徐 婷, 吳慧玲
綜 述
脂肪干細(xì)胞和支架材料在脂肪組織工程中的應(yīng)用現(xiàn)狀和研究進(jìn)展
徐 婷, 吳慧玲
脂肪干細(xì)胞; 支架材料; 組織工程
長(zhǎng)期以來(lái),各種原因所造成的原發(fā)與繼發(fā)性軟組織缺損及發(fā)育不良嚴(yán)重影響人們的身心健康。軟組織缺損的修復(fù)一直是困擾整形外科醫(yī)師的難題之一[1]。真皮移植、脂肪組織瓣、自體脂肪移植以及人工合成材料被廣泛應(yīng)用于臨床工作中。近年來(lái),隨著組織工程技術(shù)的興起和迅猛發(fā)展,為組織或器官缺損的修復(fù)及功能重建開(kāi)辟了新的治療途徑,使得脂肪移植再次成為整形外科的研究熱點(diǎn)[2]。組織工程的研究領(lǐng)域很廣,包括骨骼、皮膚、軟骨、血管和脂肪組織等,脂肪組織工程技術(shù)將成為重建脂肪組織,修復(fù)重建軟組織缺損的理想方法[3]。成功構(gòu)建組織工程化脂肪的關(guān)鍵因素包括種子細(xì)胞、三維支架材料和維持細(xì)胞增殖和組織功能的微環(huán)境。現(xiàn)筆者主要對(duì)脂肪組織工程脂肪源性干細(xì)胞和支架材料相關(guān)研究現(xiàn)狀進(jìn)行綜述。
在組織工程的研究和應(yīng)用中,獲得足夠數(shù)量、無(wú)免疫排斥反應(yīng)且具有再生活力的種子細(xì)胞,是開(kāi)展組織工程研究的前提和基礎(chǔ)。干細(xì)胞是一類(lèi)未分化、具有自我更新與增殖分化能力的細(xì)胞群。組織工程化脂肪組織移植的干細(xì)胞,包括胚胎干細(xì)胞、骨髓來(lái)源的間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymad stem cells, MSCs)和脂肪來(lái)源干細(xì)胞(adipose-derived stem cells, ADSCs)等。然而,胚胎干細(xì)胞涉及倫理道德問(wèn)題導(dǎo)致來(lái)源非常困難,骨髓來(lái)源的間充質(zhì)干細(xì)胞取材困難,獲取率低也滿(mǎn)足不了臨床的需要[4]。ADSCs是存在于脂肪組織中的一種成體干細(xì)胞,為中胚層來(lái)源,并具有其他成體干細(xì)胞一樣的自我更新和多向分化的能力,同時(shí)具有旁分泌功能[5]。不同于胚胎干細(xì)胞和骨髓干細(xì)胞,ADSCs既不涉及倫理問(wèn)題又易于獲得[6-7]?;谄涠酀撃芊只团苑置诠δ?,ADSCs在組織工程干細(xì)胞治療領(lǐng)域被認(rèn)為是繼胚胎干細(xì)胞和骨髓干細(xì)胞之后又一新熱點(diǎn)。
2002年,PA Zuk等首次從吸脂術(shù)抽取的脂肪組織懸液中分離了具有多向分化潛能的細(xì)胞,命名為脂肪抽吸術(shù)后細(xì)胞,并通過(guò)各相關(guān)因子表達(dá),排除了混雜骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的可能性,證實(shí)了ADSCs的存在。最近ADSCs已被成功分離并被證實(shí)在特定誘導(dǎo)條件下,還可向非中胚層起源的細(xì)胞分化,如內(nèi)皮細(xì)胞、神經(jīng)元、胰腺細(xì)胞、肝細(xì)胞和心肌細(xì)胞等[6]。不僅如此,相比于其他種子細(xì)胞,ADSCs有著來(lái)源廣泛、含量豐富、分離簡(jiǎn)單、體外擴(kuò)增穩(wěn)定容易的優(yōu)點(diǎn)。采用吸脂術(shù)獲取ADSCs具有對(duì)供區(qū)損傷小、風(fēng)險(xiǎn)低,人們極少有抵觸心理,而且痛苦小,不涉及倫理道德問(wèn)題,可以自體移植,已成為脂肪組織工程種子細(xì)胞的理想來(lái)源[3]。正常脂肪組織內(nèi)的ADSCs無(wú)須誘導(dǎo)可自然分化成脂肪細(xì)胞,且ADSCs可以產(chǎn)生和分泌多種細(xì)胞因子,如bFGF、VEGF、HGF、基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1α(SDF-1α)、IGF-1等能夠刺激血管內(nèi)皮生長(zhǎng)、改善組織缺血、抑制細(xì)胞凋亡。Rodriguez等[9]發(fā)現(xiàn),人類(lèi)脂肪來(lái)源的多能干細(xì)胞不僅能保持向脂肪細(xì)胞分化的潛能,而且經(jīng)傳代培養(yǎng)超過(guò)160代仍能保持這種潛能,這對(duì)于其應(yīng)用于脂肪組織工程具有重大意義。
常用的ADSCs獲取方法,主要包括從切取的脂肪組織中提取和從脂肪抽吸物中提取兩方面[10-11]。顆粒脂肪獲取后需通過(guò)沖洗、消化和擴(kuò)增等步驟獲取ADSCs。目前應(yīng)用最廣泛的ADSCs分離純化方法是膠原酶消化法,所獲得的細(xì)胞成分復(fù)雜,主要有間充質(zhì)干細(xì)胞、脂肪前體細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、紅細(xì)胞等成分,影響了ADSCs構(gòu)建工程化組織的成功率及均質(zhì)性。如何純化ADSCs是脂肪組織構(gòu)建工程亟待解決的問(wèn)題。Zhu等[12]研究表明,ADSCs與MSCs在形態(tài)、生長(zhǎng)動(dòng)力學(xué)、細(xì)胞老化、基因轉(zhuǎn)染和細(xì)胞的黏附特性等方面沒(méi)有明顯的差別,尚無(wú)統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)區(qū)分兩種干細(xì)胞。目前是從組織來(lái)源、特異性的表型特征及其分化潛能來(lái)綜合識(shí)別ADSCs。據(jù)報(bào)道,ADSCs表面標(biāo)志與MSCs非常相似,表達(dá)CD9、CD10、CD13、CD29、CD44、CD54、CD55、CD71、CD73、CD90、CD105、CD146、CD166和STRO-1等標(biāo)記物,而不表達(dá)造血系細(xì)胞標(biāo)記物、共刺激分子及部分黏附分子,如CD14、CD16、CD31、CD45、CD56、CD62E、CD79、CD104、CD117、CD31、CD144等。而ADSCs肯定表達(dá)CD49,而不表達(dá)CD106;MSC肯定表達(dá)CD106,而不表達(dá)CD49[11,13-14]。通過(guò)免疫標(biāo)志對(duì)ADSCs進(jìn)行有效篩選,可以得到較純的ADSCs,有助于A(yíng)DSCs的進(jìn)一步研究。盡管對(duì)于A(yíng)DSCs的多向分化潛能及表面抗原表達(dá)已有諸多研究報(bào)道,但有關(guān)ADSCs的特異性表面標(biāo)志仍無(wú)統(tǒng)一認(rèn)識(shí)。免疫組化染色和流式細(xì)胞儀檢測(cè)等免疫表型的結(jié)果對(duì)確認(rèn)ADSCs有輔助作用,而鑒定ADSCs的最好方法是進(jìn)行多系定向誘導(dǎo),并進(jìn)行相應(yīng)檢測(cè)以確定誘導(dǎo)成功。
2.1 天然來(lái)源材料
2.1.1 膠原 膠原廣泛存在于細(xì)胞外基質(zhì)和結(jié)締組織中,是目前組織工程研究中最常用的天然生物材料。膠原蛋白有著良好的生物相容性,可被膠原蛋白酶和基質(zhì)金屬酶生物降解;可制成海綿狀三維支架,承載多種細(xì)胞;能釋放生物活性因子,可促進(jìn)細(xì)胞增殖和分化,促進(jìn)脂肪組織形成;可塑性良好,制備方便,是一種較理想的脂肪組織工程支架材料[15-17]。Itoi等[18]發(fā)現(xiàn),Ⅰ型膠原海綿與聚乙醇酸和透明質(zhì)酸凝膠相比,其是最適合做脂肪組織工程的支架材料。細(xì)胞-膠原蛋白復(fù)合物能形成有效的微環(huán)境網(wǎng),提供豐富的血供,有利于新的脂肪組織的持續(xù)生成。但天然的膠原存在機(jī)械性能差且結(jié)構(gòu)不規(guī)則,易于變形,植入體內(nèi)后降解速度過(guò)快等不足,因而在組織工程支架材料的研究中,大多數(shù)采用干熱、戊二醛或紫外輻照等方法交聯(lián),在改善降解速度的同時(shí),提高其綜合使用性能[19]。采用明膠作為生長(zhǎng)因子如成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子-2(FGF-2)的釋放載體,以促進(jìn)組織工程化新生組織中血管的形成[20-22]。膠原材料由于獨(dú)特的生物學(xué)特性,在創(chuàng)傷修復(fù)和整形美容領(lǐng)域研究中已取得了可喜成果,作為組織工程載體材料的研究還需要進(jìn)一步探索。
2.1.2 透明質(zhì)酸 透明質(zhì)酸(hyaluronic acid, HA)存在于正常的結(jié)締組織基質(zhì)中,在很多生物過(guò)程中起著重要作用,如組織水合作用、細(xì)胞分化、細(xì)胞行為和組織修復(fù)。由于結(jié)構(gòu)疏松,含水及多孔性因而特別適合干細(xì)胞的遷移及增殖,防止干細(xì)胞過(guò)早地進(jìn)行分化[23]。研究表明,人類(lèi)前脂肪細(xì)胞可以成功地在HA支架上接種和培養(yǎng),在體內(nèi)能分化為成熟的脂肪細(xì)胞[24]。然而,高度親水性導(dǎo)致了支架力學(xué)特性不佳,加之加工處理特性較差,嚴(yán)重制約了HA應(yīng)用于組織工程學(xué)[25]。目前,有學(xué)者在保留HA生物活性的前提下,通過(guò)變聯(lián)或偶聯(lián)反應(yīng),對(duì)HA進(jìn)行化學(xué)修飾以改變結(jié)構(gòu)和性能。學(xué)者們用HA為原料合成透明質(zhì)酸芐基酯(hyaluronan-based benzyl derivatives, HYAFF)支架,實(shí)驗(yàn)表明此支架具有良好的多孔結(jié)構(gòu)、適合脂肪組織的流變學(xué)、適宜的降解率,并支持細(xì)胞黏附、滲透、增殖、血管增生[26]。
2.1.3 絲素蛋白 絲素蛋白來(lái)源于天然蠶絲或蛛絲,是一種天然結(jié)構(gòu)蛋白。絲素蛋白具有較好的機(jī)械強(qiáng)度和柔韌性;可被蛋白酶水解,降解產(chǎn)物對(duì)周?chē)M織有營(yíng)養(yǎng)和修復(fù)作用;免疫原性低,生物相容性?xún)?yōu)于傳統(tǒng)的人工合成材料,可以支持細(xì)胞黏附、分化和組織形成[27-29]。在組織工程應(yīng)用中,絲素蛋白已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于組織構(gòu)建的支架材料。Wang等[30]研究發(fā)現(xiàn),絲素蛋白對(duì)前脂肪細(xì)胞具有良好的吸附作用,絲素蛋白三維多孔性支架材料在體內(nèi)體外支持脂肪前體細(xì)胞增殖分化的能力與膠原和聚乳酸近似,但其降解率與機(jī)械性能優(yōu)于膠原和聚乳酸,并能促進(jìn)周邊組織中的間充質(zhì)細(xì)胞遷移分化成脂肪細(xì)胞。Altman等[31]在體外培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),接種于絲素蛋白支架上的前脂肪細(xì)胞貼壁良好,生長(zhǎng)增殖活躍,2周左右支架孔隙中充滿(mǎn)前脂肪細(xì)胞,掃描電鏡可見(jiàn)基質(zhì)分泌。絲素蛋白與其他合成材料整合后,所獲得的理化性能和生物學(xué)性能以及更加優(yōu)良的復(fù)合型支架,將成為絲素蛋白構(gòu)建工程化脂肪組織的重要方向之一。
2.2 人工合成材料
2.2.1 脂肪族聚酯材料 聚乳酸(polylatic acid, PLA)、聚羥基乙酸(polyglycolic acid, PGA)、聚乳酸-羥基乙酸共聚物(polylactic-co-glycolic acid, PLGA)為人工合成的脂肪族聚酯材料,具有良好的組織相容性、生物降解性及組織可吸收性,表面活性良好,是常用的細(xì)胞支架材料,被廣泛應(yīng)用于組織工程領(lǐng)域[32]。PLA和PGA是具有良好的生物相容性、可降解性和可滲透性,被廣泛運(yùn)用于脂肪組織工程的三維支架、移植物。體內(nèi)外的研究表明,PLA和PGA有介導(dǎo)脂肪組織生成的能力。PGA分子的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)與PLA類(lèi)似,二者在體內(nèi)首先降解為乳酸,最終生成二氧化碳和水。
PLGA具有促進(jìn)種子細(xì)胞的黏附、增殖、分化的特性,近年來(lái)研究比較廣泛。PLGA通過(guò)孔隙間全連通的三維細(xì)胞支架,其催化降解行為被明顯抑制,支架的外觀(guān)尺寸和孔隙率穩(wěn)定,有利于獲得外觀(guān)尺寸穩(wěn)定的工程化組織[33-34]。PLGA多孔支架能促進(jìn)種子細(xì)胞的黏附、增殖和分化,可作為構(gòu)建工程化脂肪組織的支架材料。但目前尚未發(fā)現(xiàn)脂肪組織存活更長(zhǎng)時(shí)間的實(shí)驗(yàn)報(bào)道。研究顯示,PLGA與細(xì)胞的復(fù)合物植入體內(nèi)5個(gè)月后完全消失,其原因,可能是ADSCs的數(shù)量和促進(jìn)脂肪組織血管化的能力不足,影響了工程化脂肪組織的長(zhǎng)期穩(wěn)定存在。加入諸如bFGF等因子后將ADSCs接種在PLGA支架上,可見(jiàn)細(xì)胞逐漸擴(kuò)展至支架孔隙,隨著支架的降解,新的脂肪組織形成明顯,伴有少量的血管長(zhǎng)入[35-36]。此外,PLGA是通過(guò)水解酯鍵降解,降解產(chǎn)物乳酸和乙醇酸會(huì)降低局部的pH值,從而影響組織和細(xì)胞的黏附與生長(zhǎng)[37]。近年來(lái) ,研究人員通過(guò)溶劑蒸發(fā)技術(shù)在PLGA中加入三磷酸鈉(sodium tripolyphosphate, STPP),不僅能降低pH,而且能促進(jìn)干細(xì)胞在該支架上增殖,該技術(shù)將會(huì)促進(jìn)PLGA的臨床應(yīng)用[37]。目前僅有PLGA等少數(shù)幾種此類(lèi)材料被SFDA、FDA批準(zhǔn)上市,且其來(lái)源主要靠進(jìn)口,價(jià)格昂貴。這些因素在某種程度上限制了PLGA在脂肪組織工程中的應(yīng)用。
2.2.2 HYAFF HYAFF是通過(guò)透明質(zhì)酸和苯甲醇酯化形成的一類(lèi)衍生物。不同的酯化程度可能引起不同的疏水度,孔隙尺寸的不同能導(dǎo)致細(xì)胞黏附的差異性。HYAFF具有良好的生物相容性、水穩(wěn)定性等特性,是一種很有潛力的組織工程支架材料,其可以加工生產(chǎn)出很多生物相容性好的材料,比如導(dǎo)管、膜、紗布、海綿等,已經(jīng)被廣泛用于生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域。此外,HYAFF有良好的生物降解速度,作為一種聚多糖,抗原性非常弱,可促進(jìn)細(xì)胞-支架復(fù)合物血管形成。因此,HYAFF三維多孔支架在脂肪組織工程研究中具有廣闊的前景。其中,HA苯甲基酯(HYAFF-11)是一種近年來(lái)發(fā)展的半合成的可吸收材料,通過(guò)酯化修飾,增強(qiáng)了疏水性,延長(zhǎng)了在機(jī)體內(nèi)的存在時(shí)間,可以更好地抵抗透明質(zhì)酸酶的作用[26,38]。體內(nèi)外研究已經(jīng)證實(shí),其對(duì)前脂肪細(xì)胞的增殖、分化有支持作用,研究表明孔徑為400 μm的HYAFF支架適合前脂肪細(xì)胞增殖分化[26]。HYAFF在脂肪工程領(lǐng)域的研究尚處于起步階段,還有許多問(wèn)題需要進(jìn)一步地探討。
現(xiàn)階段脂肪組織工程的研究還處于早期,有許多問(wèn)題還沒(méi)有解決或需要進(jìn)一步深入研究。成功構(gòu)建穩(wěn)定的脂肪組織需要有血管化的脂肪移植物支持,但血管形成與脂肪形成的相互關(guān)系、ADSC與生物材料表面的相互作用仍需深入研究。對(duì)于應(yīng)用ADSC軟組織填充的基礎(chǔ)研究仍是未來(lái)研究的重點(diǎn)。要將組織工程技術(shù)構(gòu)建的脂肪應(yīng)用于臨床,還需要對(duì)細(xì)胞表面相互作用、體內(nèi)植入物及組織工程網(wǎng)絡(luò)構(gòu)架的生物活性組裝與修飾等方面進(jìn)行深入地研究。
[1] Casadei A, Epis R, Ferroni L, et al. Adipose tissue regeneration: a state of the art[J]. J Biomed Biotechnol, 2012, 2012: 462543.
[2] Vinci V, Borbon G, Codolini L, et al. Fat grafting versus adipose-derived stem cell therapy: distinguishing indications, techniques, and outcomes[J]. Aesthetic Plast Surg, 2013,37(4):856-857.
[3] Philips BJ, Marra KG, Rubin JP. Adipose stem cell-based soft tissue regeneration[J]. Expert Opin Biol Ther, 2012,12(2):155-163.
[4] West CC, Murray IR, Gonzalez ZN, et al. Ethical, legal and practical issues of establishing an adipose stem cell bank for research[J]. J Plast Reconstr Aesthet Surg, 2014 Feb 1.
[5] Sterodimas A, de Faria J, Nicaretta B, et al. Tissue engineering with adipose-derived stem cells (ADSCs): current and future applicatio-ns[J]. J Plast Reconstr Aesthet Surg, 2010,63(11):1886-1892.
[6] Konno M, Hamabe A, Hasegawa S, et al. Adipose-derived mesenchymal stem cells and regenerative medicine[J]. Dev Growth Differ, 2013,55(3):309-318.
[7] Ong WK, Sugii S. Adipose-derived stem cells: fatty potentials for therapy[J]. Int J Biochem Cell Biol, 2013,45(6):1083-1086.
[8] Rodriguez AM, Elabd C, Delteil F, et al. Adipocyte differentiation of multipotent cells established from human adipose tissue[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2004,315(2):255-263.
[10] Vieira NM, Brandalise V, Zucconi E, et al. Isolation, characterization, and differentiation potential of canine adipose-derived stem cells[J]. Cell Transplant, 2010,19(3):279-289.
[11] Huang SJ, Fu RH, Shyu WC, et al. Adipose-derived stem cells: isolation, characterization, and differentiation potential[J]. Cell Transplant, 2013,22(4):701-709.
[12] Zhu X, Du J, Liu G. The comparison of multilineage differentiation of bone marrow and adipose-derived mesenchymal stem cells[J]. Clin Lab, 2012,58(9-10):897-903.
[13] Bailey AM, Kapur S, Katz AJ. Characterization of adipose-derived stem cells: an update[J]. Curr Stem Cell Res Ther, 2010,5(2):95.
[14] Bayati V, Hashemitabar M, Gazor R, et al. Expression of surface markers and myogenic potential of rat bone marrow- and adipose-derived stem cells: a comparative study[J]. Anat Cell Biol, 2013,46(2):113-121.
[15] Keck M, Haluza D, Selig HF, et al. Adipose tissue engineering: three different approaches to seed preadipocytes on a collagen-elastin matrix[J]. Ann Plast Surg, 2011,67(5):484-488.
[16] Lequeux C, Oni G, Wong C, et al. Subcutaneous fat tissue engineering using autologous adipose-derived stem cells seeded onto a collagen scaffold[J]. Plast Reconstr Surg, 2012,130(6):1208-1217.
[17] Xie L, Zhang N, Marsano A, et al. In vitro mesenchymal trilineage differentiation and extracellular matrix production by adipose and bone marrow derived adult equine multipotent stromal cells on a collagen scaffold[J]. Stem Cell Rev, 2013,9(6):858-872.
[18] Itoi Y, Takatori M, Hyakusoku H, et al. Comparison of readily available scaffolds for adipose tissue engineering using adipose-derived stem cells[J]. J Plast Reconstr Aesthet Surg, 2010,63(5):858-864.
[19] Panda NN, Jonnalagadda S, Pramanik K. Development and evaluation of cross-linked collagen-hydroxyapatite scaffolds for tissue engineering[J]. J Biomater Sci Polym Ed, 2013,24(18):2031-2044.
[20] Ito R, Morimoto N, Liem PH, et al. Adipogenesis using human adipose tissue-derived stromal cells combined with a collagen/gelatin sponge sustaining release of basic fibroblast growth fact-or[J]. J Tissue Eng Regen Med, 2012.
[21] Kimura Y, Inamoto T, Tabata Y. Adipose tissue formation in collagen scaffolds with different biodegradabilities[J]. J Biomater Sci Polym Ed, 2010,21(4):463-476.
[22] Kimura Y, Tsuji W, Yamashiro H, et al. In situ adipogenesis in fat tissue augmented by collagen scaffold with gelatin microspheres containing basic fibroblast growth factor[J]. J Tissue Eng Regen Med, 2010,4(1):55-61.
[23] Collins MN, Birkinshaw C. Hyaluronic acid based scaffolds for tissue engineering--a review[J]. Carbohydr Polym, 2013,92(2):1262-1279.
[24] Altman AM, Abdul KF, Seidensticker M,et al. Human tissue-resident stem cells combined with hyaluronic acid gel provide fibrovascular-integrated soft-tissue augmentation in a murine photoaged skin model[J]. Plast Reconstr Surg, 2010,125(1):63-73.
[25] Elder AN, Dangelo NM, Kim SC, et al. Conjugation of beta-sheet peptides to modify the rheological properties of hyaluronic acid[J]. Biomacromolecules, 2011,12(7):2610-2616.
[26] Vindigni V, Tonello C, Lancerotto L, et al. Preliminary report of in vitro reconstruction of a vascularized tendonlike structure: a novel application for adipose-derived stem cells[J]. Ann Plast Surg, 2013,71(6):664-670.
[27] Bhattacharjee M, Schultz-Thater E, Trella E, et al. The role of 3D structure and protein conformation on the innate and adaptive immune responses to silk-based biomaterials[J]. Biomaterials, 2013,34(33):8161-8171.
[28] Preda RC, Leisk G, Omenetto F, et al. Bioengineered silk proteins to control cell and tissue functions[J]. Methods Mol Biol, 2013,996:19.
[29] Oliveira AL, Sun L, Kim HJ, et al. Aligned silk-based 3-D architectures for contact guidance in tissue engineering[J]. Acta Biomater, 2012,8(4):1530-1542.
[30] Wang X, Zhang X, Sun L, et al. Preadipocytes stimulate ductal morphogenesis and functional differentiation of human mammary epithelial cells on 3D silk scaffolds[J]. Tissue Eng Part A, 2009,15(10):3087-3098.
[31] Altman AM, Gupta V, Rios CN, et al. Adhesion, migration and mechanics of human adipose-tissue-derived stem cells on silk fibroin-chitosan matrix[J]. Acta Biomater, 2010,6(4):1388-1397.
[32] Liu X, Holzwarth JM, Ma PX. Functionalized synthetic biodegradable polymer scaffolds for tissue engineering[J]. Macromol Biosci, 2012,12(7):911-919.
[33] Wang W, Cao B, Cui L, et al. Adipose tissue engineering with human adipose tissue-derived adult stem cells and a novel porous scaffold[J]. J Biomed Mater Res B Appl Biomater, 2013,101(1):68.
[34] Morgan SM, Ainsworth BJ, Kanczler JM, et al. Formation of a human-derived fat tissue layer in P(DL)LGA hollow fibre scaffolds for adipocyte tissue engineering[J]. Biomaterials, 2009,30(10):1910-1917.
[35] Marra KG, Defail AJ, Clavijo-Alvarez JA, et al. FGF-2 enhances vascularization for adipose tissue engineering[J]. Plast Reconstr Surg, 2008,121(4):1153-1164.
[36] Mahmoudifar N, Doran PM. Chondrogenic differentiation of human adipose-derived stem cells in polyglycolic acid mesh scaffolds under dynamic culture conditions[J]. Biomaterials, 2010,31(14):3858-3867.
[37] Xie S, Zhu Q, Wang B, et al. Incorporation of tripolyphosphate nanoparticles into fibrous poly(lactide-co-glycolide) scaffolds for tissue engineering[J]. Biomaterials, 2010,31(19):5100-5109.
[38] Borzacchiello A, Mayol L, Ramires PA, et al. Structural and rheological characterization of hyaluronic acid-based scaffolds for adipose tissue engineering[J]. Biomaterials, 2007,28(30):4399-4408.
10.3969/j.issn.1673-7040.2014.04.012
2013-11-28)
浙江省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(Y2110414);浙江省教育廳科研資助項(xiàng)目(Y201016650)
310003 浙江 杭州,浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第一醫(yī)院 整形美容中心
徐 婷(1985- ),女,浙江杭州人,醫(yī)師.