榮 輝,林祥志,王龍梅,蘇永全
(1. 廈門(mén)大學(xué) 海洋與地球?qū)W院,福建 廈門(mén) 361005; 2. 國(guó)家海洋局第三海洋研究所,福建 廈門(mén) 361005)
二十碳五烯酸(eicxcosapentanoic acid,EPA) 屬于ω-3系列多不飽合脂肪酸,它是大腦和視神經(jīng)細(xì)胞的重要組成部分,由于極易被氧化形成保護(hù)膜,可以延緩腦、眼神經(jīng)細(xì)胞的衰老[1].EPA在人體內(nèi)可轉(zhuǎn)化為前列腺素E3和前列環(huán)素,具有抑制血小板聚集、擴(kuò)張血管、加強(qiáng)微循環(huán)作用,因此它對(duì)心血管疾病的治療與預(yù)防也具有重大意義[2-3].許多微藻都有較高的EPA 含量[3],如硅藻(Nitzschialaevis)[4]、微小小球藻(Chlorellaminutissima)[5]、紫球藻(Porphyridiumcruentum)[6]、三角褐指藻(Phaeodactylumtricomutum)[7]、球等鞭金藻(Isochrysisgalbana)[8]、眼點(diǎn)擬微綠球藻(Nannochloropsisoculata)[9]和單胞藻 (Monodussubterraneus)[10]等都被認(rèn)為是商業(yè)化生產(chǎn)EPA的潛在重要資源.
高速逆流色譜(high-speed countercurrent chromatography,HSCCC)是由美國(guó)國(guó)立衛(wèi)生研究院的Ito博士于20世紀(jì)80年代發(fā)明的一種基于液液分配機(jī)理的新型色譜分離純化技術(shù),它的固定相和流動(dòng)相都是液體,沒(méi)有不可逆吸附,具有樣品無(wú)損失、無(wú)污染、高效、快速和大制備量分離等優(yōu)點(diǎn)[11].本研究主要是利用高速逆流色譜技術(shù)分離純化微小小球藻中的EPA,為其進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用提供技術(shù)支持.
微小小球藻:購(gòu)自美國(guó)德克薩斯州立大學(xué)藻種庫(kù),編號(hào)為UTEX 2341.
正庚烷、乙腈、乙酸、甲醇、乙醚、硫酸等均為分析純,EPA標(biāo)準(zhǔn)品為色譜純(Sigma),液相色譜檢測(cè)用試劑均為色譜純.
高速逆流色譜儀(上海同田生物技術(shù)有限公司,TBE-300B);蒸發(fā)光散射檢測(cè)器(上海通微分析技術(shù)有限公司,ELSD-UM5000);高效液相色譜儀(日本島津制作所,LC-20A);脂肪測(cè)定儀(上海新家儀器有限公司,SZF-06A);發(fā)酵罐(匯和堂生物工程設(shè)計(jì)(上海)有限公司,SY-3000E).
培養(yǎng)基(1 L):改良的UTEX Bristol Medium (含葡糖糖10 g/L).
發(fā)酵培養(yǎng)條件:溫度28 ℃,轉(zhuǎn)速250 r/min,培養(yǎng)時(shí)間96 h,pH值6.8.
將發(fā)酵液在離心力18 000 g,溫度4 ℃下離心15 min,收集沉淀,再經(jīng)真空低溫冷凍干燥得到微小小球藻藻粉.
采用傳統(tǒng)的氯仿-甲醇法[12]從5.0 g微小小球藻藻粉中提取油脂.
稱(chēng)量500 mg微藻油,加入25 mL濃度為0.5 mol/L 的氫氧化鉀溶液在70 ℃水浴下處理1.5 h后,再用硫酸水溶液(體積分?jǐn)?shù)為20%)調(diào)pH值至3,得到酸性混合液;然后用等體積的乙醚萃取酸性混合液3次,收集乙醚相,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去乙醚,用100 mL溶劑體系為正庚烷-乙腈-乙酸-甲醇的下相溶解,得到皂化處理后溶液.
根據(jù)EPA在不同兩相溶劑體系的分配系數(shù)K值來(lái)選擇合適的溶劑體系,K值為EPA在溶劑體系上相與下相峰面積的比值.待測(cè)溶劑體系為不同體積比(5∶3∶5∶1,5∶4∶5∶1,5∶4∶3∶1,5∶4∶1∶1,5∶5∶1∶1)下的乙腈-正庚烷-乙酸-甲醇溶液.
將皂化處理后溶液進(jìn)行HSCCC分離,所用溶劑體系為乙腈-正庚烷-乙酸-甲醇,下相為流動(dòng)相,上相為固定相,在一定的轉(zhuǎn)速,溶劑流速、溫度下進(jìn)行分離,進(jìn)樣量為20 mL,檢測(cè)器為蒸發(fā)光散射檢測(cè)器:漂移管溫度70 ℃,氣體流量為2.5 L/min.
根據(jù)Box-Benhnken 的中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,采用響應(yīng)面法在三因子三水平上對(duì)微小小球藻油脂中EPA的高速逆流色譜提取條件進(jìn)行優(yōu)化.實(shí)驗(yàn)因子和水平如表1.共進(jìn)行17 組實(shí)驗(yàn),以EPA的純度Y為響應(yīng)值,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)利用軟件Design-Expert 8.0.6.1進(jìn)行分析.
表1 實(shí)驗(yàn)因子和水平
分離獲得的EPA樣品用甲醇溶解后進(jìn)行HPLC分析,色譜柱為inertsil ODS-3(5 μm×50 mm×4.6 mm),柱溫35 ℃,流動(dòng)相為甲醇:2%的乙酸水溶液(95∶5,V/V),流速為1 mL/min,進(jìn)樣量為10 μL.檢測(cè)器為蒸發(fā)光散射檢測(cè)器:漂移管溫度70 ℃,氣體流量為2.5 L/min.
通過(guò)發(fā)酵罐對(duì)微小小球藻進(jìn)行高密度異養(yǎng)發(fā)酵培養(yǎng)96 h后,發(fā)酵液經(jīng)離心濃縮后收集藻細(xì)胞,再經(jīng)真空冷凍干燥后稱(chēng)重,生物量達(dá)到10 g/L(以細(xì)胞干重計(jì)).5.0 g藻粉經(jīng)氯仿-甲醇法粗提獲得0.5 g的粗油脂,含油率為10%.
由于EPA是親脂性的,根據(jù)曹學(xué)麗的相關(guān)報(bào)道[13],選取乙腈-正庚烷-乙酸-甲醇為兩相溶劑體系,EPA在其不同體積比下的K值經(jīng)檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)表2.根據(jù)報(bào)道,適合逆流色譜分離的K值范圍為0.5-2.0[14],當(dāng)乙腈-正庚烷-乙酸-甲醇在體積比為5∶4∶1∶1時(shí),其K值為0.55,因此選擇其為合適的溶劑體系進(jìn)行接下來(lái)的實(shí)驗(yàn).
表2 EPA在不同體積比溶劑體系下的K值
根據(jù)Box-Benhnken中心實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),共進(jìn)行17 組實(shí)驗(yàn),其中12 組為分析因子,5 組為零點(diǎn),實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表3.利用Design-Expert軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行回歸分析,得到二次多元回歸模型,通過(guò)最小二乘法擬合二次多元方程為:
Y= -514.73-0.26X1+ 112.89X2+0.97X3-0.03X12-22.71X22-6.28 × 10-4X32- 0.31X1X2+ 2.87 × 10-3X1X3+ 0.04X2X3.
表3 Box-Behnken 中心實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果
表4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果ANOVA分析及模型的方差分析表
一般來(lái)說(shuō)HSCCC轉(zhuǎn)速越高,流動(dòng)相流速越低,分離溫度越高,固定相的保留率越高,分離效果就越好,但是高轉(zhuǎn)速對(duì)儀器產(chǎn)生較大的磨損、耗能多,低流速雖然可以滿(mǎn)足高固定相保留率的要求,但是洗脫時(shí)間太長(zhǎng),且耗費(fèi)大量的流動(dòng)相,而溫度太高則會(huì)造成溶液的黏度降低進(jìn)而影響分離效果[14].
由圖1可看出:EPA純度響應(yīng)面和等高線分析情況.圖1(a)顯示在HSCCC轉(zhuǎn)速固定為900 r/min時(shí),流動(dòng)相流速和分離溫度對(duì)EPA純度影響的交互作用,隨著流動(dòng)相流速和分離溫度的增加,EPA純度先增加后降低.圖1(b)顯示在流動(dòng)相流速固定為3.0 mL/min時(shí),HSCCC轉(zhuǎn)速和分離溫度對(duì)EPA純度影響的交互作用,隨著HSCCC轉(zhuǎn)速和分離溫度的增加,EPA純度先增加后降低.圖1(c)顯示在分離溫度固定為25 ℃時(shí),HSCCC轉(zhuǎn)速和流動(dòng)相流速對(duì)EPA純度影響的交互作用,隨著HSCCC轉(zhuǎn)速和流動(dòng)相流速的增加,EPA純度先增加后降低.
(a) 流動(dòng)相流速和溫度對(duì)EPA純度影響的交互作用;(b) HSCCC轉(zhuǎn)速和分離溫度對(duì)EPA純度交互作用;(c) HSCCC轉(zhuǎn)速和流動(dòng)相流速對(duì)EPA純度影響的交互作用
最終根據(jù)模型分析,HSCCC分離純化EPA的優(yōu)化條件為:轉(zhuǎn)速912.78 r/min,溶劑流速3.12 mL/min,溫度20.93 ℃,在此條件下EPA純度Y預(yù)測(cè)值為99.40%.
將皂化處理后微小小球藻油脂樣品在優(yōu)化條件下進(jìn)行HSCCC分離,實(shí)際實(shí)驗(yàn)采用:轉(zhuǎn)速913 r/min,溶劑流速3.0 mL/min,溫度21 ℃.HSCCC分離色譜圖如圖2所示,通過(guò)與標(biāo)準(zhǔn)品比對(duì),EPA的出峰時(shí)間約為24 min,收集EPA組分,旋蒸除去有機(jī)溶劑,待進(jìn)行HPLC檢測(cè)分析.由于皂化過(guò)程中大多脂肪酸以外的油脂組分被除去,最終500 mg微小小球藻粗油脂中分離純化得到75 mg EPA.
t/min
將分離獲得的EPA樣品用甲醇溶解后進(jìn)行HPLC分析,結(jié)果如圖3所示,利用面積歸一法計(jì)算EPA純度高達(dá)99.44%.
t/min
本研究選取了微小小球藻作為EPA的生產(chǎn)來(lái)源,據(jù)報(bào)道其細(xì)胞脂肪酸組成簡(jiǎn)單,EPA占總脂肪酸含量可高達(dá)44.7%[5],本研究通過(guò)HSCCC分離純化獲得的EPA僅占所提油脂含量的15%,主要是因?yàn)橛椭谠砘^(guò)程中除去了其它脂類(lèi),剩下的脂肪酸的含量變少.
隨著對(duì)海洋生物脂肪酸研究的深入以及各種層析、色譜技術(shù)的出現(xiàn),人們研究了眾多從生物體中提取多不飽和脂肪酸的方法,主要有:溶劑萃取法、低溫結(jié)晶法、尿素包合法、吸附分離法、分子蒸餾法、脂肪酶濃縮法、超臨界CO2提取法、高效液相色譜法、金屬鹽形成法等[15].HSCCC與傳統(tǒng)的分離純化方法相比具有明顯的優(yōu)點(diǎn),但凡可以形成萃取分離體系的對(duì)象原則上都可以用逆流色譜進(jìn)行分離.本研究將高速逆流色譜技術(shù)引用到微小小球藻油脂中EPA的制備分離上,而利用高速逆流色譜技術(shù)分離化合物成功的關(guān)鍵在于兩相溶劑體系的選擇.因?yàn)镋PA是親脂類(lèi)的多不飽和脂肪酸,本研究選用的溶劑體系為正庚烷-乙腈-乙酸-甲醇,并且比較了EPA在不同體積比下的K值,最終確定合適的溶劑體系為乙腈-正庚烷-乙酸-甲醇(體積比為5∶4∶1∶1),并利用響應(yīng)面分析法優(yōu)化了HSCCC分離純化EPA的條件,在此優(yōu)化條件下分離獲得的EPA純度達(dá)到99.44%.
由于EPA無(wú)紫外吸收,而氣相色譜檢測(cè)需要甲酯化處理,且無(wú)法和高速逆流色譜儀的直接連接實(shí)現(xiàn)在線分析,因此本研究使用了蒸發(fā)光散射檢測(cè)器對(duì)EPA進(jìn)行檢測(cè)分析,它不僅可以直接和高速逆流色譜儀在線連接,且可以對(duì)分離的樣品通過(guò)分流閥直接進(jìn)入蒸發(fā)光散射檢測(cè)器進(jìn)行在線檢測(cè),無(wú)需衍生.蒸發(fā)光散射檢測(cè)器還可以直接和液相色譜相連,對(duì)接收到的經(jīng)高速逆流色譜分離的EPA組分進(jìn)行液相色譜純度分析.
本研究首次將高速逆流色譜技術(shù)應(yīng)用到微小小球藻油脂中EPA的分離純化上,經(jīng)篩選合適的兩相溶劑體系為乙腈-正庚烷-乙酸-甲醇(體積比為5∶4∶1∶1).并利用響應(yīng)面分析法對(duì)高速逆流色譜實(shí)驗(yàn)中的關(guān)鍵參數(shù)進(jìn)行了優(yōu)化設(shè)計(jì),得到的最佳條件為:流速3.0 mL/min,轉(zhuǎn)速913 r/min,分離溫度21 ℃,在此條件下,500 mg微小小球藻粗油脂中分離純化到純度為99.44%的75 mg EPA.本研究說(shuō)明游離多不飽和脂肪酸可以通過(guò)高速逆流色譜技術(shù)得到較好的分離純化,為其進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用提供技術(shù)支持.
[1] TAPIERO H, NGUYEN G B, COUVREUR P,etal. Polyunsaturated fatty acids ( PUFA ) and eicosanoids in human health and pathologies[J]. Biomed Pharmacother, 2002 (56) : 215-222.
[2] QI K, FAN C, JIANG J,etal. Omega-3 fatty acid containing diets decrease plasma triglyceride concentrations in mice by reducing endogenous triglyceride synthesis and enhancing the blood clearance of triglyceride-rich particles[J]. Clinical Nutrition, 2008, 27 (3) : 424-430.
[3] 孫曉艷, 林艷麗, 熊福銀, 等. 二十碳五烯酸和二十二碳六烯酸的生物合成途徑研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通訊, 2012, 23 (5) : 755-758.
SUN Xiao-yan, LIN Yan-li, XIONG Fu-yin,etal. Progresses on biosynthesis of eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid[J]. Letters in Biotechnology, 2012, 23 (5) : 755-758. (In Chinese)
[4] 趙玉華, 韓朝龍, 王曉崢, 等. 硅藻發(fā)酵生產(chǎn)二十碳五烯酸基礎(chǔ)培養(yǎng)基的選擇研究[J]. 中國(guó)生物工程雜志, 2009, 29 (12) : 69-73.
ZHAO Yu-hua, HAN Chao-long, WANG Xiao-zheng,etal. Studies on selecting of different mediums for EPA production by diatomNitzschialaevis[J]. China Biotechnology, 2009, 29 (12) : 69-73. (In Chinese)
[5] SETO A, WANG H L, HESSELTINE C W. Culture conditions affect eicosapentaenoic acid content ofChlorellaminutissima[J]. Journal of the American Oil Chemists' Society, 1984, 61 (5) :892-894.
[6] 趙薇, 吳義誠(chéng), 江賢章, 等.提取及培養(yǎng)條件對(duì)紫球藻AA與EPA的影響[J].食品工業(yè)科技, 2009, 30 (3) :168-171.
ZHAO Wei, WU Yi-cheng, JIANG Xian-zhang,etal. Effect of different fatty acid extraction methods and growth condition on Porphyridium cruentum AA and EPA contents[J]. Science and Technology of Food Industry, 2009, 30 (3) :168-171. (In Chinese)
[7] 王溢, 符茹, 裴國(guó)鳳, 等. 不同氮源對(duì)三角褐指藻生長(zhǎng)和脂類(lèi)含量的影響[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 51 (23) : 5311-5314.
WANG Yi, FU Ru, PEI Guo-feng,etal. Effects of nitrogen sources on the growth and lipid content ofPhaeodactylumtricornutum[J]. Hubei Agricultural Sciences, 2012, 51 (23) : 5311-5314. (In Chinese)
[8] MOLINA G E, GARC A, CAMACHO F,etal. Outdoor chemostat culture ofPhaeodactylumtricornutumUTEX640 in a tubular photobioreactor for the production of eicosapentaenoic acid[J].Biotechnology and Applied Biochemistry, 1994, (20) : 279-290.
[9] 竇曉, 陸向紅, 盧美貞, 等. 碳源種類(lèi)及碳氮比對(duì)眼點(diǎn)擬微綠球藻生長(zhǎng)密度、油脂含量和脂肪酸組成的影響[J]. 生物工程學(xué)報(bào), 2013, 29 (3): 358-369.
DOU Xiao, LU Xiang-hong, LU Mei-zhen,etal. Effects of carbon source and concentration on the growth density, lipid accumulation and fatty acid composition ofNannochloropisoculata[J]. Chinese Journal of Biotechnology, 2013, 29 (3): 358-369. (In Chinese)
[10]HU Q, HU Z, COHEN Z,etal. Enhancement of eicosapentaenoic acid ( EPA ) and S-linolenic acid ( GLA ) production by manipulating algal density of outdoor cultures of monodus subterraneus ( Eustigmatophyta ) and Spirulina platensis (Cyanobacteria) [J]. Journal of Phycology, 1997, (32) : 81-86.
[11]ITO Y. High-speed countercurrent chromatography[J]. CRC Crit Rev Anal Chem, 1986, 17: 65-143.
[12]BLIGH E G, DYER W J. A rapid method of total lipid extraction and purification [J]. Canadian Journal of Biochemistry,1959, 37: 911-917.
[13]CAO X L, ITO Y. Supercritical fluid extraction of grape seed oil and subsequent separation of free fatty acids by high-speed counter-current chromatography[J]. Journal of Chromatography A, 2003, 1021: 117-124.
[14]CUI H Y, JIA X Y, ZHANG X,etal. Optimization of high-speed counter-current chromatography for separation of polyphenols from the extract of hawthorn (Crataeguslaevigata) with response surface methodology[J]. Separation and Purification Technology, 2011, 77: 269-274.
[15]李妍, 王靜, 李麒龍, 等. EPA與DHA最新研究進(jìn)展[J]. 農(nóng)產(chǎn)品加工(學(xué)刊), 2013, (2) : 6-13.
LI Yan, WANG Jing, LI Qi-long,etal. The reeent advances in the studies on EPA and DHA[J]. Academic Periodical of Farm Products Processing, 2013, (2) : 6-13. (In Chinese)