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      PRRSV經(jīng)典株與變異株RT-PCR鑒別方法的建立及應用

      2013-08-08 08:08:50俞建萍翁燕梅劉昌林
      福建畜牧獸醫(yī) 2013年6期
      關(guān)鍵詞:病料致病性變異

      俞建萍 翁燕梅 劉昌林

      (1.福州大北農(nóng)生物技術(shù)有限公司 福州 350014;2.南昌市農(nóng)業(yè)科學院 南昌 330006)

      豬繁殖與呼吸綜合征(porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS),又稱“豬無名高熱病”、“豬高熱綜合征”、“豬高熱征”,是20 世紀80年代末發(fā)現(xiàn)的一種傳染性疾病,能引起妊娠母豬的流產(chǎn)、死胎、木乃伊胎等生殖障礙,以及各種年齡豬(特別是仔豬)的呼吸道疾病[1],具有傳播速度快、流行范圍廣、感染發(fā)病率高、治療效果較差、經(jīng)濟損失大等特點。該病于1987年初次暴發(fā)于美國[2-3]。隨后短短幾年時間內(nèi),迅速遍及全球各養(yǎng)豬業(yè)發(fā)達的國家和地區(qū)(北美洲,1987;歐洲,1990;亞洲,1991)[1-5]。國內(nèi)1996年郭寶清等[6]首次分離到PRRSV,并命名為CH-1a,從而證實該病存在于我國。現(xiàn)在幾乎所有的養(yǎng)豬國家都流行PRRSV[7-8]。試驗通過高致病性豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)Nsp2 基因的缺失信息,設(shè)計3條特異性引物,并優(yōu)化各種條件,建立了一種能夠鑒別診斷高致病性PRRSV和經(jīng)典PRRSV的RT-PCR 方法,能夠準確、快速地對養(yǎng)殖場提供PRRS 診斷,具有臨床實用性。

      1 材料與方法

      1.1 病料來源 PRRSV 臨床疑似病料均由江西農(nóng)業(yè)大學獸醫(yī)院提供,為病死豬的肺、淋巴結(jié)和肝臟等組織。

      1.2 分子生物學試劑及主要藥品 PCR 擴增試劑盒、RNA 反轉(zhuǎn)錄試劑盒、Trizol、100 bpDNA Marker均購自上海生工生物工程技術(shù)服務有限公司,RNA提取試劑盒購自O(shè)MEGA 公司,氯仿、無水乙醇、異丙醇、醋酸鈉等其他試劑均為分析純試劑。

      1.3 引物合成設(shè)計 根據(jù)高致病性豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)Nsp2 基因的缺失信息,設(shè)計了3條(兩對)特異性引物(由上海生工合成):P1-P3 引物對既能擴增PRRSV 經(jīng)典株又能擴增PRRSV 變異株;P2-P3 引物只能擴增PRRSV 變異株。

      P1:TGTCCCAGCTCAGCGCAGCAAGC(上游引物);

      P2:GCCGTAGAACTGTGACAACAACG(上游引物);

      P3:CACAGGGAGCTGCTTGATGACAC(下游引物)。

      1.4 方 法

      1.4.1 病毒RNA的提取 將病死豬的腎臟、脾臟、淋巴結(jié)各取少量放入裝有PBS的玻璃勻漿器中進行磨碎,4 ℃,12 000 r/min 離心,棄上清,然后根據(jù)RNA 提取試劑盒說明書進行操作提取RAN,最后加40μL DEPC 水溶解RNA,55~60 ℃溫育10 min,-80 ℃保存?zhèn)溆没蛄⒓词褂谩?/p>

      1.4.2 RT-PCR 反應

      1.4.2.1 反轉(zhuǎn)錄體系(體積為20μL) 見表1。

      表1 反轉(zhuǎn)錄體系表

      按以上順序?qū)⑸鲜龇磻阂来渭尤氲紼P 管中,輕輕混勻。

      1.4.2.2 反轉(zhuǎn)錄條件 42 ℃孵育30 min,85 ℃加熱5 min 失活TransScript RI,共一個循環(huán),反應在PCR 擴增儀上進行。合成的cDNA 立即使用或-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.4.2.3 PCR 反應組成(體積為50μL)見表2。

      按表中順序?qū)⒎磻阂来渭尤氲絇CR 反應管中,輕輕混勻。

      1.4.2.4 反應條件 94 ℃預變性5 min;94 ℃變性30 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共40個循環(huán);最后一個循環(huán)結(jié)束后72 ℃延伸10 min。PCR 產(chǎn)物立即使用或4 ℃保存。

      1.4.2.5 電泳條件 取8μL RT-PCR 擴增產(chǎn)物與少許上樣緩沖液充分混合,在80 伏電壓、40 毫安條件下電泳40 min 左右,于1.5%瓊脂糖凝膠上進行電泳然后在紫外線燈下觀察結(jié)果并拍照。

      表2 PCR 反應體系

      2 結(jié) 果

      2.1 擴增結(jié)果檢測 如圖1 所示,PCR 擴增出的PRRS 經(jīng)典株目的基因大小529 bp 與預期大小相符,PRRS 變異株目的基因大小218 bp 與預期相符。

      圖1 PRRSV的PCR 擴增結(jié)果

      2.2 擴增片段的特異性鑒定 PCR 產(chǎn)物純化后送上海生工生物工程技術(shù)服務有限公司進行測序,對所測序列進行同源性分析,由引物P1、P3 擴增的529 bp 左右基因序列與GenBank 中已發(fā)表的PRRSV 經(jīng)典株核酸序列同源性在93%以上;由引物P1、P3 擴增的439 bp 左右基因序列與GenBank 中已發(fā)表的高致病性PRRSV 核酸序列同源性在94%以上;由引物P2、P3 擴增的218 bp 左右基因序列與GenBank 中已發(fā)表的高致病性PRRSV 核酸序列同源性在94%以上。結(jié)果提示本試驗產(chǎn)物具有良好的特異性,該方法進行臨床組織病料中高致病性PRRSV和經(jīng)典PRRSV的檢測是可行的。

      2.3 臨床病料中的檢測結(jié)果 283 份豬“豬高熱病”病料,分別收集于2009年2月份到2009年12月份,來自于南昌、宜春、九江、新余、吉安等地區(qū)的發(fā)病豬場(病料的具體情況見表3)。

      表3 283 份病料基本情況

      從表3 中可以看出,感染的陽性病料主要為單純PRRSV 變異株感染,共計163 份,占病料總數(shù)的57.60%。

      2.4 部分病料檢測的電泳圖 部分病料檢測電泳結(jié)果如圖2和圖3 所示。

      圖2 部分病料檢測的電泳圖

      圖3 部分病料檢測的電泳圖

      3 討論

      用于PRRSV 診斷的方法主要有病毒的分離法、血清學方法(IFA、ELISA、IPMA、SN)和RT-PCR等方法[9]。血清學方法中IFA和ELISA 方法應用較廣泛,IFA 方法需要熒光顯微鏡且結(jié)果通過肉眼觀察,有一定的主觀性;ELISA 主要用于檢測抗體,血清學方法不能區(qū)分高致病性PRRSV和經(jīng)典PRRSV;病毒分離法是一種傳統(tǒng)的檢測方法,但病毒分離所需時間長,因此,病毒分離法不適合用于該病的快速診斷。

      本試驗對幾十株P(guān)RRSV 經(jīng)典毒株和變異毒株的Nsp2 基因序列進行分析,根據(jù)PRRSV Nsp2 基因的缺失信息,設(shè)計了3條特異性引物,通過對PCR 體系中引物、dNTP 濃度、Mg2+濃度以及溫度、時間以及循環(huán)次數(shù)等條件進行優(yōu)化,建立了能夠鑒別診斷高致性PRRSV和經(jīng)典PRRSV的RT-PCR 方法。

      近年來,部分省市和地區(qū)的生豬在高溫季節(jié)都不同程度地發(fā)生“豬高熱病”,該病特征是體溫升高至41 ℃以上,呈稽留熱,厭食、倦怠、皮膚發(fā)紅、呼吸急促等。多數(shù)病程長達7 d 以上,或反復發(fā)作,發(fā)病率和死亡率都較高,給豬養(yǎng)殖業(yè)造成較大經(jīng)濟損失。為預防和控制該疾病的再次流行,保障養(yǎng)豬業(yè)持續(xù)健康發(fā)展,有必要了解臨床病例中PRRSV 經(jīng)典株和PRRSV 變異株的感染情況。從表3 中可以看出,在283 份病料中有204 份結(jié)果為PRRSV 陽性,陽性率72.08%。單純PRRSV 變異株感染163 份,占57.60%;PRRSV 經(jīng)典株與PRRSV 變異株混合感染39 份,占13.18%;單純PRRSV 經(jīng)典株感染僅為2 份,僅占0.71%。由此說明目前主要流行的還是高致病性PRRSV,PRRSV 變異株陽性率很高,可能與該病毒在豬群中的持續(xù)感染特性有關(guān)。感染中存在部分PRRSV 經(jīng)典株與PRRSV 變異株混合感染,但是單純的PRRSV 經(jīng)典株感染情況卻極其少,然而由于不能鑒定疫病中PRRSV 經(jīng)典株到底是野毒感染還是疫苗株,因此,不能推測出PRRSV 經(jīng)典株在“高熱病”中的致病地位。通過對臨床樣品的檢測表明該方法能夠準確地診斷高致病性PRRSV,且具有快速、敏感和特異的特點,具有臨床實用性。

      [1]Goyal S M.Porcine reproductive and respiratory syndrome[J].J Vet Diagn Invest,1993(5):656-664.

      [2]Dea S,Bilodeau R,Sauvageau R,et al.Virus isolation from farms in Quebecexperiencing severeoutbreaks of respiratory and reproductive problems[C].Denver,Colo,1991:67-72.

      [3]White W.Blue ear disease of pigs[J].Vet Res,1991,128:574.

      [4]Loula T.Mystery pig disease[J].Agri-practice,1991,12:23-24.

      [5]楊漢春,管山紅,尹曉敏,等.豬繁殖與呼吸綜合征病毒的分離與初步鑒定[J].中國獸醫(yī)雜志,1997,23(10):9-10.

      [6]郭寶清,陳章水.應用間接免疫熒光法從國內(nèi)生殖障礙豬群中檢測生殖和呼吸綜合征陽性抗體的研究[J].中國預防獸醫(yī)學報,1999,21(6):427-429.

      [7]Wensvoort G,Terpstra C,Pol J,et al.Mystery swine disease in the Netherlands:the isolation of Lelystad virus[J].J Vet Q,1991,13:121-130.

      [8]Collins J E,Benfield D A,Christianson W T,et al.Isolation of swine infertility and respiratory syndrome virus(isolate ATCC VR -2332)in North America and experimental reproduction of disease in gnotobiotic pigs[J].J Vet Diag Invest,1992(4):117-126.

      [9]Jusa E R,Inaba Y,Kouno M,et a1.Slow-reaction and complement requiring neutralizing antibody in swine infected with porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRS)virus[J].J Vet Med Sci,1996,58:749-753.

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