張麗萍,紀淑娟*
(沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧 沈陽 110161)
南果梨為秋子梨系(Pyrus ussriensis Maxim.)的一種,是遼寧省的特色水果。南果梨采收時果實色綠、肉脆質(zhì)硬、汁少味甜、無香氣。適度后熟后,果色金黃艷麗、帶紅暈,香氣誘人,肉質(zhì)細膩,汁液豐富,酸甜適口,品質(zhì)極佳,深受消費者青睞[1]。1-甲基環(huán)丙烯(1-MCP)是目前最有效的乙烯受體抑制劑,可特異性地阻斷乙烯與其受體的正常結(jié)合,從而有效阻止內(nèi)源乙烯的合成和外源乙烯的誘導(dǎo)作用,降低呼吸躍變型果實的呼吸強度和乙烯釋放速率,進而延長果實的貯藏壽命[2-3]。1-MCP作為一種后熟抑制劑,應(yīng)用在南果梨上,可有效延長南果梨的常溫貨架期,提高冷藏南果梨的保鮮效果[4],但是董萍等的研究結(jié)果表明,1-MCP處理減少了南果梨香氣成分種類,對酯類物質(zhì)影響也較大[5]。乙烯是植物體內(nèi)重要的內(nèi)源植物生長調(diào)節(jié)劑,它參與調(diào)節(jié)植物生長發(fā)育,特別是在躍變型果實成熟衰老過程中發(fā)揮著重要的作用,被認為是果實成熟衰老的啟動因子[6-7]。Palou等[8]和Zhou等[9]分別研究了外源乙烯對低溫貯藏油桃和桃果實的部分生理作用,Zhang Lihua等[10]研究表明,乙烯利處理可以顯著增加果實的呼吸強度、可溶性固形物和總酚含量,但關(guān)于外源乙烯對1-MCP處理的南果梨冷藏后果實風(fēng)味物質(zhì)合成的具體調(diào)控作用及調(diào)控途徑過程中關(guān)鍵酶活性的影響未見報道。本實驗旨在通過研究冷藏對果實香氣及香氣合成關(guān)鍵酶活性的影響,揭示外源乙烯與南果梨果實揮發(fā)性芳香風(fēng)味物質(zhì)之間的調(diào)控機制。建立提高冷藏南果梨果實揮發(fā)性芳香風(fēng)味物質(zhì)的外源乙烯喚醒技術(shù)最佳參數(shù),解決南果梨果實貯藏香氣品質(zhì)降低的問題。
試驗所用南果梨果實于2011年9月23日采自遼寧省鞍山市大孤山鎮(zhèn),當(dāng)天運回沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)實驗室進行分級處理,挑選大小、成熟度相對一致,果質(zhì)量大小均勻一致,無病蟲害、機械損傷果實作試材。于采收當(dāng)天用0.75μL/L的1-MCP保鮮劑處理24h,處理方法參見參考文獻[11],1-MCP處理的果實裝入內(nèi)襯0.02mm PE膜的塑料箱內(nèi),在常溫(20±2)℃條件下放置7d后轉(zhuǎn)入冷庫,于(0±0.5)℃貯藏。1-MCP南果梨在冷藏5個月時轉(zhuǎn)出冷庫,轉(zhuǎn)出當(dāng)天分別用2、4、6、8mmol/L的乙烯利溶液進行浸泡處理2min,對照果實用蒸餾水浸泡處理2min,處理后在室溫條件下放置待測,每7d測一次數(shù)據(jù)。
1-甲基環(huán)丙烯(1-MCP) 美國羅門哈斯公司;曲拉通、乙二胺四乙酸(EDTA)、三羥甲基氨基甲烷(Tris) 國藥集團化學(xué)試劑有限公司;2-(N-嗎啡啉)乙磺酸(MES)、亞油酸鈉、二硫蘇糖醇(DTT)、聚烯吡咯烷酮(PVP)、交聯(lián)聚乙烯吡咯烷酮(PVPP)、輔酶焦磷酸硫胺素(TPP)、還原型輔酶(NADH)、丙酮酸、苯甲基磺酰氟(PMSF)、二硝基苯甲酸(DTNB)、羥乙基哌嗪乙硫磺酸 上海源葉生物有限公司;乙酰輔酶A、乙醇脫氫酶 美國Sigma公司。
氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國Finnigan公司;TU 1810紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限公司。
氣相色譜條件:HP-Innowax色譜柱(30m×250μm,0.25μm);程序升溫:40℃保留2min,然后以4℃/min升至60℃保留1min,再以2℃/min升至150℃,再以10℃/min升至210℃保留5min。傳輸線溫度為250℃。載氣為He,流速1mL/min,不分流。
質(zhì)譜條件:連接桿溫度280℃,電離方式為電子電離(electron ionization,EI),離子源溫度200℃,掃描范圍45~600u。
數(shù)據(jù)處理:通過檢索NIST/Wiley標準譜庫,進行定性分析,并用峰面積歸一法測算各化學(xué)成分的相對含量。
1.4.1 脂氧合酶(lipoxygenase,LOX)活性測定
參照陳昆松等[12]的方法,取2g果肉置于研缽內(nèi),冰浴研磨,加入10mL經(jīng)4℃預(yù)冷50mmol/L(pH7.0)的磷酸緩沖液,混勻充分浸提后,12000r/min(4℃)離心30min,取上清液。在3mL反應(yīng)體系中含亞油酸鈉母液25μL、0.1mol/L(pH6.0)的檸檬酸-磷酸緩沖液2.775mL、粗酶液0.2mL,反應(yīng)溫度30℃,于234nm波長處測定LOX活性,加酶液后15s開始計時,記錄1min內(nèi)OD值的變化,結(jié)果以比活性表示(U/mg)。
1.4.2 醇脫氫酶活性(alcoholdehydrogenase,ADH)測定
參照田長平等[13]的方法,取3g果肉置于研缽內(nèi),液氮充分研磨呈粉末狀,加入經(jīng)4℃預(yù)冷的提取液,混勻充分浸提后,15000r/min(4℃)離心30min,取上清液。在3mL反應(yīng)體系中加入2.4mL MES-Tris緩沖液、1.6mmol/L的NADH 0.15mL、80mmol/L乙醛0.15mL、0.3mL粗酶液,反應(yīng)溫度30℃,于340nm波長處測定ADH活性,加酶液后15s開始計時,記錄1min內(nèi)OD值的變化。
1.4.3 氫過氧化物裂解酶(hydrogen peroxide repressible enzyme,HPL)活性測定
參照Salas等[14]的方法,取3g果肉冷凍組織置于研缽內(nèi),液氮充分研磨呈粉狀,加入6mL經(jīng)4℃預(yù)冷的提取液,混勻充分浸提后,14000r/min(4℃)離心30min,取上清液。在3.5mL反應(yīng)體系中含2mL緩沖液、0.75mL反應(yīng)底物液、0.15mL 1.6mmol/L的NADH、0.1mL ADH酶液、0.5mL粗酶液,反應(yīng)溫度30℃,于340nm波長處測定OD值,加酶液后15s開始計時,記錄1min內(nèi)OD值的變化。
1.4.4 醇?;D(zhuǎn)移酶(alcohol acyltransferase,AAT)活性測定
參照Echever ia等[15]的方法,取3g果肉置于研缽內(nèi),液氮充分研磨,加入2.25mL蛋白提取液,冰浴提取20min,12000r/min(4℃)離心20min,取其上清液。將反應(yīng)液:2.5mL 5mmol/L MgCl2溶液、150μL乙酰輔酶A溶液、50μL丁醇溶液、150μL酶提取液混合后放置35℃水浴15min,然后添加100μL 0.01mol/L的DTNB,室溫下放置10min,412nm波長處比色,用不含酶提取液的反應(yīng)液做空白。
數(shù)據(jù)采用Excel 2003 軟件和SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計處理。
表 1 不同濃度乙烯利處理對1-MCP處理的南果梨冷藏后貨架期間酯類物質(zhì)含量的影響Fig.1 Effect of different concentrations of ethephon on ester content of 1-MCP treated Nanguo pear during shelf life after refrigerated storage
果實的香氣是由多種揮發(fā)性物質(zhì)形成的,其中,酯類物質(zhì)是果實呈香的主要物質(zhì)。由表1可以看出,南果梨中的酯類香氣成分主要有乙酸乙酯、丁酸乙酯、己酸乙酯、乙酸己酯、乙酸庚酯、庚酸乙酯和苯乙酸乙酯。與對照果實相比,2mmol/L外源乙烯處理的乙酸庚酯和庚酸乙酯的相對含量都低于對照組,而2mmol/L外源乙烯處理的乙酸乙酯、丁酸乙酯、己酸乙酯、乙酸己酯和苯乙酸乙酯的相對含量均明顯高于對照和其他幾種處理。與對照果實相比,2mmol/L外源乙烯處理的南果梨酯類香氣有極好的顯著影響(P<0.01)。
脂氧合酶(LOX)途徑是次生物質(zhì)代謝的一個重要途徑,許多研究都表明LOX途徑及其產(chǎn)物參與了乙烯的生物合成,并與果實的成熟衰老密切相關(guān)[16-18]。由圖1可以看出,在1-MCP處理的南果梨冷藏后轉(zhuǎn)入常溫貨架期間,對照和不同濃度乙烯利處理的南果梨的LOX活性均呈先上升后下降的趨勢。在貨架期的前14d,LOX活性隨后熟時間的延長而上升,至14d時LOX活性達到高峰,之后LOX活性隨貨架時間的延長而下降。在14d時2mmol/L乙烯利處理的果實LOX活性高達45mU/mg,而對照、4、6、8mmol/L乙烯利處理LOX活性分別為30、32、37、21mU/mg。2mmol/L和6mmol/L乙烯利處理的LOX活性始終高于對照,其中以2mmol/L乙烯利處理的果實LOX活性極顯著高于對照(P<0.01),而6mmol/L乙烯利處理的果實LOX活性也顯著高于對照(P<0.05)。
圖 1 不同濃度乙烯利對1-MCP處理的南果梨冷藏后常溫貨架期間脂氧合酶活性的影響Fig.1 Effect of different concentrations of ethephon on LOX activity of 1-MCP treated Nanguo pear during shelf-life after refrigerated storage
圖 2 不同濃度乙烯利對1-MCP處理的南果梨冷藏后常溫貨架期間醇脫氫酶活性的影響Fig.2 Effect of different concentrations of ethephon on ADH acitivity of 1-MCP treated Nanguo pear during shelf-life after cold storage
醇脫氫酶(ADH)催化醛類物質(zhì)轉(zhuǎn)化為相應(yīng)的醇,從而為酯類物質(zhì)的合成提供代謝前體。Manríquez等[19]從甜瓜果實中克隆出的Cm-ADH1與Cm-ADH2兩個ADH基因,研究表明,ADH對果實香氣形成具有重要的作用。由圖2可以看出,對照和不同濃度乙烯利處理的ADH活性隨著果實的不斷成熟呈先下降后上升的趨勢,2、4、6、8mmol/L乙烯利處理與對照 LOX 活性無顯著差異(P>0.05)。由此可見,不同濃度的乙烯利對ADH活性的影響作用不明顯。
氫過氧化物裂解酶(HPL)是合成香氣途徑的另一個重要酶,經(jīng)過HPL作用過氧羥基脂肪酸裂解為醛類和含氧酸。由于底物的不同HPL的作用位點也分為3種:9位裂解酶、13位裂解酶和無特異位置裂解酶,而且HPL的底物特異性直接決定了植物揮發(fā)性物質(zhì)的組成[20]。由圖3可知,冷藏南果梨果實轉(zhuǎn)入常溫后熟過程中HPL的酶活性先逐漸增加,然后又有所下降。2mmol/L乙烯利處理的HPL活性顯著高于對照和其他濃度乙烯利處理(P<0.05)。
圖 3 不同濃度乙烯利對1-MCP處理的南果梨冷藏后常溫貨架期間氫過氧化物裂解酶活性的影響Fig.3 Effect of different concentrations of ethephon on HPL activity of 1-MCP treated Nanguo pear during shelf-life after cold storage
圖 4 不同濃度乙烯利對1-MCP處理的南果梨冷藏后常溫貨架期間醇?;D(zhuǎn)移酶活性的影響Fig.4 Effect of different concentrations of ethephon on AAT activity of 1-MCP treated Nanguo pear during shelf-life after cold storage
醇酰基轉(zhuǎn)移酶(AAT)在酯類化合物的生物合成過程中起關(guān)鍵作用[21],在AAT作用下,醇類底物可以與?;?CoA 中的?;セ癁轷?。AAT是酯類合成途徑中最末端的關(guān)鍵酶,在酯類合成中扮演了重要的角色,也是催化酯類化合物生物合成的關(guān)鍵酶之一。由圖4可以看出,在南果梨果實的采后成熟和后熟過程中,AAT活性呈先升高后降低的變化趨勢,這與大多數(shù)酯類化合物相對含量的變化趨勢吻合。對照和不同濃度乙烯利處理的南果梨AAT活性都在貨架14d時出現(xiàn)高峰,其中2mmol/L乙烯利處理的AAT活性極顯著高于其他4個處理的酶活性(P<0.01)。
LOX、HPL、ADH和AAT是脂肪酸代謝途徑的關(guān)鍵酶,同時也是酯類物質(zhì)生物合成的關(guān)鍵酶,探討1-MCP處理的南果梨冷藏后關(guān)鍵酶活性的變化對研究不同濃度乙烯利處理后果實香氣物質(zhì)的機理具有重要價值。有研究表明,乙烯利處理可以顯著增加果實的呼吸強度、可溶性固形物和總酚含量[15],但并沒有對果實酯類物質(zhì)以及脂肪酸代謝途徑的關(guān)鍵酶的相關(guān)研究。本研究結(jié)果表明:1-MCP處理的南果梨冷藏后經(jīng)過不同濃度乙烯利處理,對照、4、6、8mmol/L這4種處理的脂肪酸代謝途徑關(guān)鍵酶LOX、HPL和AAT活性均顯著低于2mmol/L乙烯利處理的酶活性,而不同濃度乙烯利處理與對照處理ADH酶活性無顯著差異,這說明低濃度的乙烯利處理能夠提高南果梨脂肪酸途徑中LOX、HPL和AAT的酶活性。2mmol/L和6mmol/L乙烯利處理的南果梨酯類物質(zhì)的相對含量顯著高于對照、4mmol/L和8mmol/L這幾種處理,這說明2mmol/L和6mmol/L乙烯利處理能夠提高南果梨酯類物質(zhì)的相對含量,數(shù)據(jù)分析結(jié)果表明2mmol/L乙烯利處理有較高的顯著性。由此可知,經(jīng)1-MCP處理的南果梨冷藏后用2mmol/L乙烯利進行復(fù)醒處理可有效提高LOX、HPL和AAT活性,從而提高果實的酯類物質(zhì)含量,使果實表現(xiàn)出濃郁的香氣。這些關(guān)鍵酶活性的下降是酯類物質(zhì)合成減慢的主要原因,而酶活性下降可能與1-MCP熏蒸處理抑制了果實內(nèi)源乙烯的產(chǎn)生有關(guān),也可能與乙烯信號傳導(dǎo)過程有關(guān),有待進一步研究。
[1] 李江闊, 張鵬, 紀淑娟, 等. 1-MCP對不同成熟度南果梨貯后貨架保鮮效果的研究[J]. 北方園藝, 2009(1): 212-214.
[2] 張佰清, 劉佳, 李江闊等. 1-MCP和CO2雙重處理因素對南果梨常溫貨架生理品質(zhì)的影響[J]. 食品科技, 2009, 34(4): 67-70.
[3] KOU X H, LIU X P, LI J K, et al. Effects of ripening, 1-methylcyclopropene and ultra-high-pressure pasteurisation on the change of volatiles in Chinese pear cultivars[J]. J Sci Food Agric, 2012, 92(1): 177-183.
[4] 蘇小軍, 蔣躍明. 新型乙烯受體抑制劑1-甲基環(huán)丙烯在采后園藝作物中的應(yīng)用[J]. 植物生理學(xué)通訊, 2001, 37(4): 361-364.
[5] 董萍, 辛廣, 張博, 等. 1-MCP處理對南果梨20℃貯藏期間香氣成分的影響[J]. 食品科學(xué), 2010, 31(22): 477-479.
[6] TONUTTI P, BONGHI C, RAMINA A. Fruit firmness and ethylene biosynthesis in three cultivars of peach[J]. Hort Sci, 1996, 71(1): 141-147.
[7] BRECHT J K, KADER A A, HEINTZ C M, et al. Controlled atmosphere and ethylene effects on quality of California canning apricots and clingstone peaches[J]. Food Science, 1982, 47(2): 432-433.
[8] PALOU L, CRISOSTO C H, GARNER D, et al. Effect of continuous exposure to exogenous ethylene during cold storage on postharvest decay development and quality attributes of fruits and table grapes[J]. Postharvest Biol Technol, 2003, 27(3): 243-254.
[9] ZHOU H W, LURIE S, BEN-ARIE R, et al. Intermittent warming of peaches reduces chilling injury by enhancing ethylene and enzymes mediated by ethylene[J]. Hort Sci Biotech, 2001, 76(5): 620-628.
[10] ZHANG Lihua, LI Shunfeng, LIU Xinghua, et al. Effects of ethephon on physicochemical and quality properties of kiwifruit during ripening[J]. Postharvest Biology and Technology, 2012, 65: 69-75.
[11] 楊衛(wèi)東, 李江闊, 張平, 等. 1-MCP處理對貯前預(yù)熟南果梨貨架期間果實衰老的影響[J]. 華北農(nóng)學(xué)報, 2010, 25(2): 164-167.
[12] 陳昆松, 徐昌杰, 許文平, 等. 獼猴桃和桃果實脂氧合酶活性測定方法的建立[J]. 果樹學(xué)報, 2003, 20(6): 436-438.
[13] 田長平, 王延玲, 劉遵春, 等. 1-MCP和NO處理對黃金梨主要貯藏品質(zhì)指標及脂肪酸代謝酶活性的影響[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2010, 43(14): 2962-2972.
[14] SALAS J, SANCHEZ J. Hydroperoxide lyase from olive (Olea europaea) fruits[J]. Plant Science, 1999, 143(1): 19-26.
[15] ECHEVER IA G, GRAELL J, LóPEZ M L, et al. Volatile production, quality and aroma-related enzyme activities during maturation of ‘Fuji’ apples[J]. Postharvest Biology and Technology, 2004, 31(3): 217-227.
[16] GRAY D A, PRESTAGE S, LINFORTH RST, et al. Fresh tomato specific fluctuations in the composition of lipoxygenase-generated C6aldehydes[J]. Food Chem, 1999, 64(2): 149-155.
[17] RILEY J C M, WILLEMOT C, THOMPSON J E. Lipoxygenase and hydroperoxide lyase activity in ripening tomato fruit[J]. Postharvest Biol Technol, 1996, 7(1/2): 97-107.
[18] KAUSCH K D, HANDA A K. Molecular cloning of a ripening-specifi lipoxygenase and its expression during wild-type and mutant tomato fruit development[J]. Plant Physiol, 1997, 113(4): 1041-1050.
[19] MANRíQUEZ D, EL-SHARKAWY I, FLORES F B, et al. Two highly divergent alcohol dehydrogenases of melon exhibit fruit ripening-specific expression and distinct biochemical characteristics[J]. Plant Mol Biol, 2006, 61(4/5): 675-685.
[20] TRESSL R, DRAWERT F. Biogenesis of banana volatiles[J]. J Agric Food Chem, 1973, 21(4): 560-565.
[21] HADFIELD K A, DANG T, PECH J C, et al. Charaterization of ripening-regulated cDNAs and their expression in ethylene-suppressed charentais melon fruit[J]. Plant Physiology, 2000, 122(3): 977-983.