王景晶,張長利,楊 宏
(北京工業(yè)大學(xué)建筑工程學(xué)院,北京 100124)
錳是人體必需的微量元素之一[1,2],但是過量錳的攝入會(huì)引起人體神經(jīng)系統(tǒng)的病變。我國《生活飲用水衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)》(GB 5749—2006)規(guī)定錳的含量最高為0.1 mg/L。世界衛(wèi)生組織和歐盟對生活飲用水中錳含量的理想標(biāo)準(zhǔn)值規(guī)定為0.05 mg/L,目前世界多國都面臨地下水的錳超標(biāo)問題[3-5]。生物除錳技術(shù)無需投加化學(xué)藥劑,有較高的除錳效率而且運(yùn)行管理費(fèi)用較低,逐漸取代物理和化學(xué)除錳法應(yīng)用于實(shí)際工程。但是,由于具有錳氧化能力的細(xì)菌在開放的環(huán)境中很難建立起種群優(yōu)勢,作為生物除錳技術(shù)核心的生物濾池在啟動(dòng)階段較長、抗沖擊負(fù)荷能力較弱。根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,濾池的成熟過程往往需要4~6周[6,7]。細(xì)胞固定化技術(shù)可以將大量細(xì)菌固定在載體材料中,然后投入濾池中,從而實(shí)現(xiàn)在生物濾池中啟動(dòng)初期就有大量的錳氧化細(xì)菌,大大縮短除錳生物濾池的啟動(dòng)期并提高生物濾池的運(yùn)行穩(wěn)定性。
PVA是目前研究較多細(xì)胞固定的載體,它具有強(qiáng)度高、化學(xué)穩(wěn)定性好、價(jià)格低廉等優(yōu)點(diǎn)。PVA的缺點(diǎn)在于分子結(jié)構(gòu)中親水性羥基很多,羥基與水分子結(jié)合造成聚乙烯醇交聯(lián)后顆粒體積膨脹并發(fā)生粘連現(xiàn)象,而且交聯(lián)劑硼酸對細(xì)菌具有毒性[8-10]。李花子等[8]認(rèn)為PVA的粘連膨脹是由于硼酸上的3個(gè)羥基部分發(fā)生反應(yīng),交聯(lián)后的高聚物凝膠上殘留有親水性的羥基,采用延時(shí)包埋法和加入化學(xué)藥劑法,可改善PVA顆粒的水溶膨脹性。有些學(xué)者通過向PVA中添加海藻酸鈉、活性炭、沸石等物質(zhì),研究改善PVA顆粒的粘連現(xiàn)象[10-13]。
本文通過分布交聯(lián)調(diào)pH法固定錳氧化細(xì)菌,該方法實(shí)施簡單,既充分利用了PVA和飽和硼酸易成型的優(yōu)點(diǎn),又通過調(diào)節(jié)pH到弱堿性環(huán)境,使得硼酸以硼酸鹽的形式存在,降低了對細(xì)菌的傷害。經(jīng)硼酸鹽強(qiáng)化后的PVA在使用過程中的粘連、水溶膨脹性大大降低。
1.1.1 菌源采集
菌源采集自北京工業(yè)大學(xué)北京市水質(zhì)科學(xué)與水環(huán)境恢復(fù)工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室除錳濾池。
1.1.2 培養(yǎng)基
PYCM 培養(yǎng)基[14]:蛋白胨為 0.8 g、酵母浸膏為0.2 g、MnSO4·H2O 為 0.45 g、K2HPO4為 0.1 g、檸檬酸 鐵 銨 為 2.0 g、NaNO3為 0.2 g、CaCl2為 0.1 g、(NH4)2CO3為 0.1 g,加去離子水 1 000 mL,加入 1.5%的瓊脂,在121℃下高壓滅菌20 min。
PYCM培養(yǎng)基稀釋液:將PYCM培養(yǎng)基加純水稀釋6倍,其中Mn2+濃度為25 mg/L。
1.1.3 試驗(yàn)試劑
PVA(工業(yè)純,北京化工廠);硼酸(分析純,天津市福晨化學(xué)試劑廠);海藻酸鈉(化學(xué)純,天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所);碳酸鈣(分析純,天津市福晨化學(xué)試劑廠);瓊脂粉(北京奧博星生物技術(shù)責(zé)任有限公司);活性碳(天津市塘沽天達(dá)凈化材料精細(xì)化工廠)。
1.1.4 主要儀器
Sanyo高壓滅菌鍋、OLYMPUS BX41顯微鏡、AAS vario6型原子吸收分光光度計(jì)、恒溫振蕩培養(yǎng)箱、冰箱、水浴鍋、玻璃儀器等。
1.2.1 PVA固定化錳氧化細(xì)菌的制備
按照一定質(zhì)量分?jǐn)?shù)將PVA加到去離子水中,在85~95℃水浴條件下邊攪拌邊溶解,在水浴鍋中邊加熱邊攪拌至溶解均勻的凝膠狀,冷卻至30~40℃,按照試驗(yàn)需要將一定量的添加劑(w%)與錳氧化細(xì)菌(v%)加到PVA溶液中,攪拌均勻,然后把PVA凝膠液裝入注射器中滴定到飽和硼酸溶液(若海藻酸鈉作添加劑,飽和硼酸中需加入2%CaCl2作為交聯(lián)劑)中,固定1 h,然后根據(jù)試驗(yàn)需要調(diào)節(jié)到一定pH,再次交聯(lián)一定時(shí)間,用孔徑為2 mm的篩網(wǎng)濾出小球,用生理鹽水洗凈,備用。
1.2.2 固定顆粒膨脹性的測定方法
體積膨脹率:體積膨脹率從一定程度上反映了固定化細(xì)胞的穩(wěn)定性及耐用性,筆者經(jīng)過試驗(yàn)證實(shí)PVA固定顆粒在水中浸泡5 d后體積不再膨脹。取10 mL PVA小球放入裝有200 mL自來水的錐形瓶中浸泡5 d,每天定時(shí)測量其小球體積的變化。膨脹率=(浸泡后體積-初始體積)/初始體積。
1.2.3 固定顆粒機(jī)械強(qiáng)度的測定方法
機(jī)械強(qiáng)度的測定:首先在各組固定化小球中選取大小一致的小球各20顆,放入蒸餾水及玻璃球,在恒溫振蕩器中以200 r/min振蕩5 d,定時(shí)觀察小球的破損情況。記錄小球的破損個(gè)數(shù),小球完好率=(總個(gè)數(shù)-破損個(gè)數(shù))/總個(gè)數(shù)[15]。
1.2.4 固定錳氧化細(xì)菌活性的測定方法
將制備好的固定錳氧化細(xì)菌加入到30 mL PYCM培養(yǎng)基稀釋液中,120 r/min振蕩培養(yǎng)5 d,取2 mL水樣經(jīng)0.25 μm濾膜過濾,用原子吸收分光光度法測定剩余錳濃度。為排除培養(yǎng)基和載體的影響,分別用去離子水配制相同濃度的錳溶液和無細(xì)菌的載體顆粒做空白對照試驗(yàn)。錳細(xì)菌活性(相對活性)=(PYCM培養(yǎng)基稀釋液中Mn2+離子初始濃度-剩余Mn2+離子濃度)/PYCM培養(yǎng)基稀釋液中Mn2+離子初始濃度×100%。
在二次交聯(lián)pH為9、二次交聯(lián)時(shí)間為12 h、包菌量為4%、加入4%碳酸鈣的條件下,改變PVA濃度制備固定錳氧化細(xì)菌,以考察PVA濃度對固定化細(xì)菌影響,如圖1所示。
通過5 d的膨脹率測定可知顆粒的膨脹程度隨PVA濃度的增加而增加,濃度為7%時(shí)膨脹率最低(55%);濃度為12%時(shí)膨脹率最高(95%);濃度為8%~10%時(shí)膨脹率變化較小。PVA顆粒交聯(lián)后化學(xué)結(jié)構(gòu)中殘留有親水性羥基,羥基與水分子結(jié)合造成PVA高分子相互交錯(cuò)結(jié)構(gòu)的解體,大量水分子滲透到PVA小球結(jié)構(gòu)內(nèi)部,并促使PVA小球結(jié)構(gòu)體膨脹。因此,PVA濃度越大吸收水分越多,解體后體積越大,膨脹率越大。經(jīng)5 d浸泡后PVA濃度越低的顆粒的機(jī)械強(qiáng)度越差,7%PVA顆粒的完好率為40%,而濃度12%顆粒的完好率為95%。PVA顆粒膨脹后PVA高分子間的距離加大,分子間的作用力減弱,造成機(jī)械強(qiáng)度的降低。PVA濃度越低,PVA高分子數(shù)量越少,膨脹后分子之間的相對距離越大,機(jī)械強(qiáng)度降低越快。固定細(xì)菌活性的大小往往與顆粒傳質(zhì)性有關(guān),濃度越低的顆粒,內(nèi)部孔隙越大,傳質(zhì)性越高,特別是膨脹之后內(nèi)部含水率增加,傳質(zhì)性也迅速增加。
圖1 PVA濃度對固定細(xì)菌的影響Fig.1 Effect of Different Concentration of PVA on Immobilized Bacteria
由圖1可知顆粒內(nèi)部包埋細(xì)菌的活性隨著濃度的增加而降低,PVA濃度為7%、12%時(shí),5 d除錳率分別為 88.12%、45.72%。PVA 濃度為 9%~11%時(shí),細(xì)菌活性變化不大,穩(wěn)定在55%左右。
在PVA濃度為9%、二次交聯(lián)時(shí)間為12 h,包菌量為4%、添加4%碳酸鈣的條件下,改變二次交聯(lián)pH制備固定錳氧化細(xì)菌,以考察二次交聯(lián)固定pH對固定化細(xì)菌影響,如圖2所示。
圖2 二次交聯(lián)pH對固定細(xì)菌的影響Fig.2 Effect of different pH Value of Second Cross-Link Procedure on Immobilized Bacteria
pH對PVA顆粒的物理性狀及化學(xué)結(jié)構(gòu)影響較大,安立超等[16]發(fā)現(xiàn)碳酸鈉溶液調(diào)節(jié)pH值制備PVA載體固定化微生物的方法可增強(qiáng)固定化微生物載體的耐曝氣強(qiáng)度和機(jī)械強(qiáng)度。傳統(tǒng)飽和硼酸法交聯(lián)固定是在pH=5的酸性條件下進(jìn)行,對生物毒性大,細(xì)胞活性會(huì)受較大影響[17]。但相對于其他交聯(lián)劑,硼酸具有成型快的優(yōu)點(diǎn),因此本試驗(yàn)采用二次交聯(lián)調(diào)pH法。首先在飽和硼酸中交聯(lián)1 h固定化細(xì)胞快速定型后,再將制備載體小球的交聯(lián)液pH值分別調(diào)為 5.00、6.00、7.00、8.00、9.00、10.00,二次交聯(lián)時(shí)間固定12 h。
由圖2可知二次交聯(lián)pH在5.00到7.00之間對膨脹率和機(jī)械強(qiáng)度沒有明顯作用,當(dāng)二次交聯(lián)pH達(dá)到 8.00、9.00、10.00 時(shí)膨脹率減小,機(jī)械強(qiáng)度也增加。程傳煊等[18]采用紅外光譜分析等手段證實(shí),堿性環(huán)境下PVA部分羥基能夠發(fā)生脫質(zhì)子反應(yīng)與水中金屬離子發(fā)生配位反應(yīng)。由此可以判斷堿性環(huán)境有助于減少顆粒內(nèi)部羥基數(shù)量,使PVA顆粒膨脹和機(jī)械強(qiáng)度得到改善。當(dāng)pH為5.00~7.00時(shí),固定細(xì)菌活性較低;當(dāng)pH為8和9時(shí),活性最高,錳去除率分別為80%和75%;當(dāng)pH為10時(shí),活性開始降低。分析原因:一方面是由于硼酸在酸性環(huán)境下的毒性較大;另一方面錳氧化細(xì)菌本身活性受pH影響較大。因此pH在7~9范圍內(nèi)有利于錳氧化細(xì)菌的活性保持[7]。
在PVA濃度為9%、二次交聯(lián)pH為9.0、包菌量為4%、添加4%碳酸鈣的條件下,改變二次交聯(lián)時(shí)間制備固定錳氧化細(xì)菌,以考察二次交聯(lián)固定時(shí)間對固定化細(xì)菌影響,如圖3所示。
由于顆粒傳質(zhì)性的限制,堿性液體進(jìn)入顆粒內(nèi)部需要一定的時(shí)間,而且交聯(lián)反應(yīng)也需要足夠的時(shí)間。當(dāng)二次交聯(lián)時(shí)間為4~6 h時(shí),反應(yīng)時(shí)間不足,顆粒膨脹性和機(jī)械強(qiáng)度未得到明顯改善;當(dāng)二次交聯(lián)時(shí)間為8~48 h時(shí),二次交聯(lián)時(shí)交聯(lián)較好,膨脹率和機(jī)械強(qiáng)度分別穩(wěn)定在70%和85%左右。當(dāng)二次交聯(lián)時(shí)間在4~48 h變化時(shí),固定細(xì)菌活性和交聯(lián)時(shí)間相關(guān)性不大,除錳率在45%左右,但是由于營養(yǎng)物質(zhì)限制,二次交聯(lián)時(shí)間不宜超過48 h。
在PVA濃度為9%、二次交聯(lián)pH為9.0、二次交聯(lián)時(shí)間為12 h、包菌量為4%的條件下,分別加入不同添加劑制備固定錳氧化細(xì)菌,如圖4所示。
圖3 二次交聯(lián)時(shí)間對固定細(xì)菌的影響Fig.3 Effect of Different Time of Second Cross-Link Procedure on Immobilized Bacteria
圖4 添加劑對固定細(xì)菌的影響Fig.4 Effect of Different Co-Composite Matters on Immobilized Bacteria
四種添加劑中碳酸鈣、活性炭對膨脹性的改善效果最好,膨脹率分別為61%和95%。這是因?yàn)橐环矫娌蝗苄缘奶妓徕}和活性炭具有“位阻”作用,能夠阻止水中的氫離子(H+)與PVA分子上的羥基(-OH)結(jié)合[19];另一方面碳酸鈣作為一種弱酸鹽,在水溶液中pH為9.5~10.2,能夠?yàn)镻VA分子創(chuàng)造微堿性環(huán)境,堿性環(huán)境下水中氫離子數(shù)量減少,可有效改善PVA的水溶膨脹。海藻酸鈉和瓊脂加速了PVA的水溶膨脹。海藻酸鈉交聯(lián)后形成的海藻酸鈣會(huì)與水中的K+、Na+、Mg2+等陽離子發(fā)生置換反應(yīng)而溶解[20]。瓊脂長期浸泡過程中添加劑自身會(huì)吸收大量水分,而且瓊脂會(huì)慢慢脫離載體而溶解到水中。
碳酸鈣、海藻酸鈉、瓊脂對PVA機(jī)械強(qiáng)度的改善較好,5 d小球完好率都在70%以上。加入活性炭的PVA凝膠的機(jī)械強(qiáng)度較差,小球5 d完好率僅為45%,可能是由于活性炭的加入破壞了PVA交聯(lián)后所形成的空間網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。
碳酸鈣的加入影響到固定化錳氧化細(xì)菌微環(huán)境的pH,錳細(xì)菌氧化錳離子需要pH在7~9范圍內(nèi),碳酸鈣5 d除錳率只有64%。海藻酸鈉、瓊脂、活性炭的化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,對錳氧化細(xì)菌微環(huán)境的pH和orp影響微小,這三種添加劑可以增大PVA小球的孔隙度和傳質(zhì)性,有助于提高固定錳氧化細(xì)菌活性,5 d除錳率保持在75%左右。同時(shí),活性炭具有微生物沒有的能力,能將底物吸附到內(nèi)部微孔內(nèi),并逐漸釋放,吸附的物質(zhì)90%被降解[21]。
在PVA濃度為9%、二次交聯(lián)pH為9.0,二次交聯(lián)時(shí)間為12 h、加入4%碳酸鈣的條件下,分別加入不同體積的菌液制備固定錳氧化細(xì)菌,如圖5所示。
圖5 包菌量對固定細(xì)菌的影響Fig.5 Effect of Amount of Embedded Bacteria on Immobilized Bacteria
當(dāng)包菌量在1%~8%變化時(shí),對膨脹性影響不大,膨脹率穩(wěn)定在66%~73%。機(jī)械強(qiáng)度在包菌量小于4%時(shí)變化較小。但是當(dāng)包菌量大于4%時(shí)機(jī)械強(qiáng)度有明顯的下降趨勢,說明加入菌液體積比超過4%,會(huì)對PVA交聯(lián)后的化學(xué)結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性產(chǎn)生不利影響。
固定細(xì)菌的除錳能力與包菌量具有明顯的相關(guān)性,錳去除率隨著包菌量的增加而增加。這是因?yàn)榘竦募?xì)菌越多,固定后活細(xì)菌數(shù)量越多。此外,錳氧化細(xì)菌體液內(nèi)含大量具有催化活性的酶,細(xì)菌死亡解體后將酶釋放到周圍環(huán)境中,細(xì)菌數(shù)量越多,環(huán)境中的錳氧化酶越多,除錳能力也越高。
(1)顆粒的膨脹度及機(jī)械強(qiáng)度隨PVA濃度的增加而增加,由于傳質(zhì)性的影響顆粒內(nèi)部包埋細(xì)菌的活性隨著濃度的增加而降低。
(2)堿性環(huán)境有助于減少顆粒內(nèi)部羥基數(shù)量,使PVA顆粒膨脹和機(jī)械強(qiáng)度得到改善,二次交聯(lián)pH在5.00到7.00之間對膨脹率和機(jī)械強(qiáng)度沒有明顯作用,在二次交聯(lián) pH 達(dá)到 8.00、9.00、10.00 時(shí)膨脹率減小,機(jī)械強(qiáng)度也增加。pH 在 5.00~7.00時(shí)固定細(xì)菌活性較低,pH為8和9時(shí)活性最高,pH為10時(shí)的活性開始降低。
(3)二次交聯(lián)時(shí)間為4~6 h時(shí),反應(yīng)時(shí)間不足,顆粒膨脹性和機(jī)械強(qiáng)度未得到明顯改善。二次交聯(lián)時(shí)間為8~48 h時(shí),膨脹率和機(jī)械強(qiáng)度分別穩(wěn)定在70%和85%左右。二次交聯(lián)時(shí)間在4~48 h變化時(shí),固定細(xì)菌活性和交聯(lián)時(shí)間相關(guān)性不大,但不宜超過48 h。
(4)四種添加劑中碳酸鈣、活性炭對膨脹性的改善效果最好,膨脹率分別為61%和95%。碳酸鈣、海藻酸鈉、瓊脂對PVA機(jī)械強(qiáng)度的改善較好。海藻酸鈉、瓊脂、活性炭有助于提高固定錳氧化細(xì)菌活性。碳酸鈣的加入影響到固定化錳氧化細(xì)菌微環(huán)境的pH,固定錳氧化細(xì)菌活性較低。
(5)包菌量在1%~8%變化時(shí),對膨脹性影響不大,機(jī)械強(qiáng)度在包菌量小于4%時(shí)變化較?。划?dāng)包菌量大于4%時(shí)機(jī)械強(qiáng)度有明顯的下降趨勢,錳去除率隨著包菌量的增加而增加。
[1]崔玉川.飲水、微量元素與健康[J].凈水技術(shù),2005,24(1):43-46.
[2]李繼云,徐冰峰,黃兆龍,等.核桃殼對二價(jià)錳離子(Mn2+)的吸附性能[J].凈水技術(shù),2012,31(4):98-101.
[3]Ljung K,Vahter M.Time to re-evaluate the guideline value for manganese in drinking water[J].Environment Health Perspect,2007,15(11):1533-1538.
[4]Wasserman G A,Liu X H,Parvez F,et al.Water manganese exposure and children’s intellectualfunction in Araihazar,Bangladesh.Environ[J].Health Perspect,2006,114(1):124-129.
[5]Agusa T,Kunito T,Fujihara J,et al.Contamination by arsenic and other trace elements in tube-well water and its risk assessment to humans in Hanoi[J].Vietnam,2006,139(1):95-106.
[6]Hope C K,Bott T R.Laboratory modelling of manganese biofiltration using biofilms of Leptothrix discophora[J].Water Research,2004,38(7):1853-1861.
[7]Mouchet P.From conventional to biological removal of iron and manganese in France[J].Journal of the American Water Works Association,1992,84(4):158-167.
[8]李華子,王建龍,文湘華,等.聚乙烯醇-硼酸固定化方法的改進(jìn)[J].環(huán)境科學(xué)研究,2002,15(5):25-27
[9]劉江紅,潘洋,徐瑞丹.微生物固定法降解含聚廢水的最佳條件[J].湖南大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2012,39(3):62-65.
[10]劉蕾,李杰,王亞娥.生物固定化技術(shù)中的包埋材料[J].凈水技術(shù),2005,24(1):40-42.
[11]趙美云,雷中方.海藻酸鈉與聚乙烯醇包埋活性污泥強(qiáng)化聚酯廢水生物處理[J].凈水技術(shù),2006,25(1):45-48.
[12]尹艷娥,徐兆禮,徐亞巖,等.游離和固定化惡臭假單胞菌對含酚廢水的處理[J].水處理技術(shù),2012,38(8):34-36.
[13]張磊,張燁,侯紅萍.固定化細(xì)胞技術(shù)的研究進(jìn)展[J].四川食品與發(fā)酵,2006,42(1):5-7.
[14]鮑志戎,孫書菊,王國彥,等.自來水廠除錳濾砂的催化活性分析[J].環(huán)境科學(xué),1997,1(1):38-41.
[15]高虹,陳明,鄭津輝.醫(yī)用脲酶菌的固定化比較研究[J].天津師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2011,31(1):66-70.
[16]安立超,王劍鋒.聚乙烯醇鋁鹽固定化酶/微生物的方法[P].中國,CN 200410014884.2.
[17]普利鋒,趙剛,王建龍.幾種交聯(lián)劑對PVA固定化活性污泥的活性比較[J].清華大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2004,44(12):1603-1605.
[18]程傳煊,莊錦樹,蘇英草.聚乙烯醇在強(qiáng)堿性水溶液中與Fe(Ⅲ)離子間的配位-交聯(lián)反應(yīng)[J].高分子學(xué)報(bào),1993,1(2):144-150.
[19]Chang I S,Kim C I,Nam B U.The influence of poly-vinyl-alcohol(PVA)characteristics on the physical stability of encapsulated immobilization media for advanced wastewater treatment[J].Process Biochemistry,2005,40(1):3050-3054.
[20]Li H B,Jiang H,Wang C Y,et al.Comparison of two types of alginate microcapsules on stability and biocompatibility in vitro and in vivo[J].Biomedical Materials,2006,1,1:42-47.
[21]Yamanaka H,Moriyoshi K,Ohmoto T,et al.Efficient microbial degradation of bisphenol A in the presence ofactivated carbon[J].J Biosci Bioeng,2008,105:157-160.