王 蕓, 黃志強(qiáng), 葉 英, 張 瑩, 肖水源
(1.中南大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,湖南 長沙410078;2.湖南省檢驗檢疫科學(xué)技術(shù)研究院,湖南 長沙410004;3.島津企業(yè)管理(中國)有限公司,廣東 廣州510000;4.新疆醫(yī)科大學(xué)護(hù)理學(xué)院,新疆 烏魯木齊830000)
世界上約有40%的兒童被動吸煙;在因被動吸煙早死的60萬人中,兒童約占28%。兒童被動吸煙易引起呼吸道感染、中耳炎、支氣管炎、哮喘、咳嗽癥狀以及行為和認(rèn)知障礙[1]。進(jìn)入人體內(nèi)的尼古丁約80%經(jīng)細(xì)胞色素氧化酶CYP2A6代謝為可丁寧,而可丁寧在體內(nèi)的半衰期為18~22 h,較尼古丁延長了約20 h,且尼古丁是可丁寧的唯一來源,從而更能反映人體3~4天被動吸煙情況。由于可丁寧在人體體液、臟器以及頭發(fā)、趾甲等部位分布廣泛[2],因而被公認(rèn)為被動吸煙最佳的生物標(biāo)志物[3,4]。
生物樣品中可丁寧的檢測方法主要有放射免疫法[5]、酶聯(lián)免疫法[6,7]、氣相色譜法[8,9]、氣相色譜-質(zhì)譜法[10,11]、液相色譜法[12]、液相色譜-質(zhì)譜法[13]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[14-17]和氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS)[18]等。但 GC-MS/MS技術(shù)在對被動吸煙人群可丁寧的分析應(yīng)用報道較少,方法的定量限在1~0.5μg/L 之間,難以滿足兒童尿液中可丁寧的測定要求。本文采用三氯甲烷提取、凈化,GC-MS/MS檢測被動吸煙兒童尿液中的可丁寧,基質(zhì)匹配內(nèi)標(biāo)同位素稀釋法定量,方法定量限達(dá)到0.1μg/L。本方法操作簡便、準(zhǔn)確、靈敏、穩(wěn)定性好,可以用于被動吸煙兒童尿液中可丁寧的監(jiān)測和吸煙人群戒煙效果的評價。
氣相色譜-三重四極桿質(zhì)譜聯(lián)用儀(GCMSTQ8030,日本島津公司);高速臺式離心機(jī)(UNIVERSAL 320,德國 Hettich公司);快速混勻器(AHYQ SK-1,常州澳華儀器有限公司);可丁寧(cotinine,純度為98%,購于美國Sigma公司);可丁寧-d3(cotinine-d3,純度為99%,加拿大 Toronto Research Chemicals公司);三氯甲烷(色譜純);無水硫酸鈉(分析純,用前在500℃馬弗爐內(nèi)烘5 h,冷卻后放入干燥器中備用);實驗用水均為蒸餾水。
標(biāo)準(zhǔn)溶液配制:稱取10.00 mg可丁寧標(biāo)準(zhǔn)品置于5 mL小燒杯中,用三氯甲烷溶解后轉(zhuǎn)移到100 mL容量瓶中,配制成質(zhì)量濃度為100 mg/L 的單標(biāo)準(zhǔn)儲備液,貯存在-20℃冰箱中備用。稱取10.00 mg可丁寧-d3標(biāo)準(zhǔn)品于100 mL容量瓶中,配制成質(zhì)量濃度為100 mg/L單標(biāo)準(zhǔn)儲備液,貯存在-20℃冰箱中備用。
標(biāo)準(zhǔn)工作液配制:用空白尿液基質(zhì)提取液和標(biāo)準(zhǔn)儲備液配制成0.1、0.5、1、5、10μg/L 的可丁寧及2μg/L 可丁寧-d3混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液。
尿液于5℃冰箱中冷藏保存。分析時,先將尿液在室溫下放置10 min,取2.0 mL尿液于試管中,加入 20μg/L 可 丁寧-d3溶液 200μL,加入 1 mol/L氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)尿液pH為10,再加入1 mL飽和硫酸鈉溶液,最后加入2.0 mL三氯甲烷溶液,于渦旋混合器上充分混勻1 min,以 7 000 r/min速度離心10 min,下層有機(jī)相收集于自動進(jìn)樣瓶中,供GC-MS/MS測定。
色譜柱:Rxi-5 Sil MS,30 m×0.25 mm×0.25 μm(美國RESTEK公司);載氣:高純氦氣(純度99.999%),柱內(nèi)流量1.48 mL/min;柱溫程序:初始溫度60℃(保持0.5 min),以40℃/min 升溫至200℃(保持0.5 min),再以10℃/min 升溫至220℃(保持0.5 min),最后以40℃/min 升溫至300℃(保持3 min);進(jìn)樣口溫度:270℃;進(jìn)樣量:1μL;進(jìn)樣方式:不分流進(jìn)樣,進(jìn)樣時間1 min;總運行時間12 min。
離子源溫度:230℃;電離模式:電子轟擊電離(EI);轟擊能量:70 eV;燈絲電流:150μA;碰撞氣:氬氣(純度99.999%);碰撞電壓:可丁寧8 eV,可丁寧-d36 eV;溶劑延遲時間:4.5 min;數(shù)據(jù)采集模式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)??啥幎侩x子對為m/z 176.10>98.05,定 性 離 子 對 為 m/z 176.10>147.05和 m/z 147.05>118.05;可丁寧-d3定量離子對為m/z 179.10>101.10,定性離子對為 m/z 179.10>147.05和m/z 101.10>73.05。
選取正己烷、三氯甲烷、乙酸乙酯等3種溶劑,按前述樣品前處理步驟處理尿液,采用正己烷、乙酸乙酯提取尿液時,絮狀沉淀物多,乳化現(xiàn)象非常嚴(yán)重,分層困難,可丁寧加標(biāo)回收率非常低;而采用三氯甲烷提取時分層明顯,無乳化現(xiàn)象,加標(biāo)回收率穩(wěn)定,故選擇了三氯甲烷作為萃取溶劑。
采用三氯甲烷溶液和空白尿液提取液配制不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,兩種溶液等體積進(jìn)樣,測量峰面積,比較兩組溶液響應(yīng)值的差異,結(jié)果如圖1所示。經(jīng)配對t檢驗,兩者差異有統(tǒng)計學(xué)意義(p=0.030),圖1表明基質(zhì)提取液對可丁寧響應(yīng)信號有明顯增強(qiáng)作用,尿液基質(zhì)效應(yīng)明顯。因此,本實驗采用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行校正。
圖1 三氯甲烷和空白尿液基質(zhì)中的可丁寧在GC-MS/MS分析中的峰面積Fig.1 Peak areas of the cotinine in chloroform and blank urine matrix by GC-MS/MS analysis
圖2 (a)空白尿液提取液、(b)空白尿液基質(zhì)匹配可丁寧(10 μg/L)和內(nèi)標(biāo)可丁寧-d3(2μg/L)混合標(biāo)準(zhǔn)溶液 MRM的總離子流色譜圖和(c)可丁寧的離子對色譜圖Fig.2 MRM total ion chromatograms of(a)blank urine matrix,(b)blank urine matrix spiked with the cotinine(10μg/L)and internal standard cotinine-d3(2μg/L)mixed standard solution and (c)MRM chromatogram of transition of cotininePeak identifications:1.cotinine-d3;2.cotinine.
空白尿液提取液、空白尿液基質(zhì)匹配可丁寧和可丁寧-d3混合標(biāo)準(zhǔn)溶液的總離子流色譜圖見圖2a和2b;在2~40 eV范圍內(nèi)優(yōu)化碰撞電壓,最終選定m/z 176.10>98.05作為可丁寧的定量離子對,m/z 176.10>147.05和m/z 147.05>118.05作為可丁寧的定性離子對 (見圖 2c);m/z 179.10>101.10作為可丁寧-d3的定量離子對,m/z 179.10>147.05和m/z 101.10>73.05作為可丁寧-d3的定性離子對,與其他質(zhì)譜檢測采用優(yōu)化方法一致[19]。
2.4.1 方法的線性范圍和定量限
本文采用空白尿液基質(zhì)提取液(按1.3節(jié)制備)準(zhǔn)確配制含量分別為0.1、0.5、1、5和10μg/L 的系列混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照1.4節(jié)條件進(jìn)行測定,以可丁寧濃度/可丁寧-d3濃度比值與可丁寧峰面積/可丁寧-d3峰面積比值繪制曲線圖,可丁寧在空白尿液基質(zhì)中的線性關(guān)系良好,其線性范圍為0.1~10 μg/L,在相應(yīng)的含量范圍內(nèi)線性相關(guān)系數(shù)(r)大于0.998。在信噪比(S/N)大于10時,通過回收率試驗確定兒童尿液中可丁寧的定量限為0.1μg/L,能夠滿足被動吸煙兒童尿液中可丁寧的測定。
2.4.2 回收率
在空白兒童尿液中分別添加0.1、1和10μg/L的可丁寧進(jìn)行回收率試驗;對含有可丁寧的兒童尿液分別添加大約0.5倍、2倍和4倍本底值濃度的可丁寧進(jìn)行回收率試驗。測定結(jié)果見表1。
表1 尿液樣品中可丁寧的加標(biāo)回收率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)Table 1 Recoveries and relative standard deviations(RSDs)of cotinine spiked in urine samples(n=6)
表1數(shù)據(jù)表明:可丁寧在尿液中的回收率為79.2%~112.8%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差在6%以內(nèi)。與其他研究[6,20,21]相比有較好的準(zhǔn)確度和精密度;方法準(zhǔn)確度、精密度能滿足被動吸煙兒童生物標(biāo)志物可丁寧的檢測要求。
2.4.3 日內(nèi)和日間精密度和準(zhǔn)確性
在空白尿液中分別加入0.1、1和10μg/L 可丁寧及2μg/L可丁寧-d3混合溶液,分別平行處理6個樣品,按前述方法進(jìn)行測定,結(jié)果見表2。
表2 尿液中可丁寧測定的日內(nèi)、日間精密度和準(zhǔn)確性Table 2 Intra-day and inter-day precisions and accuraciesof analysis for cotinine in urine samples
2.4.4 穩(wěn)定性
標(biāo)準(zhǔn)工作液的穩(wěn)定性:以三氯甲烷溶液配制3個不同濃度(0.3、1和10μg/L)的可丁寧及2μg/L可丁寧-d3標(biāo)準(zhǔn)工作液,分別在當(dāng)天和室溫下在自動進(jìn)樣器上放置24 h后檢測,重復(fù)測量6次。兩次測得的結(jié)果相對偏差均小于1%。同時對兩組數(shù)據(jù)進(jìn)行配對t檢驗,經(jīng)統(tǒng)計學(xué)檢驗,兩組數(shù)據(jù)無統(tǒng)計學(xué)意義(p≥0.05)。說明標(biāo)準(zhǔn)工作液在常溫下放置24 h內(nèi)穩(wěn)定。
處理后的尿樣穩(wěn)定性:室溫下將尿樣提取液放置在自動進(jìn)樣器上至少24 h。24 h后對10個尿樣提取液進(jìn)行檢測,相對偏差小于1%,說明常溫下尿樣提取液在24 h內(nèi)穩(wěn)定。
短期穩(wěn)定性:尿樣在5℃和-10℃下儲存,分別在第0、1、2、3和5天進(jìn)行檢測,每個濃度重復(fù)2次。在5℃條件下,測得結(jié)果的相對偏差小于4%;-10℃條件下,測得結(jié)果的相對偏差小于3%。說明尿樣可以在5℃和-10℃條件下穩(wěn)定儲存5天。
長期穩(wěn)定性:將尿樣儲存在-20℃的冰箱內(nèi),在第0、3、5、13、15、20、28天分別進(jìn)行檢測,每個濃度重復(fù)測量2次。測得結(jié)果的相對偏差小于2%。實驗結(jié)果表明:在-20℃條件下儲存尿樣28天,尿樣是穩(wěn)定的。
融凍循環(huán)的穩(wěn)定性:樣品儲存在-20℃冰箱內(nèi)24 h后,取出在室溫下自行融化。當(dāng)尿樣完全融化后,再次放入相同條件下冷凍24 h。這個融凍循環(huán)重復(fù)2次后樣品被再次分析,至少在3次融凍循環(huán)下,相對偏差小于10%說明樣品是穩(wěn)定的。我們對5個兒童尿樣進(jìn)行了分析,結(jié)果相對偏差均超過10%,提示尿樣在反復(fù)融凍循環(huán)下,穩(wěn)定性較差。
為驗證方法的有效性,對幼兒園60名5~6歲被動吸煙兒童尿液進(jìn)行了檢測。60名被動吸煙兒童中有10名兒童尿液未檢測出可丁寧,即尿液中的可丁寧<0.1μg/L,50名被動吸煙兒童尿液檢測出可丁寧質(zhì)量濃度范圍在0.42~27.76μg/L。
采用三氯甲烷萃取、凈化,建立了GC-MS/MS同位素稀釋法測定被動吸煙兒童尿液中可丁寧的方法,方法的線性、準(zhǔn)確度、精密度滿足方法學(xué)要求,方法定量限達(dá)到0.1μg/L,可以對兒童尿液中痕量可丁寧進(jìn)行定量檢測和確證。方法準(zhǔn)確、可靠、快速、靈敏,可作為兒童被動吸煙的監(jiān)測、個體吸煙和被動吸煙者自報準(zhǔn)確性的驗證,也可作為評價戒煙和被動吸煙干預(yù)的有效手段。
[1] Oberg M,Jaakkola M S,Woodward A,et al.Lancet,2011,377(9760):139
[2] Prignot J J.Int J Environ Res Public Health,2011,8:648
[3] Wu C F,Uang S N,Chiang S Y,et al.Anal Bioanal Chem,2012,402:2113
[4] Benowitz N L,Hukkanen J,Jacob P III.Handb Exp Pharmacol,2009,192:29
[5] Knight G J,Wylie P,Holman M S,et al.Clin Chem,1985,31(1):118
[6] Park S,Lee D H,Park J G,et al.Clin Chim Acta,2010,411(17/18):1238
[7] Wielkoszynski T,Tyrpien K,Szumska M.J Pharm Biomed A-nal,2009,49(5):1256
[8] Feyerabend C,Russell M A.J Pharm Pharmacol,1990,42(6):450
[9] Church T R,Anderson K E,Le C,et al.Biomarkers,2010,15(4):345
[10] Matsumoto A,Matsumoto A,Ichiba M,et al.Environ Health Prev Med,2013,18(3):244
[11] Massadeh A M,Gharaibeh A A,Omari K W.J Chromatogr Sci,2009,47(2):170
[12] Mahoney G N,Al Delaimy W.J Chromatogr B Biomed Sci Appl,2001,753(2):179
[13] Gabr R Q,Elsherbiny M E,Somayaji V,et al.Biomed Chromatogr,2011,25(10):1124
[14] De Cremer K,Overmeire I V,Van Loco J.J Pharmaceut Biomed,2013,76:126
[15] Xia Y,Xu M,Alexander R R,et al.J Chromatogr B,2011,879(22):2142
[16] Hou H,Xiong W,Zhang X,et al.J Anal Methods Chem,2012,2012:245415
[17] Marclay F,Saugy M.J Chromatogr A,2010,1217(48):7528
[18] Da Fonseca B M,Moreno I E D,Magalhaes A R,et al.J Chromatogr B,2012,889:116
[19] Xu D M,Chen Y,Zhou S,et al.Chinese Journal of Chromatography(徐敦明,陳燕,周爽,等.色譜),2013,31(12):1224
[20] Fan Z,Liu H M,Xie F W,et al.Tobacco Science and Technology(范忠,劉惠民,謝復(fù)煒,等.煙草科技),2008(9):39
[21] Zhou W H,Wang Y,Yu L,et al.Acta Chimica Sinica(周宛虹,王曄,余苓,等.化學(xué)學(xué)報),2011,69(7):803