曹冬青, 劉小妮, 徐海艷, 陶 然, 黃 鶯, 金惠銘, 王 睿, 盧 寧
(復旦大學基礎醫(yī)學院生理與病理生理學系,上海 200032)
硫化氫(hydrogen sulfide,H2S)作為一種新的氣體信號分子,對心血管系統(tǒng)有著重要的調(diào)節(jié)作用,參與了多種病理生理過程,如降低血壓、減慢心率、抑制血管平滑肌細胞增殖等。但其對高血壓的具體調(diào)節(jié)機制尚不明確。近年研究證實在高血壓和心衰的發(fā)病過程中,中樞活性氧(reactive oxygen species,ROS)介導了血管緊張素II(angiotensin II,Ang II)的心血管效應。中樞ROS水平升高會導致延髓頭端腹外側(cè)(rostral ventrolateral medulla,RVLM)等區(qū)神經(jīng)元放電頻率增加,最終引起交感興奮,血壓升高[1-3]。ROS是機體氧化應激的主要來源之一,而H2S能夠通過促進抗氧化物質(zhì)谷胱甘肽的生成,降低ROS水平,保護神經(jīng)元[4]。本課題組前期在整體實驗證實:H2S能降低自發(fā)性高血壓大鼠(spontaneously hypertensive rat,SHR)的ROS水平,繼而降低血壓,減慢心率[5]。同時我們在細胞水平上證實:外源性H2S可抑制Ang II引起的延髓神經(jīng)元ROS水平的升高[6]。在此基礎上,本工作旨在通過給予內(nèi)源性H2S生成酶胱硫醚β-合成酶(cystathionine β-synthetase,CBS)的激動劑——丁酸鈉(sodium butyrate,NaBu)[7],提高神經(jīng)元內(nèi)源性H2S水平,進一步觀察內(nèi)源性H2S對Ang II引起的ROS水平的影響并對可能的作用機制進行探討。
Ang II、二氫乙啶(dihydroethidium,DHE)和NaBu均購自Sigma;微管相關蛋白2(microtubule-associated protein 2, MAP-2)抗體(小鼠來源和兔來源)購自Abcam;小鼠來源CBS抗體購自Abnova;神經(jīng)元培養(yǎng)基、B27神經(jīng)細胞生長添加劑、胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、2.5% 胰蛋白酶和DMEM/F12培養(yǎng)基均購自Gibco;DAPI、FITC標記山羊抗兔IgG (H+L)、Cy3標記山羊抗小鼠IgG (H+L)、蛋白裂解液和超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活性檢測試劑盒購自碧云天;SYBR Green和逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購自Toyobo;GAPDH引物和CBS引物由上海桑尼生物科技有限公司合成;二氧化碳恒溫細胞培養(yǎng)箱(上海力申科學儀器有限公司),無菌超凈臺(上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠),激光共聚焦系統(tǒng)(Zeiss),酶標儀(Tecan)等。
2.1原代延髓神經(jīng)元的培養(yǎng) 孕14~16 d SD大鼠購于上海斯萊克實驗動物中心,取胎鼠,在解剖顯微鏡下取延髓組織,剪碎,0.125% 胰酶37 ℃ 消化12 min左右,10% FBS終止消化3次,吹打3次,上清移至新的離心管,1 000 r/min 離心8 min,棄上清,加入神經(jīng)元培養(yǎng)基與B27的混合培養(yǎng)液(比例為49∶1),重懸細胞。用0.4% 臺盼藍對神經(jīng)元進行計數(shù),稀釋到所需密度,接種到35 mm的培養(yǎng)皿或96孔板,1周換2次液,每次半量換液,培養(yǎng)7 d左右,待神經(jīng)元發(fā)育成熟,進行以下實驗。
2.2原代延髓神經(jīng)元的鑒定 將已培養(yǎng)7 d左右的延髓神經(jīng)元進行鑒定,具體步驟如下:(1)0.01 mol/L PBS 洗3次;(2)4%多聚甲醛固定細胞20 min;(3)0.01 mol/L PBS洗3次;(4)5% FBS 封閉30 min;(5)加Ⅰ抗MAP-2抗體(1∶400),37 ℃ 1 h,4 ℃ 過夜;(6)0.01 mol/L PBS洗3次;(7)加Ⅱ抗Cy3(1∶200),37 ℃ 避光1 h;(8)0.01 mol/L PBS洗3次;(9)DAPI染核5 min;(10)0.01 mol/L PBS洗3次;(11)激光共聚焦系統(tǒng)拍照(×200)鑒定。
本實驗采用DHE熒光探針法檢測延髓神經(jīng)元胞內(nèi)的ROS (主要為超氧陰離子)水平。神經(jīng)元給藥后,加DHE(5 μmol/L),37 ℃ 孵育30 min,酶標儀檢測熒光強度,激發(fā)波長515 nm,發(fā)射波長585 nm。
延髓神經(jīng)元預先給予Ang II(1 μmol/L)處理后,(1)用細胞裂解液裂解,細胞刮刀收集至1.5 mL離心管中,16 000×g離心10 min;(2)將上清移入新的離心管;(3)采用BCA法測蛋白濃度;(4)按試劑盒說明測定總SOD的活性。
將延髓神經(jīng)元培養(yǎng)至7 d左右進行以下實驗:(1)0.01 mol/L PBS 洗3次;(2)4% 多聚甲醛固定細胞20 min;(3)0.01 mol/L PBS洗3次;(4)5% FBS 封閉30 min;(5)加MAP-2抗體(1∶400)與CBS抗體(1∶400)的混合液,37 ℃ 1 h,4 ℃ 過夜;(6)0.01 mol/L PBS洗3次;(7)加抗FITC與抗Cy3混合液(均為1∶200),37 ℃ 避光1 h;(8)0.01 mol/L PBS洗3次;(9)DAPI染核5 min;(10)0.01 mol/L PBS洗3次;(11)激光共聚焦系統(tǒng)拍照(×200)鑒定。
采用real-time PCR觀察Ang II對CBS mRNA表達的影響。GAPDH上游引物 5’-TGACAACTTTGGCATCGTGG- 3’,下游引物5’ -TGCAGGGATGATGTTCTGGG-3’;CBS上游引物5’ -CCCATCCTTGCAAAGCTTGT-3’,下游引物 5’ -TTGGGGTATCAGGCGAGATC-3’。
采用SPSS 17.0 統(tǒng)計軟件分析。數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示,兩組間比較應用獨立樣本t檢驗,多組間比較應用單因素方差分析(One-way ANOVA),以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
MAP-2是神經(jīng)元的特異性標志物。由于本課題組原代培養(yǎng)延髓神經(jīng)元的方法較為成熟,所以本實驗僅對神經(jīng)元進行了標記,以觀察所培養(yǎng)細胞是否為神經(jīng)元。如圖1所示,左上紅色為MAP-2標記的神經(jīng)元,左下藍色為DAPI標記的細胞核,右圖為左側(cè)兩圖的疊加,可見原代培養(yǎng)的細胞90%以上為神經(jīng)元,可進行下一步實驗。
Figure 1. Confocal microscopic demonstration of medullary neurons.
為明確Ang II是否可升高延髓神經(jīng)元的ROS水平,我們給予Ang II(1 μmol/L),37 ℃孵育30 min后,DHE熒光法檢測延髓神經(jīng)元ROS水平。結(jié)果顯示,Ang II可顯著升高延髓神經(jīng)元的ROS水平,見圖2。
Figure 2. Ang II increased ROS level in medullary neurons. Bar graphs summarizing ROS level after treatment with or without Ang II (1 μmol/L) for 30 min. Con: control. Mean±SEM. n=6.**P<0.01 vs con.
3.1Ang II降低神經(jīng)元總SOD的活性 如圖3所示,Ang II顯著抑制神經(jīng)元總SOD的活性,提示Ang II可能通過抑制總SOD的活性,提高神經(jīng)元ROS水平。
Figure 3. Activity of total SOD was inhibited by Ang II in medullary neurons. Neurons were pretreated with vehicle or Ang II (1 μmol/L) for 30 min. Con: control. Mean±SEM. n=3.**P<0.01 vs Con.
3.2CBS在神經(jīng)元中的表達 如圖4所示,綠色為MAP-2標記的神經(jīng)元,紅色為CBS陽性的細胞,藍色為DAPI標記,疊加圖中黃色為MAP-2與CBS共表達的細胞。結(jié)果顯示,約90%原代培養(yǎng)神經(jīng)元胞體均呈現(xiàn)黃色,提示延髓神經(jīng)元是有CBS表達的,并主要表達在胞漿,為內(nèi)源性H2S的研究提供了結(jié)構基礎。
Figure 4. Expression of cystathionine β-synthase (CBS) in the rat medullary neurons.
3.3Ang II 抑制CBS mRNA的表達 如圖5所示,Ang II顯著抑制CBS mRNA的表達,提示Ang II可能通過抑制CBS的表達,阻斷內(nèi)源性H2S產(chǎn)生,升高神經(jīng)元的ROS水平。
Figure 5. Expression of CBS mRNA was inhibited by Ang II in medullary neurons. Neurons were pretreated with vehicle or Ang II (1 μmol/L) for 30 min.Con: control. Mean±SEM. n=3.*P<0.05 vs Con.
4.1單獨給予不同濃度NaBu對神經(jīng)元ROS水平的影響 延髓神經(jīng)元單獨給予NaBu (100 μmol/L、250 μmol/L和500 μmol/L),酶標儀檢測結(jié)果顯示,神經(jīng)元胞內(nèi)的ROS水平?jīng)]有明顯變化,見圖6A,提示NaBu對于延髓神經(jīng)元基礎ROS水平?jīng)]有顯著作用。
4.2NaBu抑制Ang II引起的神經(jīng)元ROS水平的變化 結(jié)果表明,100 μmol/L NaBu對Ang II引起的ROS水平?jīng)]有明顯作用,250 μmol/L及500 μmol/L NaBu 均可顯著抑制Ang II引起的神經(jīng)元ROS水平升高,并且500 μmol/L NaBu作用更明顯,見圖6B,提示NaBu抑制Ang II引起的神經(jīng)元ROS水平的升高存在劑量依賴性。
H2S作為第三類氣體信號分子,對心血管系統(tǒng)有著重要的調(diào)節(jié)作用。研究表明:側(cè)腦室注射低濃度的H2S可降低正常大鼠的血壓和心率,注射不同濃度的S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosine methionine,SAM,一種CBS激動劑)引起相同的效應并呈劑量依賴性;而高濃度的H2S則產(chǎn)生升壓效應[8-9]。本課題組研究顯示:向SHR大鼠RVLM區(qū)微量注射外源性H2S(供體NaHS)可降低血壓和心率;注射CBS激動劑SAM,升高內(nèi)源性H2S水平,引起相同的效應[5],且均引起ROS水平的降低。研究表明,中樞ROS介導了Ang II的心血管效應[2]?;A和臨床研究也證實:血壓升高常伴有氧化應激的增強[10]。
ROS是生物有氧代謝過程中的一種副產(chǎn)品,包括氧離子、過氧化物和含氧自由基等。過高的活性氧水平會對細胞和基因結(jié)構造成損壞。Ang II引起ROS升高的可能機制有哪些呢?中樞ROS的主要來源是NADPH氧化酶。文獻報道,Ang II與AT1受體結(jié)合,可激活相關信號通路提高NADPH氧化酶的活性,升高機體的ROS水平,繼而升高血壓[2, 11]。在兔的側(cè)腦室注射Ang II,可使RVLM區(qū)部分通過升高NADPH氧化酶亞單位p40phox、p47phox、p67phox和gp91phox高表達,活性氧水平升高[12]。前期工作表明,Ang II可提高延髓神經(jīng)元p47phoxmRNA和p67phoxmRNA的表達量[13]。因此本實驗神經(jīng)元給予Ang II,作為高ROS水平的細胞模型,以與整體實驗相呼應。我們首先證實了Ang II可升高延髓神經(jīng)元的ROS水平。
Figure 6. NaBu inhibited ROS level in medullary neurons induced by Ang II with a dose-dependent manner. A: medullary neurons were treated with various concentrations (100, 250 and 500 μmol/L) of NaBu alone for 30 min; B: neurons were treated with vehicle, Ang II, or various concentrations (100, 250 and 500 μmol/L) of NaBu 30 min before Ang II (1 μmol/L) was used. Mean±SEM. n=6.*P<0.05,**P<0.01 vs Con (0 μmol/L Ang II and 0 μmol/L NaBu).
機體內(nèi)ROS的動態(tài)平衡與SOD有著緊密的聯(lián)系。SOD具有特殊的生理活性,是生物體內(nèi)清除自由基的首要物質(zhì)。現(xiàn)已證實:SOD可對抗與阻斷因氧自由基對細胞造成的損害,并及時修復受損細胞,復原因自由基造成的細胞傷害。SHR大鼠RVLM區(qū)微量注射SOD可降低血壓[10]。因此,ROS的升高也可能與SOD有一定關系。本研究表明,Ang II降低了延髓神經(jīng)元總SOD的活性,至少部分引起了ROS的升高。
我們的整體實驗中,外源性H2S(NaHS)和內(nèi)源性H2S(SAM)可使SHR大鼠的ROS水平降低。前期細胞實驗證實,外源性H2S(NaHS)通過抑制絲裂原激活的蛋白激酶家族中磷酸化細胞外信號調(diào)節(jié)激酶1/2蛋白的表達量,抑制Ang II引起的ROS的升高[6]。那內(nèi)源性H2S是否能抑制Ang II引起的延髓神經(jīng)元ROS的升高呢?
內(nèi)源性H2S主要由2種酶催化生成:一種是磷酸吡多醛5-磷酸依賴性酶,包括CBS和胱硫醚γ-裂解酶(cystathionine γ-lyase, CSE)。CBS主要在海馬、小腦、腦干和皮層等部位,而CSE主要分布于神經(jīng)系統(tǒng)以外的組織。另一種是3-巰基丙酮酸硫轉(zhuǎn)移酶(3-mercaptopyruvate sulfurtransferase),主要分布于腎、心、肝和腦。本課題組和近期的形態(tài)學研究顯示,CBS在SD大鼠的RVLM、下丘腦室旁核等區(qū)有表達[14]?;几哐獕?周的Wistar 大鼠網(wǎng)狀核神經(jīng)元的CBS表達水平顯著降低[15]。RVLM區(qū)是心血管交感活動的基本中樞,是維持心血管中樞緊張性活動的關鍵部位。本課題組前期整體實驗證實,SHR大鼠RVLM區(qū)催化H2S生成的酶CBS的表達水平低于WKY大鼠[5]。本實驗結(jié)果顯示,CBS在延髓神經(jīng)元有表達,為我們對內(nèi)源性H2S的研究提供了結(jié)構基礎。
CBS是中樞H2S的主要來源,Ang II與CBS之間的作用鮮有報道。本研究發(fā)現(xiàn),Ang II可降低CBS mRNA的表達量,而它對于CBS蛋白水平的作用還有待進一步驗證。然后我們給予CBS激動劑NaBu,升高內(nèi)源性H2S,再給予Ang II觀察延髓神經(jīng)元ROS水平的變化。結(jié)果表明,內(nèi)源性H2S(NaBu)與外源性H2S(NaHS)有相同的效應,均可抑制Ang II引起的延髓神經(jīng)元ROS水平的升高。但其具體機制還需進一步探討。
[參 考 文 獻]
[1] Sun C, Sellers KW, Sumners C, et al. NAD(P)H oxidase inhibition attenuates neuronal chronotropic actions of angiotensin II[J]. Circ Res, 2005, 96(6): 659-666.
[2] Chan SH, Hsu KS, Huang CC, et al. NADPH oxidase-derived superoxide anion mediates angiotensin II-induced pressor effect via activation of p38 mitogen-activated protein kinase in the rostral ventrolateral medulla[J]. Circ Res, 2005, 97(8): 772-780.
[3] Gao L, Li Y, Schultz HD, et al. Downregulated Kv4.3 expression in the RVLM as a potential mechanism for sympathoexcitation in rats with chronic heart failure[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2010, 298(3): H945-H955.
[4] Tay AS, Hu LF, Lu M, et al. Hydrogen sulfide protects neurons against hypoxic injury via stimulation of ATP-sensitive potassium channel/protein kinase C/extracellular signal-regulated kinase/heat shock protein 90 pathway[J]. Neuroscience, 2010, 167(2): 277-286.
[5] 于海云, 馬 紅, 曹銀祥,等. 硫化氫對SHR大鼠的中樞心血管效應及其機制探討[J], 中國分子心臟病學雜志, 2011, 11(4): 235-240.
[6] 馬 紅, 于海云, 于 燕,等. H2S抑制AngⅡ引起的神經(jīng)元活性氧水平升高的機制研究[J]. 中國病理生理雜志, 2012, 28(5): 865-869.
[7] Cao Q, Zhang L, Yang G, et al. Butyrate-stimulated H2S production in colon cancer cells[J]. Antioxid Redox Signal, 2010, 12(9): 1101-1109.
[8] Dawe GS, Han SP, Bian JS, et al. Hydrogen sulphide in the hypothalamus causes an ATP-sensitive K+channel-dependent decrease in blood pressure in freely moving rats[J]. Neuroscience, 2008, 152(1): 169-177.
[9] Ufnal M, Sikora M, Dudek M. Exogenous hydrogen sulfide produces hemodynamic effects by triggering central neuroregulatory mechanisms[J]. Acta Neurobiol Exp (Wars), 2008, 68(3): 382-388.
[10] Keith M, Geranmayegan A, Sole MJ, et al. Increased oxidative stress in patients with congestive heart failure[J]. J Am Coll Cardiol, 1988, 31(6): 1352-1356.
[11] Hirooka Y, Sagara Y, Kishi T, et al. Oxidative stress and central cardiovascular regulation: pathogenesis of hypertension and therapeutic aspects[J]. Circ J, 2010, 74(5): 827-835.
[12] Gao L,Wang W, Li YL, et al. Sympathoexcitation by central Ang II: roles for AT1 receptor upregulation and NAD(P)H oxidase in RVLM[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2005, 288(5): H2271-H2279.
[13] 馬 紅. H2S抑制Ang II引起的延髓神經(jīng)元活性氧水平升高的機制研究[D]. 上海:復旦大學, 2012.
[14] Guo Q, Jin S, Wang XL, et al. Hydrogen sulfide in the rostral ventrolateral medulla inhibits sympathetic vasomotor tone through ATP-sensitive K+channels[J]. J Pharmacol Exp Ther, 2011, 338(2): 458-465.
[15] Chertok VM, Kotsiuba AE. Immunocytochemical characterization H2S-positive neurons in the nuclei of bulbar cardiovascular center in the development of renovascular hypertension[J]. Vestn Ross Akad Med Nauk, 2012, (4): 50-54.