3'

      2.2 細(xì)菌16s rRNA基因片段序列的克隆

      2.2.1 PCR擴(kuò)增與產(chǎn)物回收

      用設(shè)計(jì)的通用引物分別對(duì)DNA樣品進(jìn)行PCR擴(kuò)增,使用DNA快速純化/回收試劑盒回收PCR產(chǎn)物,溶解于20μl的TE溶液中。取5μl回收的產(chǎn)物經(jīng)1.5 %(W/V)的瓊脂糖凝膠電泳,可見(jiàn)到1500bp左右的單一條帶非常清晰,說(shuō)明回收得率較高(圖1)。

      2.2.2 重組質(zhì)粒的酶切鑒定

      將重組質(zhì)粒DNA和原空載體質(zhì)粒DNA分別用限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ進(jìn)行酶切反應(yīng)。反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳。空載體質(zhì)粒DNA經(jīng)酶切后,僅產(chǎn)生2000bp以上的單一條帶。而重組質(zhì)粒DNA酶切產(chǎn)物中產(chǎn)生大小為750bp左右2個(gè)片段,該2個(gè)片段大小之和與1500bp左右的PCR產(chǎn)物基本相等(圖2),酶切產(chǎn)生2個(gè)片段可能是PCR產(chǎn)物片段內(nèi)部還有一個(gè)EcoRⅠ位點(diǎn)。因此,該重組質(zhì)粒即可鑒定為陽(yáng)性克隆。

      圖1 細(xì)菌DNA的PCR產(chǎn)物純化回收凝膠電泳圖譜

      2.3 16S rRNA基因片段的序列分析

      將鑒定為陽(yáng)性的克隆C3委托上海生工生物工程公司進(jìn)行測(cè)序。測(cè)序結(jié)果表明所克隆的16S rRNA基因片段為1506 bp的DNA片斷(圖3)。使用RESEARCH軟件查找結(jié)果如預(yù)計(jì)一樣在第666位有一個(gè)EcoRI酶切位點(diǎn),經(jīng)EcoRI酶切為665bp和835bp的2個(gè)片段。

      圖2 重組質(zhì)粒酶切鑒定

      圖3 細(xì)菌16S rRNA基因片段序列

      2.4 耐氯霉素細(xì)菌菌株的鑒定

      將所測(cè)得序列與NCBI(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)GenBank收錄細(xì)菌16S rRNA基因序列進(jìn)行比對(duì)。結(jié)果可以搜索到大量細(xì)菌的16S rRNA基因片段序列與所測(cè)得細(xì)菌的序列有較高的相似度(圖4)。該序列與GQ259887序列吻合度100 %,證明該序列為克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae)的特有序列,說(shuō)明從蜜蜂中腸中培養(yǎng)分離出的耐氯霉素細(xì)菌菌株為克雷伯氏菌。

      圖4 所測(cè)細(xì)菌的16S rRNA基因片段序列與數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)結(jié)果

      4 討論

      (1)細(xì)菌16S rRNA鑒定方法作為分子生物學(xué)快速發(fā)展的產(chǎn)物,與傳統(tǒng)的診斷方法相比,準(zhǔn)確性和靈敏度均有了較大的提高。由于l6S rRNA序列的保守性和存在的普遍性,以及核酸序列本身的穩(wěn)定性,序列分析的重現(xiàn)性極高,基于當(dāng)今分析技術(shù)的改進(jìn),應(yīng)用16S rRNA作為分子指標(biāo),可以實(shí)現(xiàn)快速、微量、準(zhǔn)確簡(jiǎn)便的對(duì)微生物進(jìn)行分類鑒定。

      (2)本研究從蜜蜂中腸分離出的耐氯霉素菌株經(jīng)鑒定為克雷伯氏菌??死撞暇鸀槟c桿菌科中一類有莢膜的革蘭氏陰性桿菌,對(duì)外界抵抗力強(qiáng)對(duì)多數(shù)抗生素易產(chǎn)生耐藥性。與腸桿菌科其他細(xì)菌一樣,具菌體抗原和莢膜抗原??死撞暇鷱V泛存在于人和動(dòng)物腸道、呼吸道以及水、土壤和谷物中[7]。Singh等[8]于1992年在魚(yú)、蝦、蟹等水產(chǎn)類食品中檢測(cè)到肺炎克雷伯菌,但未對(duì)其致病性展開(kāi)研究。還有一些學(xué)者先后在患病石龜、中華鱉(Trionyx sinensis)、鰱(Hypophthalmichthys molitrix)中分離到該菌[9,10];在蜜蜂體內(nèi)尚屬首次發(fā)現(xiàn)該菌。一般情況下克雷伯氏菌不致病,因?yàn)樗且环N條件致病菌,對(duì)畜禽危害不大,發(fā)病與寄主防御功能缺陷及誘發(fā)因素有關(guān)。目前尚未發(fā)現(xiàn)有克雷伯氏菌引起的蜜蜂疾病,但不排除有和其他細(xì)菌共同作用引起蜜蜂疾病的可能性。

      (3)本研究結(jié)果證明在蜜蜂腸道中存在某些耐藥性的菌株。這一現(xiàn)象很可能是在養(yǎng)蜂生產(chǎn)過(guò)程中給蜂群防病、治病而長(zhǎng)期、頻繁使用抗生素造成的。蜂群用藥過(guò)程中所使用的抗生素對(duì)蜜蜂腸道細(xì)菌,無(wú)論是共生菌還是病原菌均產(chǎn)生影響,長(zhǎng)此以往,蜜蜂腸道細(xì)菌都會(huì)對(duì)所使用的抗生素產(chǎn)生一定程度的耐藥性。因此,在蜂群中不科學(xué)使用抗生素,不僅會(huì)使蜜蜂病原菌產(chǎn)生耐藥性,影響防治效果,還會(huì)對(duì)蜂產(chǎn)品質(zhì)量產(chǎn)生嚴(yán)重影響。這就要求在養(yǎng)蜂生產(chǎn)過(guò)程中謹(jǐn)慎用藥,避免大劑量使用,長(zhǎng)期使用,以延緩病原菌耐藥性的產(chǎn)生。

      [1]戎映君, 蘇松坤等.一種新的蜜蜂細(xì)菌性幼蟲(chóng)病病原菌的分離鑒定.微生物學(xué)報(bào), 2006, 46(6): 994-998.

      [2]Evans JD, Armstrong TN.Antagonistic interactions between honey bee bacterial symbionts and implications for disease.BMC Ecol,2006, 6: 4.

      [3]Perea EJ.Orat flora in the age of molecular biology.Med Oral Patol Oral Cir Bucal, 2004, 9(Supp1): 6-10.

      [4]Woo PC, Ng KH, Lau SK, et a1.Usefulness of the MicroSeq 50016S ribosomal DNA-based bacterial identification system for identification of clinically significant bacterial isolates with ambiguous biochemical profiles.J Clin Microbial, 2003, 41(5): 1996-2001.

      [5]Lau SK, Woo PC, Woo GK, et al.Catheter-related mycobacterium identified by 16S rRNA gene sequencing.J Clin Microbiol, 2002,40(7): 2681-2685.

      [6]姜靜, 楊圣輝, 王松靈.16S rRNA基因及16S-23S rRNA基因間隔區(qū)在口腔微生物鑒定中的應(yīng)用.口腔醫(yī)學(xué), 2006, 14(4): 297-299.

      [7]黃印堯, 萬(wàn)沅, 陳信忠, 等.雞源肺炎克雷伯氏菌的致病性和生物學(xué)特性研究.福建畜牧獸醫(yī), 1996, 18(2): 4-5.

      [8]Singh BR, Kulshreshtha SB.Preliminary examinations on the enterotoxigenicity of isolates of Klebsiella pneumoniae from sea foods.Int J Food Microbiol, 1992, 16(4): 349-352.

      [9]陶錦華, 李康然, 韋平.石龜肺炎克雷伯氏菌感染的診斷與防治.廣西畜牧獸醫(yī), 2002, 18(6): 20.

      [10]徐海圣, 舒妙安.中華鱉肺炎克雷伯氏菌病的病原研究.浙江大學(xué)學(xué)報(bào), 2002, 29(6): 702-706.

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