劉常姝,李 紅,崔云前,* ,王吉龍
(1.齊魯工業(yè)大學(xué)食品與生物工程學(xué)院,山東濟(jì)南 250353;2.中國(guó)食品發(fā)酵工業(yè)研究院,北京 100015;3.山東農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東泰安 271018)
飲用啤酒能夠引起血液中尿酸含量上升,從而引發(fā)高尿酸血癥及痛風(fēng),通過(guò)降低啤酒中的嘌呤含量有效避免這一現(xiàn)象[1-2]。目前有關(guān)低嘌呤啤酒的研究,常見(jiàn)方法有高比例輔料法、高濃發(fā)酵法和吸附法[3-7]。這些方法在低嘌呤啤酒的實(shí)際生產(chǎn)中仍面臨諸多問(wèn)題,如高比例輔料法降低啤酒嘌呤物質(zhì)含量的程度有限,而吸附法會(huì)引起啤酒風(fēng)味損失[8]。因此,開(kāi)辟新的嘌呤減少途徑對(duì)低嘌呤啤酒的生產(chǎn)有重要意義。
啤酒中的嘌呤主要來(lái)自麥芽,麥芽中的嘌呤溶于麥汁中[9-10]。研究表明,酵母能夠吸收培養(yǎng)液中嘌呤物質(zhì),用于維持自身的生長(zhǎng)代謝與繁殖[11-12]。經(jīng)酵母發(fā)酵后,發(fā)酵液殘留嘌呤,尤其是鳥(niǎo)嘌呤和腺嘌呤的含量明顯降低[13],證明酵母吸收確實(shí)是可以降低啤酒嘌呤含量的有效途徑。因此,研究酵母對(duì)嘌呤物質(zhì)的吸收規(guī)律,能夠更科學(xué)、更高效地利用酵母吸收嘌呤物質(zhì),從而降低啤酒嘌呤含量。
培養(yǎng)液中嘌呤有游離嘌呤和非游離嘌呤兩種存在形式,非游離嘌呤幾乎全部是以嘌呤核苷的形式存在[14-15]。水解核苷能夠顯著增加游離嘌呤的含量。嘌呤核苷酶能夠使核苷中非游離態(tài)嘌呤轉(zhuǎn)化成游離態(tài)[16]。麥芽自身含有的嘌呤核苷酶酶活非常低[17-19],市面常見(jiàn)的嘌呤核苷磷酸化酶(PNP)產(chǎn)品酶活相對(duì)較高,更適用于增加游離嘌呤含量。目前國(guó)內(nèi)外對(duì)核酸水解酶的研究較多,但研究所得的目的產(chǎn)物均為核苷酸[20-21],對(duì)水解核苷的嘌呤核苷酶的研究較少[22-24],國(guó)內(nèi)尚未有該方面研究。Shibano Y 等人從人蒼白桿菌(Ochrobactrum anthropi)中提取了嘌呤核苷酶并用于生產(chǎn)低嘌呤啤酒,取得了一定成果[15]。
YPD液體培養(yǎng)基 北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;鳥(niǎo)嘌呤、腺嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤標(biāo)準(zhǔn)品HPLC 99%,美國(guó)Sigma公司;鳥(niǎo)苷、腺苷、肌苷、黃苷標(biāo)準(zhǔn)品 99%,北京索萊寶科技有限公司;嘌呤核苷磷酸化酶8.78U/mg,500U 北京世紀(jì)山水科技有限公司。
高效液相色譜儀 配有紫外檢測(cè)器和CLASS-VP工作站,日本島津;pH計(jì)PHS-3C 上海精密科學(xué)儀器有限公司;分析天平Tecator-6002 Switzerland公司;恒溫水浴鍋HX105 長(zhǎng)流科學(xué)儀器廠。
1.2.1 酵母吸收嘌呤實(shí)驗(yàn) 向YPD液體培養(yǎng)基中分別添加不同含量的嘌呤及嘌呤核苷標(biāo)準(zhǔn)品,制得多組嘌呤含量不同的酵母培養(yǎng)液。其中,5組游離嘌呤與總嘌呤(游離與非游離嘌呤總和)含量均不相同的培養(yǎng)液用于研究酵母對(duì)不同形式嘌呤化合物吸收規(guī)律,記為培養(yǎng)液1、2、3、4、5;10 組游離嘌呤含量依次升高,總嘌呤含量相同的培養(yǎng)液用于研究麥汁嘌呤游離率對(duì)酵母的嘌呤吸收率的影響,記為W1~W10。取300mL培養(yǎng)液分裝至500mL三角瓶。無(wú)菌環(huán)境下接種適量酵母,發(fā)酵溫度控制在12±0.2℃,24h內(nèi)每4h搖動(dòng)一次,24h后加發(fā)酵栓,發(fā)酵7d,檢測(cè)發(fā)酵液的游離嘌呤及總嘌呤含量。每組實(shí)驗(yàn)做三個(gè)平行。
1.2.2 PNP反應(yīng)體系與反應(yīng)條件實(shí)驗(yàn) 酶液配制:分別稱(chēng)取 0.0200、0.0400、0.0800g PNP 酶,用 pH7.0磷酸鉀緩沖液定容至10mL,配制成2、4、8mg/mL的酶液A、酶液B、酶液C,4℃保存待用。PNP反應(yīng)實(shí)驗(yàn):取4 支試管,各加 5mL 麥汁,編號(hào) 0、1、2、3,分別加入100μL磷酸鉀緩沖液、酶液A、酶液B、酶液C,30℃反應(yīng)10min。煮沸2min終止反應(yīng),冷卻后,檢測(cè)反應(yīng)液的游離嘌呤及總嘌呤;另取3支試管,反應(yīng)體系與反應(yīng)溫度同上,反應(yīng)時(shí)間分別為10、30、60min。上述實(shí)驗(yàn)均做三次平行。
1.2.3 樣品處理方法 參考文獻(xiàn)[25],游離嘌呤檢測(cè)樣品:取1mL樣品,經(jīng)0.45μm膜過(guò)濾,直接進(jìn)樣檢測(cè);總嘌呤檢測(cè)樣品:樣品超聲5min除氣,取2mL于10mL比色管,加入 2mL 3mol/L硫酸溶液,100℃水解5min,冰浴冷卻,加入4mL 3mol/L NaOH中和,用超純水定容至10mL,經(jīng)0.45μm膜過(guò)濾后進(jìn)樣。
1.2.4 液相色譜條件 參考文獻(xiàn)[26-27],色譜柱:Thermo Hypersil GOLD AQ(4.6mm × 250,5μm);柱溫:25℃;流 動(dòng) 相:0.02mol/LKH2PO4緩 沖 液(pH4.00);流速1mL/min;進(jìn)樣量:10μL;紫外檢測(cè)波長(zhǎng):254nm。
1.2.5 數(shù)據(jù)處理 為了研究方便,本文中提出了兩個(gè)概念。一是嘌呤游離率,其定義為培養(yǎng)液游離嘌呤含量與總嘌呤含量的百分比,表示嘌呤的游離程度;二是酵母的嘌呤吸收率,其定義為被酵母吸收的嘌呤量與培養(yǎng)液游離嘌呤含量的比值,用來(lái)表示酵母對(duì)嘌呤的吸收能力。二者的計(jì)算公式分別為:
2.1.1 酵母對(duì)不同形式嘌呤化合物吸收規(guī)律的研究5組嘌呤含量各不相同的培養(yǎng)液發(fā)酵前(BF)與發(fā)酵后(AF)游離鳥(niǎo)嘌呤(FG)、游離次黃嘌呤(FH)、游離黃嘌呤(FX)、游離腺嘌呤(FA)以及總游離嘌呤(TFG)含量見(jiàn)表1,麥汁發(fā)酵前后非游離鳥(niǎo)嘌呤(NFG)、非游離次黃嘌呤(NFH)、非游離黃嘌呤(NFX)、非游離腺嘌呤(NFA)以及總非游離嘌呤(TNFP)含量見(jiàn)表2。
由表1可以看出,5種嘌呤含量的培養(yǎng)液經(jīng)過(guò)發(fā)酵后,各種游離嘌呤含量明顯低于發(fā)酵前。對(duì)表中數(shù)據(jù)分析可知,發(fā)酵前后非游離的鳥(niǎo)嘌呤、次黃嘌呤、腺嘌呤以及總嘌呤含量均呈顯著正相關(guān)關(guān)系,相關(guān)系數(shù)分別為 0.985、0.985、0.989、0.935、0.985(p<0.05);發(fā)酵前后游離態(tài)的鳥(niǎo)嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤、腺嘌呤以及總嘌呤的均值差值分別為13.58、1.88、1.44、16.86和33.86mg/L(p<0.05),說(shuō)明發(fā)酵前游離嘌呤的含量高于發(fā)酵后,差異顯著。由此可以證明,酵母能夠吸收利用游離嘌呤。
另外,由表1還可看出發(fā)酵后仍有少量游離嘌呤存在,可見(jiàn)酵母無(wú)法完全利用培養(yǎng)液中的游離嘌呤。
由表2可以看出,5種嘌呤含量的培養(yǎng)液經(jīng)過(guò)發(fā)酵后,各種非游離嘌呤含量與發(fā)酵前相比基本無(wú)變化。
經(jīng)過(guò)數(shù)據(jù)分析可知,發(fā)酵前后非游離的鳥(niǎo)嘌呤、次黃嘌呤、腺嘌呤以及總嘌呤含量均呈顯著正相關(guān)關(guān)系,相關(guān)系數(shù)分別為0.999(p<0.01)、0.993(p<0.01)、0.983(p<0.01)、0.998(p<0.01)、0.999(p<0.01);上述非游離嘌呤對(duì)應(yīng)的均值差值分別為0.66、-0.12、-0.10、0.04 和 0.52mg/L(p>0.05),說(shuō)明發(fā)酵前后非游離嘌呤的含量均無(wú)顯著差異。由此可以證明,發(fā)酵過(guò)程中非游離嘌呤含量不發(fā)生變化,即酵母不能吸收利用非游離嘌呤。個(gè)別檢測(cè)值為負(fù)是由液相檢測(cè)方法的準(zhǔn)確性導(dǎo)致的誤差。
綜上可知,酵母能且只能吸收游離形態(tài)的嘌呤,但不能將游離嘌呤完全吸收。因此,研究酵母對(duì)培養(yǎng)液嘌呤的吸收規(guī)律,即研究酵母對(duì)培養(yǎng)液中游離嘌呤的吸收規(guī)律。
2.1.2 培養(yǎng)液嘌呤游離率對(duì)酵母的嘌呤吸收率的影響 W1~W10十種不同培養(yǎng)液的鳥(niǎo)嘌呤(G)、次黃嘌呤(H)、黃嘌呤(X)、腺嘌呤(A)和總嘌呤(TP)的游離率見(jiàn)圖1,酵母對(duì)各嘌呤的吸收量以及吸收率分別見(jiàn)圖2和圖3。
表1 培養(yǎng)液發(fā)酵前后游離態(tài)嘌呤含量Table 1 The content of free purines of 5 worts before and after fermentation
表2 培養(yǎng)液發(fā)酵前后非游離態(tài)嘌呤含量Table 2 The content of non-free purines of 5 worts before and after fermentation
圖1 10組不同培養(yǎng)液的嘌呤游離率Fig.1 The purine dissociation rate of 10 different worts
圖2 酵母對(duì)10組不同培養(yǎng)液的嘌呤吸收量Fig.2 The purine absorption of 10 different worts
由圖1和圖2可以看出,隨著培養(yǎng)液中嘌呤游離程度的增加,酵母對(duì)各種嘌呤的吸收量升高。酵母的嘌呤吸收量與培養(yǎng)液的嘌呤游離率之間相關(guān)性顯著(鳥(niǎo)嘌呤R2>0.990,p<0.01;次黃嘌呤R2>0.991,p<0.01;黃嘌呤R2>0.998,p<0.01;腺嘌呤R2>0.996,p<0.01;總嘌呤R2>0.995,p<0.01)。由于酵母從胞外吸收游離嘌呤的主要途徑是主動(dòng)運(yùn)輸,當(dāng)培養(yǎng)液中總嘌呤含量一定時(shí),嘌呤游離率越高,游離嘌呤含量越高,與酵母細(xì)胞膜上載體結(jié)合概率越大,酵母越容易從外部獲得嘌呤,因此導(dǎo)致酵母對(duì)各種嘌呤的吸收量升高。
圖3 酵母對(duì)10組不同培養(yǎng)液的嘌呤吸收率Fig.3 The purine absorption rate of 10 different worts
另外,酵母吸收 G、H、X、A、TP增加量與培養(yǎng)液中對(duì)應(yīng)嘌呤增加量的均值差值分別為-1.12(p>0.05)、-0.04(p>0.05)、-0.15(p>0.05)、-0.16(p>0.05)、-1.14(p>0.05),即酵母吸收嘌呤的增加量均低于相應(yīng)嘌呤在培養(yǎng)液中的增加量。說(shuō)明培養(yǎng)液中增加的游離嘌呤無(wú)法被酵母完全吸收。
由圖1和圖3可以看出,隨著培養(yǎng)液中嘌呤游離程度的增加,酵母對(duì)各種嘌呤的吸收率變化并不一致。總的來(lái)說(shuō),當(dāng)嘌呤游離率小于90%時(shí),隨著培養(yǎng)液中嘌呤程度的增加,酵母對(duì)游離嘌呤的整體吸收率基本不變;當(dāng)嘌呤游離率大于90%時(shí),酵母對(duì)嘌呤的吸收率略有降低。
其中,對(duì)于培養(yǎng)液中的次黃嘌呤、黃嘌呤,隨著培養(yǎng)液中嘌呤游離程度的增加,其吸收率均呈升高趨勢(shì)。說(shuō)明酵母吸收嘌呤的增加速度大于培養(yǎng)液游離嘌呤的增加速度。在游離次黃嘌呤、游離黃嘌呤含量較低的條件下,其含量變化對(duì)酵母吸收這兩種嘌呤的影響極大,酵母吸收嘌呤的能力呈非線(xiàn)性增長(zhǎng),從而引起吸收率增高的現(xiàn)象。
對(duì)于G、A,當(dāng)嘌呤游離率小于90%時(shí),隨著培養(yǎng)液中嘌呤程度的增加,酵母對(duì)這兩種嘌呤的吸收率基本不變;當(dāng)嘌呤游離率大于90%時(shí),吸收率明顯降低。這是因?yàn)榕囵B(yǎng)液中這兩種嘌呤整體含量水平較高,而酵母對(duì)游離嘌呤的吸收能力有一定限度,當(dāng)培養(yǎng)液中G、A含量過(guò)高時(shí)(G>19.8±0.5mg/L,A>20.1±0.4mg/L),酵母不能充分利用多出來(lái)的游離嘌呤,因此,酵母對(duì)這兩種游離嘌呤的吸收率反而降低,這與酵母在該條件下嘌呤吸收量升高并不矛盾。
綜上可知,當(dāng)嘌呤含量極低時(shí),酵母對(duì)嘌呤的吸收率隨嘌呤游離率的增加而增加;當(dāng)嘌呤含量適中時(shí),酵母對(duì)嘌呤的吸收率維持在一定水平,不隨嘌呤游離率的增加而改變;當(dāng)嘌呤含量過(guò)高時(shí),隨著嘌呤游離率的增加,酵母的嘌呤吸收率逐漸下降。
另外,由圖3還可看出,其中腺嘌呤的吸收率始終是四種嘌呤中最高的,基本維持在100%。其次是次黃嘌呤、鳥(niǎo)嘌呤和黃嘌呤。
上述結(jié)論表明,增加培養(yǎng)液中游離嘌呤比例,能夠有效增加酵母對(duì)游離嘌呤的吸收量,從而減少啤酒中的嘌呤含量。
為了研究PNP對(duì)麥汁嘌呤含量的影響,本文以麥汁為底物,添加適量PNP酶制劑進(jìn)行反應(yīng)。
2.2.1 PNP添加量對(duì)麥汁中游離嘌呤的影響 向一定量麥汁中添加不同含量的PNP酶,檢測(cè)添加后麥汁嘌呤變化。不同PNP酶添加量麥汁中嘌呤游離率見(jiàn)圖4。
圖4 PNP添加量對(duì)4種嘌呤游離率的影響Fig.4 The effect of PNP addition on 4 kinds purine dissociation rate
由圖4可以看出,隨著PNP添加量的增加,麥汁中整體游離嘌呤含量呈明顯的增加趨勢(shì)。其中,當(dāng)酶添加量由0U增加至0.7U時(shí),總游離嘌呤含量增加了28.5±0.6%。其中,麥汁中FG、FH、FX含量分別增加了59.8±0.1%、117.9±2.6%和增加了33.7±0.2%,但FA含量降低了12.0±0.2%。說(shuō)明PNP在本實(shí)驗(yàn)條件下,水解腺苷糖苷鍵的反應(yīng)為逆向反應(yīng),即反應(yīng)向著游離嘌呤和核糖生成腺苷的方向進(jìn)行。
麥汁中的嘌呤未能完全游離出來(lái)。這是由于PNP催化反應(yīng)是可逆反應(yīng),本實(shí)驗(yàn)條件下已達(dá)到平衡狀態(tài)。另外,由于PNP是以核苷為底物,不能分解麥汁中核苷酸等含嘌呤的化合物,因此結(jié)束后仍存有少量的聚合態(tài)嘌呤。
上述結(jié)論表明,PNP酶能夠水解麥汁中核苷的糖苷鍵,使麥汁中游離嘌呤含量明顯增高。只是由于PNP反應(yīng)底物以及反應(yīng)自身特點(diǎn)的限制,若要提高PNP對(duì)麥汁核苷的水解效果,還需進(jìn)一步的研究。
2.2.2 嘌呤核苷磷酸化酶(PNP)催化反應(yīng)的反應(yīng)時(shí)間對(duì)麥汁中游離嘌呤含量的影響 不同反應(yīng)時(shí)間,麥汁中游離嘌呤含量及總嘌呤含量見(jiàn)圖5。
圖5 PNP反應(yīng)時(shí)間對(duì)4種嘌呤游離率的影響Fig.5 The effect of PNP reaction time on 4 kinds of purine dissociation rate
由圖5可以看出,反應(yīng)10min后麥汁中游離嘌呤含量基本不變。說(shuō)明PNP催化反應(yīng)十分迅速,反應(yīng)10min基本達(dá)到平衡。相對(duì)于麥汁制備過(guò)程所需時(shí)間(2~4h),PNP反應(yīng)快速,具有對(duì)工藝時(shí)間影響較小的優(yōu)勢(shì)。
研究結(jié)果表明,酵母只能夠吸收麥汁中游離形式的嘌呤,且隨著麥汁中嘌呤游離率的增加,酵母吸收的嘌呤含量也隨之增高。因此,通過(guò)酵母吸收的形式降低啤酒嘌呤,關(guān)鍵在于增加麥汁的嘌呤游離率。同時(shí)證實(shí),PNP對(duì)麥汁中的核苷確實(shí)有明顯的水解效果,能夠增加麥汁的嘌呤游離率;且PNP催化反應(yīng)時(shí)間較快,對(duì)麥汁的生產(chǎn)工藝影響較小。上述結(jié)論對(duì)于低嘌呤啤酒的生產(chǎn)具有一定指導(dǎo)意義及參考價(jià)值。同時(shí),PNP酶在本實(shí)驗(yàn)條件下對(duì)核苷的水解能力有限,還需進(jìn)一步提高PNP的水解能力。
[1]Moriwaki Y,Yamamoto T.Beer in health and disease[M].Elsevier Inc,2009:541-547.
[2]Yamamoto T,Moriwaki Y,Takahashi S,et al.Effect of beer on the plasma concentrations of uridine and purine bases[J].Metabolism,2002,51(10):1317-1323.
[3]楊子龍.一種低嘌呤啤酒及其制備方法:中國(guó),CN 101475888[P].2009-07-08.
[4]江南大學(xué).一種含低嘌呤類(lèi)物質(zhì)的啤酒的制造方法:中國(guó),CN 1743444A[P].2006-03-08.
[5]江蘇大富豪啤酒有限公司.一種低嘌呤啤酒的生產(chǎn)方法:中國(guó),CN 1563321A[P].2005-01-12.
[6]Shibata J,Murayama N,Takeyama M.Adsorption of purine compounds in beer with activated carbon prepared from beer lees[J].環(huán)境資源工學(xué),2009,56(3):120-126.
[7]吳斌.不同吸附劑對(duì)啤酒中嘌呤類(lèi)物質(zhì)吸附作用的研究[J].商品與質(zhì)量:理論研究,2012(3):7-8.
[8]李志良,張五九.高效液相色譜法測(cè)定麥汁,發(fā)酵液和啤酒中的嘌呤含量[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2006,32(3):73-75.
[9]Prentice N.Comparision of malts for nuclease and nucleobase potentials[J].J Am Soc Brew Chem,1981,41(4):130-140.
[10]賈鳳超.啤酒生產(chǎn)中的嘌呤類(lèi)物質(zhì)與低嘌呤啤酒的研究進(jìn)展[J].啤酒科技,2013,(1):24-27.
[11]Lee W J,Prentice N.Utilization of nucleosides and nucleobases by the lager yeast Saccharomyces carlsbergensis[J].J Am Soc Brew Chem,1987,45(4):128-131.
[12]Bradee L H.Some practical aspects of malting and mashing related to yeast nutrition and fermentation[J].Technical Quarterly Master Brewers Association of Americas,1970,7:37-42.
[13]商曰玲.啤酒釀造過(guò)程中嘌呤含量的變化研究[D].泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.
[14]G Harris,R Pasons.Nitrogenous constituents of brewing matieral IX.The purine of wort and their fate in brewing[J].Journal of the Institute of Brewing,1957,63(4).227-236.
[15]Shibano Y,Yomo H,Matsumoto T,et al.Process for producing beer:European Patent,EP 0753572[P].2002-9-4.
[16]Prasher D C,Carr M C,Ives D H,et al.Nucleoside phosphotransferase from barley.Characterization and evidence for ping pong kinetics involving phosphoryl enzyme[J].Journal of Biological Chemistry,1982,257(9):4931-4939.
[17]Lee W J,Pyler R E.Nucleic acid degrading enzymes of barley malt.II.Nucleosidases and nucleoside deaminases[J].J Am Soc Brew Chem,1985,43(1):6-10.
[18]Lee W J,Pyler R E,Oleson A E.Nucleic acid degrading enzymes of barley malt.III.Adenosine nucleosidase from malted barley[J].J Am Soc Brew Chem,1986,44(2):86-90.
[19]Hyun M H,Jung R Y,Hee S N,et al.5′-Phosphodiesterase activity from malt rootlets[J].Food Science and Biotechnology,2000,9(3):183-187.
[20]Prentice N.Characterization of a nuclease from malted barley roots[J].Journal of cereal science,1987,5(2):175-187.
[21]何義進(jìn),華洵璐,匡群,等.核酸水解酶及酶解法生產(chǎn)核苷酸研究進(jìn)展[J].遼寧大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2012,39(2):110-117.
[22] OgawaJ,TakedaS,XieS X,etal.Purification,characterization,and gene cloning of purine nucleosidase from Ochrobactrum anthropic[J].Applied and environmental microbiology,2001,67(4):1783-1787.
[23]Campos A,Rijo- Johansen M J,Carneiro M F,et al.Purification and characterisation of adenosine nucleosidase from Coffea Arabica young leaves[J].Phytochemistry,2005,66(2):147-151.
[24]Szuwart M,Starzyńska E,Pietrowska-Borek M,et al.Calcium-stimulated guanosine-inosine nucleosidase from yellow lupin(Lupinusluteus)[J].Phytochemistry,2006,67(14):1476-1485.
[25]鐘曉盈,陸幼蘭.利用 HPLC測(cè)定啤酒嘌呤含量方法的研究[J].啤酒科技,2007,3:23-26.
[26]Kaneko K,Yamanobe T,F(xiàn)ujimori S.Determination of purine contents of alcoholic beverages using high performance liquid chromatography[J].Biomedical Chromatography,2009,23(8):858-864.
[27]王海容,付大友.啤酒中嘌呤類(lèi)物質(zhì)測(cè)定方法的研究進(jìn)展[J].釀酒科技,2009(6):95-98.