連昕 陳娟 馮愛平 曾敬思 鄭岳臣
(1.華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院附屬協(xié)和醫(yī)院皮膚科,武漢 430022;2.華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院附屬協(xié)和醫(yī)院超聲影像科,武漢 430022)
等離子體(Plasma)是氣體在加熱或強電磁場作用下電離產(chǎn)生的氣體云[1]。常壓等離子體是在非真空條件下獲得的,按照帶電粒子溫度的相對高低分為高溫和低溫等離子體,常壓低溫等離子體又稱為APNP(Atmospheric pressure non-equilibrium plasma,APNP)。它以射頻電容耦合的方式在大氣壓下產(chǎn)生,其溫度低,等離子體面積較大而均勻,產(chǎn)生的等離子體活性高,且對活體組織無損傷[2-3]。國內(nèi)外大量最新研究表明,等離子體有很強的殺滅微生物的作用,但對于其殺真菌效果、參數(shù)選擇和機制則研究較少。本文旨在通過觀察不同放電氣體、作用時間和作用距離的APNP對白念珠菌的殺滅效果及作用后菌體的超微結(jié)構(gòu)變化,初步了解其對真菌的殺滅作用、參數(shù)選擇及作用機制,為其應(yīng)用于臨床消毒殺菌提供實驗基礎(chǔ)。
白念珠菌標準株C1a,由華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院附屬協(xié)和醫(yī)院皮膚科真菌室提供。凍干菌種融化后,復(fù)蘇劃線接種于沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基平皿,至少傳代2次。取典型單菌落,以無菌生理鹽水稀釋,電動混合器振蕩20 s,使真菌孢子懸浮均勻,血細胞計數(shù)板計數(shù),4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
此裝置基于DBD(電介質(zhì)阻擋放電),當在進氣口通入He/O2的混合氣體時,在噴嘴末端將產(chǎn)生羽毛狀的APNP噴流。實驗中采用脈沖直流電源,放電電壓8 000 V,輸出頻率10 kHz,脈寬1 600 ns。
取制備好的菌液,調(diào)整菌懸液濃度為1×105~1×106/mL。取無菌載玻片,吸取10 μL菌懸液均勻涂布并晾干。標本分為1、2、3組,1組用于比較不同氣體流量的殺菌效果,2組用于比較不同作用距離的殺菌效果,3組用于比較不同作用時間處理后的殺菌效果。以上各組參數(shù)設(shè)置如表1所示,每不同參數(shù)小組均為5個載玻片標本。處理后的5個載玻片標本中,2個用于掃描電鏡和透射電鏡觀察,另外3個經(jīng)清洗后稀釋,并接種于沙氏培養(yǎng)基平皿,置于37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每天觀察菌落生長情況,并于培養(yǎng)72 h后采用平板計數(shù)法獲得處理后各標本的菌落形成單位(Colony Forming U-nit,CFU),計算3個標本的平均值作為最終CFU。1.4 APNP噴流處理后白念珠菌超微結(jié)構(gòu)觀察
實驗組及對照組標本分別經(jīng)日立S-570型掃描電鏡及FEI TEcnai G212型透射電鏡觀察并拍照。
表1 各實驗組等離子體作用參數(shù)Tab.1 Action parameters of APNP flow for each experimental group
每24 h觀察菌落生長情況,共觀察72 h。等離子體處理24 h后,所有平皿中只有對照組長出細沙狀菌落;48 h后處理組可見稀疏菌落生長;72 h后平皿均出現(xiàn)奶酪樣乳白色菌落,處理組與對照組相比菌落明顯稀疏(見圖1)。
圖1 經(jīng)APNP處理的白念株菌標本72 h后的生長情況:a.1-A組(對照組),b.1-B 組,c.2-B 組Fig.1 Growth situation of Candida albicans strains,72 hours after managed with APNP
不同氣體流量的比較(1組):72 h后對照組菌落分布均勻,大小一致,處理組的平皿菌落稀疏,與對照組相比,菌落生長明顯被抑制。且隨著放電氣體中氧氣含量增加,抑制效果更加明顯。對菌落生長的抑制作用強弱依次為:He/O2流量2/0.06 L/min>2/0.04 L/min>2/0.02 L/min(見圖2a)。
不同作用距離的比較 (2組):在相同的氣體流量和作用時間下,隨著等離子體噴嘴與標本間距離的減小,其作用后菌株生長抑制更加明顯(見圖2b)。
不同作用時間的比較 (3組):選擇氣體流量參數(shù) He/O2為2/0.06 L/min,作用距離為1 cm,作用時間分別為2 min、3.5 min、5 min 和 10 min。與對照組相比,處理組菌落稀疏,處理時間越長抑制作用越明顯。處理3.5 min后的標本菌落生長即明顯被抑制,隨著時間的延長,菌落逐漸稀疏,作用10 min后標本幾乎無菌生長。不加電壓,僅噴射He/O2氣體的標本菌落生長情況與對照組無區(qū)別(見圖2c)。
圖2 APNP作用后72 h不同氣體流量 (a)、作用距離 (b)、作用時間(c)組白念珠菌CFUFig.2 CFU of Candida albicans strains,72 hours after managed with APNP of different gas flow(a),operation distance(b)and action time(c)respectively
以3 組 (3-A、3-D、3-E、3-F 組)為例,掃描電鏡下對照組(3-A組)白念珠菌孢子形態(tài)飽滿,細胞壁完整,輪廓清楚,大小形態(tài)正常,APNP作用后菌體結(jié)構(gòu)有明顯改變,等離子體作用3.5 min(3-D組)后菌體體積增大,細胞表面皺縮不平,細胞壁分層,細胞壁外膜有嚴重皺折、剝脫及裂痕;作用5 min(3-E組)的菌體損傷更加明顯,細胞壁裂痕明顯,且部分細胞干癟,提示細胞壁已破裂,細胞質(zhì)外漏;作用10 min(3-F組)的菌體胞壁呈碎片狀并伴有細胞質(zhì)的流出,菌體間出現(xiàn)融合現(xiàn)象,菌體間隔模糊,細胞形態(tài)難以辨認(見圖3)。
透射電鏡下(見圖4)正常白念珠菌菌體形態(tài)完好,呈圓形或橢圓形,細胞壁質(zhì)地致密,呈低電子密度的灰白色、厚薄均勻、規(guī)則,細胞膜完整,胞質(zhì)均勻(A);處理后細胞形態(tài)明顯改變,細胞壁不完整、變薄,局部有缺損,部分在出芽部位缺損 (B),質(zhì)地疏松,部分變成高電子密度的黑灰色 (B);細胞膜不完整。局部有缺損 (B);胞質(zhì)不均勻,電子密度低,胞內(nèi)物質(zhì)少,疏松 (B、D、E),部分有空泡狀物及光亮區(qū)形成;核膜被破壞,核內(nèi)物質(zhì)散亂(F),有核固縮現(xiàn)象 (C)。
真菌是廣泛分布于自然界的微生物,引起人類發(fā)病的大多為條件致病菌。隨著免疫缺陷、抑制人群的逐漸增多,深部及系統(tǒng)性真菌感染的發(fā)病率和死亡率不斷上升,其感染早期診斷困難、治療棘手、預(yù)后不良,已經(jīng)成為血液病、器官移植、艾滋病及ICU患者的主要死因[4]。臨床上導(dǎo)致深部感染的最常見病原真菌為白念珠菌[5],其廣泛存在于與人類密切接觸的室內(nèi)外環(huán)境中以及日常生活、醫(yī)療用品上,因此免疫缺陷患者所處的環(huán)境及所使用的醫(yī)療、生活用品均要求進行嚴格的抗真菌處理。
隨著利用生物、光學(xué)、橡塑、光纖和晶體等材料的先進醫(yī)療器械及醫(yī)用材料不斷出現(xiàn),對這些材料,既不能用高溫高壓消毒處理,也不能簡單地使用放射源、紫外或其他化學(xué)方法滅菌。理想的可用于臨床的低溫滅菌技術(shù)應(yīng)該具有以下一些特性[6]:①滅菌時間短,少于傳統(tǒng)的熱力滅菌法。②滅菌溫度低于50℃。③能夠滿足多種物體的滅菌需要。④滅菌過程對于操作人員、患者和被滅菌物體都應(yīng)是無害的。低溫等離子體滅菌法能滿足以上要求,并且在對物體進行有效滅的情況下,對物體的損害最小[7]。
本實驗證實,APNP對于臨床常見致病真菌白念珠菌具有明顯的殺滅作用,且電鏡觀察發(fā)現(xiàn)處理后的白念珠菌細胞壁、細胞膜破裂,胞內(nèi)物質(zhì)外流,細胞內(nèi)物質(zhì)少、疏松,核膜被破壞、核內(nèi)物質(zhì)散亂。因此細胞壁破裂,進而導(dǎo)致胞內(nèi)物質(zhì)的損害可能是導(dǎo)致菌體死亡的原因。
等離子體主要由帶電粒子、紫外線及多種活性自由基組成,這些成分對微生物具有很強的殺滅作用。關(guān)于等離子體殺滅微生物的機理,Mendis[8]研究組指出帶電粒子可能在細胞外膜表面積累,產(chǎn)生超過細胞膜自身張力的靜電力,從而引起細胞破裂。而在本實驗中,等離子體噴流裝置使受試菌體遠離放電腔,當氣體離開發(fā)生腔之后帶電粒子很快消失,因此帶電粒子使白念珠菌細胞壁及細胞膜破裂的可能性很小。另外,本實驗所采用的等離子體噴流裝置產(chǎn)生的紫外線可以忽略不計,因此我們推測活性氧自由基是APNP殺菌作用的主要機制。Montie等[9]認為是活性自由基導(dǎo)致了細胞外膜的破裂。Sharma等[10]則認為等離子體中的活性氧自由基與細胞壁上的碳反應(yīng),生成二氧化碳并揮發(fā)掉,從而破壞細胞壁,直接影響到核酸。Q.S.Yu等[11]利用常壓等離子體刷處理大腸桿菌,發(fā)現(xiàn)He-O2混合氣等離子體失活微生物的效率比單純氦氣的更高,因此他們認為氧活性成份在等離子體失活微生物過程中起重要作用。Lee等[12]亦通過等離子體殺滅真菌-釀酒酵母的實驗證實其殺菌作用主要來自于活性氧自由基。本實驗還進行了不加電壓,只有氣吹的對照實驗,發(fā)現(xiàn)該對照組與未經(jīng)任何處理的對照組無差別,說明氣吹在殺菌過程中不起作用。本實驗中采用的放電氣體是He和少量的O2,在放電過程中,形成氦亞穩(wěn)粒子的幾率非常高,這些亞穩(wěn)粒子可以通過碰撞把能量轉(zhuǎn)移給通入的O2以及噴口處空氣中的O2或N2等氣體,通過一系列反應(yīng)會產(chǎn)生 O* (活性氧原子)、O、O3、NO、NO2、OH等活性粒子。這些活性粒子可以同菌體細胞壁中某些物質(zhì)反應(yīng)生成二氧化碳和水等揮發(fā)性物質(zhì),同時與細胞膜脂蛋白或細胞膜中的磷脂類、蛋白質(zhì)等發(fā)生化學(xué)反應(yīng),從而使細胞壁、細胞膜受到破壞,造成局部缺損或通透性改變,進而使細胞內(nèi)物質(zhì)改變,此外這些活性粒子還會迅速擴散進入細胞內(nèi),氧化細胞內(nèi)酶或RNA、DNA,導(dǎo)致菌體死亡。
圖3 等離子體處理后白念珠菌菌體結(jié)構(gòu)改變 (×10 000):a.3-A組,b.3-D組,c.3-E組,d.3-F組 圖4 正常對照標本 (a)與等離子體處理 5 min 后標本(b,c,d,e,f)透射電鏡觀察Fig.3 Structural modification of the Candida albicans strains after treated with APNP Fig.4 Normal control strain(a)compared with strains treated with APNP for 5 min(b,c,d,e,f)under transmission electron microscope
本實驗中,等離子體對白念珠菌的殺滅作用與放電氣體中氧氣含量、處理時間、作用距離明顯相關(guān)。通入的放電氣體成分不同,等離子體中各種活性粒子的成分和比例就不同,滅菌效果相應(yīng)受到影響。本實驗中,隨著O2含量的增加,殺菌效果亦更加明顯,說明了氧活性成份在等離子體殺滅微生物過程中起主要作用。另外,等離子體與標本距離越小、作用時間越長殺菌效果越好,可見,與其他滅菌方法一樣,滅菌時間與作用距離也是影響殺菌效果的重要因素。
本實驗研究了APNP噴流對白念珠菌的殺菌效果,發(fā)現(xiàn)它能有效地殺滅白念珠菌,且其殺菌機制與活性氧成分破壞真菌細胞壁、細胞膜及細胞內(nèi)結(jié)構(gòu)有關(guān),但此發(fā)現(xiàn)還需要進一步試驗予以證實。另外,APNP是否還存在除活性氧以外的殺菌機制,其對除白念珠菌以外的臨床常見致病真菌的殺菌效果如何,其用于臨床疾病治療的可行性等,還有待進一步研究。低溫等離子體殺滅真菌的研究及應(yīng)用對于建立安全、簡便、低溫且無殘留毒性的滅菌及治療方法具有重大意義,必將推動滅菌技術(shù)及真菌感染性疾病臨床治療的發(fā)展。
致謝:感謝華中科技大學(xué)電氣與電子工程學(xué)院低溫等離子體實驗室盧新培教授、熊紫蘭博士提供等離子體設(shè)備并給予技術(shù)支持。
[1]賈建平,劉克富,朱業(yè)湘,等.大氣壓下低溫等離子體滅菌消毒技術(shù)的研究[J].高電壓技術(shù),2007,33(2):116-119.
[2]Danil D,Gregory F,Gary F,et al.Physical and biological mechanisms of direct plasma interaction with living tissue[J].New Journal of Physics,2009,30(11):20-46.
[3]Venezia,R A,Orrico,M,Houston E,et al.Lethal activity of nonthermal plasma sterilization against microorganisms[J].Infect Control Hosp Epidemiol,2008,29(5):430-436.
[4]Pappas PG.Opportunistic fungi:a view to the future[J].Am J Med Sci,2010,340(3),253-257.
[5]馮文莉,楊靜.3年間醫(yī)院內(nèi)侵襲性真菌感染的病原菌分布及臨床分析[J].中華醫(yī)院感染學(xué)雜志,2008,18(7):1030-1033.
[6]Moisan M,Barbeau J,Moreau S,et al.Low-temperature sterilization using gas plasmas:a review of the experiments and analysis of the inactivation mechanisms[J].International Journal of Pharmaceutics,2001,226(1/2):1-21.
[7]Lerouge S,Guignot C,Tabrizian M,et al.Plasma-based sterilization:effect on surface and bulkd properties,and hydrolytic stability of reprocessed polyurethane electrophysiology catheters[J].J Biomed Mater Res,2000,52(4):774-782.
[8]Mendis D A,Rosenberg M,Azam F.A note on the possible electrostatic disruption of bacetria[J].IEEE Trans Plasma Sci,2000,28(4):1304-1306.
[9]Montie TC,Kelly-Wintenberg K,Roth J R.An overview of research using the one atmosphere uniform glow discharge plasma(OAUGDP)for sterilization of surfaces and materials[J].IEEE Trans Plasma Sci,2000,28(1):41-50.
[10]Ashish S,Amy P,Zengqi Y,et al.Bacterial inactivation in open air by the afterglow plume emitted from a grounded hollow slot electrode[J].Enviorn Sci Technol,2005,39(8):339-344.
[11]Yu Q S,Hunag C,Hsieh F H,et al.Sterilization effects of atmospheric cold plasma bursh[J].Appl Phys Lett,2006,88(1):013903-013903-3.
[12]Lee K,Paek K H,Ju W T,et al.Sterilization of bacteria,yeast,and bacterial endospores by atmospheric-pressure cold plasma using helium and oxygen[J].J Microbiol,2006,44(3):269-275.