張董燕 季海峰 王四新 王 晶 劉 輝 王雅民
(北京市農(nóng)林科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所,北京 100097)
對(duì)于生長(zhǎng)豬,其飼養(yǎng)目標(biāo)是保證較高的生長(zhǎng)速度及飼料轉(zhuǎn)化效率,以獲得最佳的經(jīng)濟(jì)效益。一直以來(lái),養(yǎng)殖者們往往選用抗生素作為生長(zhǎng)促進(jìn)劑用于養(yǎng)豬生產(chǎn)中,但長(zhǎng)期大量使用會(huì)導(dǎo)致其在豬體組織及器官內(nèi)蓄積,造成豬肉產(chǎn)品的藥物殘留,或者代謝不完全經(jīng)糞便排出體外使得養(yǎng)殖環(huán)境趨于惡化。因此,減少或替代抗生素在養(yǎng)豬生產(chǎn)中的使用直接關(guān)系到畜產(chǎn)品及人類生活的安全。研究認(rèn)為,乳酸菌是人和動(dòng)物胃腸道的正常菌群,該類菌群能夠調(diào)節(jié)機(jī)體胃腸道菌群平衡,促進(jìn)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)吸收,抑制腸道內(nèi)病原菌的生長(zhǎng)和繁殖,從而對(duì)機(jī)體起到益生作用[1-2]。Timmerman等[3]指出,同源性乳酸菌對(duì)宿主的益生作用優(yōu)于異源性菌群,即理想的菌株應(yīng)該來(lái)自同種動(dòng)物的消化道。同時(shí),同源乳酸菌作為益生菌株還應(yīng)具有較高的定植黏附能力,以及耐酸、耐膽汁鹽及抑菌等優(yōu)良性能[4]。因此,菌種是影響飼用乳酸菌發(fā)揮益生作用的關(guān)鍵。本實(shí)驗(yàn)室從生長(zhǎng)育肥豬糞便中分離篩選得到1株乳酸菌,經(jīng)鑒定為唾液乳桿菌(L.salivarius),本試驗(yàn)擬將該菌株應(yīng)用于生長(zhǎng)豬飼糧中,通過(guò)體內(nèi)試驗(yàn)研究該菌株對(duì)生長(zhǎng)豬生長(zhǎng)性能、糞中微生物數(shù)量及血清指標(biāo)的影響,從而為該菌株在生長(zhǎng)豬養(yǎng)殖中的應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。
1.1.1 菌種
試驗(yàn)用豬源L.salivarius分離自60 kg生長(zhǎng)育肥豬糞便,經(jīng)中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心鑒定為L(zhǎng).salivarius,其凍干制劑中活菌數(shù)≥3.5×109CFU/g,由北京市農(nóng)林科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)研究室保存。
試驗(yàn)動(dòng)物選用長(zhǎng)×大二元雜交生長(zhǎng)豬,基礎(chǔ)飼糧參照我國(guó)《豬飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)》(NY/T 65—2004)配制,其組成及營(yíng)養(yǎng)水平見(jiàn)表1。
表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營(yíng)養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet(air-dry basis) %
選用81頭平均體重為(35.22±0.86)kg的長(zhǎng)×大二元雜交生長(zhǎng)豬,隨機(jī)分成3組,每組設(shè)3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)9頭。對(duì)照組飼喂基礎(chǔ)飼糧,試驗(yàn)組分別飼喂在基礎(chǔ)飼糧中添加0.2%、0.4%(每克飼糧活菌數(shù)分別為7.0×106和1.4×107CFU)的L.salivarius凍干制劑的試驗(yàn)飼糧。試驗(yàn)期為30 d。試驗(yàn)在封閉式豬舍內(nèi)進(jìn)行,水泥地面圈養(yǎng),自由采食,以鴨嘴式飲水器提供充足清潔飲水,免疫、驅(qū)蟲(chóng)和消毒按豬場(chǎng)常規(guī)飼養(yǎng)管理規(guī)程進(jìn)行。
1.4.1 生長(zhǎng)性能測(cè)定
正式試驗(yàn)開(kāi)始和結(jié)束時(shí),個(gè)體空腹稱重,統(tǒng)計(jì)耗料量,計(jì)算平均日增重、平均日采食量和料重比。
1.4.2 糞中微生物數(shù)量測(cè)定
試驗(yàn)結(jié)束當(dāng)天,每個(gè)重復(fù)隨機(jī)選取6頭生長(zhǎng)豬進(jìn)行新鮮糞樣采集,盛于無(wú)菌鋁盒中,立即放入-20℃冰箱保存待測(cè)。實(shí)驗(yàn)室常規(guī)方法檢測(cè)糞中大腸桿菌和乳酸菌數(shù)量,以lg(CFU/g)表示。
1.4.3 血清指標(biāo)測(cè)定
試驗(yàn)結(jié)束時(shí),每組隨機(jī)挑選6頭生長(zhǎng)豬(每個(gè)重復(fù)2頭),前腔靜脈采血5 mL,分離血清后于-20℃冰箱保存?zhèn)溆?。血清總膽固?TCHO)、甘油三酯(TG)含量以及谷丙轉(zhuǎn)氨酶(ALT)、谷草轉(zhuǎn)氨酶(AST)活性在HITACHI 7020自動(dòng)生化分析儀上測(cè)定,試劑盒均購(gòu)于中生北控生物科技股份有限公司;血清結(jié)合珠蛋白(Hp)含量采用豬結(jié)合珠蛋白酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)試劑盒(美國(guó)Immunology Consunltants公司生產(chǎn))測(cè)定。
結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件中的one-way ANOVA進(jìn)行單因素方差分析,Duncan氏法進(jìn)行多重比較,以P<0.05作為差異顯著性判斷標(biāo)準(zhǔn)。
由表2可知,飼糧中添加0.2%、0.4%的豬源L.salivarius后生長(zhǎng)豬的平均日增重均有升高趨勢(shì),但差異不顯著(P>0.05);與對(duì)照組相比,2個(gè)試驗(yàn)組生長(zhǎng)豬的平均日采食量和料重比無(wú)顯著變化(P>0.05)。
表2 豬源L.salivarius對(duì)生長(zhǎng)豬生長(zhǎng)性能的影響Table 2 Effects of L.salivarius from pigs on growth performance of growing pigs
由表3可知,飼糧中添加0.2%和0.4%的豬源L.salivarius后均能夠顯著增加生長(zhǎng)豬糞中乳酸菌數(shù)量(P<0.05),并顯著降低大腸桿菌數(shù)量(P<0.05)。此外,飼糧中添加0.2%和0.4%的豬源L.salivarius后還能夠顯著提高乳酸菌與大腸桿菌的比值(P<0.05)。上述指標(biāo)2個(gè)試驗(yàn)組間均無(wú)顯著差異(P>0.05)。
表3 豬源L.salivarius對(duì)生長(zhǎng)豬糞中微生物數(shù)量的影響Table 3 Effects of L.salivarius from pigs on the number of faecal microflora of growing pigs lg(CFU/g)
2.3.1 血清生化指標(biāo)
由表4可知,飼糧添加0.2%和0.4%的豬源L.salivarius后生長(zhǎng)豬血清總膽固醇含量及谷草轉(zhuǎn)氨酶、谷丙轉(zhuǎn)氨酶活性顯著降低(P<0.05),而血清甘油三酯含量雖有下降趨勢(shì),但差異不顯著(P>0.05)。
表4 豬源L.salivarius對(duì)生長(zhǎng)豬血清生化指標(biāo)的影響Table 4 Effects of L.salivarius from pigs on serum biochemical indices of growing pigs
2.3.2 血清結(jié)合珠蛋白含量
由表5可知,飼糧中添加0.2%和0.4%的豬源L.salivarius后生長(zhǎng)豬血清結(jié)合珠蛋白含量分別比對(duì)照組降低了20.18%、27.53%,均差異顯著(P<0.05),2個(gè)試驗(yàn)組間差異不顯著(P>0.05)。
表5 豬源L.salivarius對(duì)生長(zhǎng)豬血清結(jié)合珠蛋白含量的影響Table 5 Effects of L.salivarius from pigs on serum Hp content of growing pigs mg/mL
動(dòng)物消化道內(nèi)存在大量的有益微生物,這些微生物對(duì)宿主的營(yíng)養(yǎng)吸收起著重要的作用。Zoetendal等[5]指出,許多在動(dòng)物生長(zhǎng)方面具有促進(jìn)作用的試驗(yàn)研究大都是通過(guò)調(diào)控消化道微生物的途徑來(lái)實(shí)現(xiàn)的。Davis等[6]認(rèn)為,在飼糧中添加可直接飼喂的微生物(direct-fed microbials,DFM),如乳酸菌,能夠直接改變動(dòng)物消化道的菌群組成。乳酸菌能夠通過(guò)產(chǎn)酸降低腸道pH,促進(jìn)蛋白酶等消化酶的分泌,從而有益于機(jī)體對(duì)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收,進(jìn)而促進(jìn)機(jī)體生長(zhǎng)[7-8]。Pluske[9]、Estienne等[10]均認(rèn)為,斷奶后2周是仔豬斷奶應(yīng)激適應(yīng)階段,是腸道菌群逐漸恢復(fù)完善的過(guò)程,此時(shí)使用乳酸菌效果最好,隨著消化道微生態(tài)環(huán)境的相對(duì)穩(wěn)定,斷奶后3~5周其益生效果則沒(méi)有剛斷奶時(shí)明顯[11]。當(dāng)豬群到達(dá)生長(zhǎng)階段后,機(jī)體消化系統(tǒng)較為完善,免疫力及對(duì)外界環(huán)境的抵抗能力均相對(duì)較強(qiáng),益生菌的平均日增重提高效果雖要差于日齡較小的豬體,但其益生效果會(huì)在提高飼料轉(zhuǎn)化率和機(jī)體免疫力等方面表現(xiàn)出來(lái)[12]。另外,添加劑量是影響乳酸菌發(fā)揮益生作用的主要因素之一。Lee等[13]推薦動(dòng)物飼糧中乳酸菌的最低添加劑量為106CFU/g,大部分飼養(yǎng)試驗(yàn)是保證每只豬每天吃到109~1010CFU乳酸菌,即每克飼糧中應(yīng)添加106~107CFU活菌。除此之外,乳酸菌益生作用的發(fā)揮還要受到豬種、飼養(yǎng)環(huán)境、飼養(yǎng)密度及飼喂方式等諸多方面的影響。在本試驗(yàn)過(guò)程中,試驗(yàn)組分別添加0.2%、0.4%的豬源L.salivarius(每克飼糧中活菌數(shù)分別為7×106、1.4×107CFU),隨著添加量的增加,生長(zhǎng)豬的平均日增重均有升高趨勢(shì)。為了進(jìn)一步驗(yàn)證該菌株的應(yīng)用潛力,下文對(duì)該菌株在豬群糞中微生物數(shù)量、血清指標(biāo)等方面進(jìn)行探討分析。
大腸桿菌感染是引起豬群腹瀉的主要原因之一。乳酸菌和大腸桿菌被認(rèn)為是指示腸道健康的主要菌群[14],消化道中乳酸菌與大腸桿菌的比值可作為檢測(cè)腸道菌群平衡的指示指標(biāo)[15],乳酸菌數(shù)量高于大腸桿菌數(shù)量能夠促進(jìn)有益菌對(duì)腸道病原菌抑制作用的發(fā)揮[16]。侯璐[17]和 Mallo 等[18]對(duì)斷奶仔豬進(jìn)行的研究以及侯成立[19]對(duì)母豬進(jìn)行的研究均指出飼糧中添加乳酸菌能夠顯著增加回腸、盲腸及糞便中乳酸菌數(shù)量,降低其中大腸桿菌數(shù)量。Giang等[11]指出,乳酸菌能夠抑制病原菌生長(zhǎng)的主要原因是由于其能夠產(chǎn)生有機(jī)酸,使回腸、結(jié)腸中乳酸、乙酸含量升高,降低腸道pH,而大腸桿菌在pH低于5.5時(shí)難以生長(zhǎng)。
另外,豬排泄物中存在著大量未被消化吸收的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),經(jīng)厭氧微生物發(fā)酵后生成惡臭氣體,嚴(yán)重污染環(huán)境。Zhu[20]指出,大腸桿菌中大部分菌株是產(chǎn)生吲哚惡臭物的主要微生物。因此,飼糧中通過(guò)添加乳桿菌可以抑制大腸桿菌的生長(zhǎng)、繁殖,從而間接減少吲哚等惡臭物質(zhì)的排放。本試驗(yàn)中,飼糧中添加0.2%、0.4%的豬源L.salivarius均能夠顯著增加糞中乳酸菌數(shù)量,并顯著降低大腸桿菌數(shù)量,同時(shí)對(duì)乳酸菌與大腸桿菌的比值具有顯著的增加效應(yīng),這說(shuō)明該菌株在改善生長(zhǎng)豬消化道菌群組成、促進(jìn)腸道健康、減少吲哚類惡臭物質(zhì)排放等方面具有積極的作用。
3.3.1 血清生化指標(biāo)
肝臟是機(jī)體重要的代謝場(chǎng)所,與脂類分解合成具有密切的關(guān)系。血清谷丙轉(zhuǎn)氨酶和谷草轉(zhuǎn)氨酶活性是檢測(cè)肝功能的最敏感的2個(gè)指標(biāo),這2種酶活性升高程度越高,表明肝細(xì)胞損傷程度越大。當(dāng)肝細(xì)胞受損時(shí),會(huì)導(dǎo)致脂類代謝異常。本試驗(yàn)對(duì)生長(zhǎng)豬血清中谷丙轉(zhuǎn)氨酶和谷草轉(zhuǎn)氨酶活性進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn),飼糧中添加0.2%和0.4%的豬源L.salivarius后生長(zhǎng)豬血清谷丙轉(zhuǎn)氨酶和谷草轉(zhuǎn)氨酶活性均顯著降低,同時(shí),生長(zhǎng)豬血清總膽固醇含量也顯著降低,血清中甘油三酯含量有下降趨勢(shì),但差異不顯著。這說(shuō)明該菌株對(duì)保護(hù)肝臟、調(diào)控肝臟的脂類代謝具有積極的作用。Bongaerts等[21]分析認(rèn)為,乳酸菌活菌數(shù)達(dá)到一定濃度時(shí)能夠通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)營(yíng)養(yǎng)底物或產(chǎn)酸有效抑制其他致病菌的生長(zhǎng)、繁殖,減少肝臟損傷。血清總膽固醇和甘油三酯含量是反映體脂代謝的重要生化指標(biāo),一些乳酸菌在生長(zhǎng)、繁殖過(guò)程中能夠產(chǎn)生膽鹽水解酶,具有膽鹽水解酶的菌體能將膽汁鹽解離成膽汁酸,肝臟需要重新合成膽汁鹽滿足體內(nèi)循環(huán)需要,因此使得肝臟需要膽固醇量增加,從而減少血清膽固醇含量。目前已報(bào)道的具有水解膽固醇效應(yīng)的菌株有嗜酸乳桿菌(L.acidophilus)ATCC 314、嗜酸乳桿菌FTCC 0291、保加利亞乳桿菌(L.bulgaricus)FTCC 0411、保加利亞乳桿菌FTDC 1311、干酪乳桿菌(L.casei)ATCC 393等[22],并將水解膽汁鹽效應(yīng)作為菌株去除膽汁鹽益生特性的篩選標(biāo)準(zhǔn)。
3.3.2 血清結(jié)合珠蛋白含量
在生長(zhǎng)過(guò)程中,飼糧營(yíng)養(yǎng)、環(huán)境、飼養(yǎng)條件等諸多因素都會(huì)影響豬群的健康。目前,國(guó)外主要通過(guò)測(cè)定豬群血清中結(jié)合珠蛋白和豬主要急性期蛋白(MAP)作為檢測(cè)豬群健康、亞健康及疾病等機(jī)體狀況的主要評(píng)定指標(biāo)。其中,結(jié)合珠蛋白主要由肝臟產(chǎn)生,主要存在于血清中,體液中也有少量存在,被認(rèn)為是檢測(cè)豬體內(nèi)急性期蛋白(APP)最具有敏感性和特異性且最為有效的指標(biāo)。Pineiro等[23]對(duì)10個(gè)規(guī)模豬場(chǎng)的健康長(zhǎng)×大豬群進(jìn)行了血清結(jié)合珠蛋白含量檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn),哺乳仔豬血清結(jié)合珠蛋白含量最低,隨著日齡的增加,血清結(jié)合珠蛋白含量逐漸升高,到第12周時(shí)達(dá)到最高,而后趨于穩(wěn)定。Witten[24]研究得出,健康豬血清中結(jié)合珠蛋白含量為0.079~2.000 mg/mL;Le等[25]指出,血清結(jié)合珠蛋白含量隨著豬群品種、年齡、環(huán)境的變化而存在不同。當(dāng)機(jī)體發(fā)生炎癥、感染、組織損傷及體內(nèi)失衡時(shí),其損害程度越大,結(jié)合珠蛋白含量越高[26]。許美芳[27]通過(guò)研究也發(fā)現(xiàn),血清結(jié)合珠蛋白含量與機(jī)體所受的刺激類型和強(qiáng)度有關(guān),細(xì)菌感染后血清結(jié)合珠蛋白含量在48 h達(dá)到最大值,病毒感染后其含量在72 h達(dá)到最大值。本試驗(yàn)研究了豬源L.salivarius對(duì)生長(zhǎng)豬血清結(jié)合珠蛋白含量的影響,結(jié)果顯示,飼糧中添加0.2%和0.4%的豬源L.salivarius均能夠降低血清結(jié)合珠蛋白含量,分別比對(duì)照組降低了20.18%、27.53%,差異顯著。分析其原因主要是由于乳酸菌可以通過(guò)抑制病原菌生長(zhǎng)、繁殖,提高機(jī)體免疫力,減少炎癥、感染的發(fā)生率,從而減少對(duì)機(jī)體組織的損傷,最終使血清中結(jié)合珠蛋白的含量減少。
綜合以上各項(xiàng)指標(biāo),飼糧中添加豬源L.salivarius能夠改善生長(zhǎng)豬腸道菌群環(huán)境和血清指標(biāo),提高機(jī)體免疫力,進(jìn)而促進(jìn)其生長(zhǎng)。
[1]CHANG C Y,CHEN Y T,CHUEN F L,et al.Characterization of tetracycline restance Lactobcilli isolated from swine intestines at weatern area of Taiwan[J].Anaerobe,2011,17(5):239-245.
[2]COMUNIAN R,DAGA E,DUPRE I,et al.Susceptibility to tetracycline and erythromycin of Lactobacillus paracasei strains isolated from traditional Italian fermented foods[J].International Journal of Food Microbiol,2010,138(1/2):151-156.
[3]TIMMERMAN H M,VELDMAN A,VAN DEN ELSEN E,et al.Mortality and growth performance of broilers given drinking water supplemented with chicken-specific probiotics[J].Poultry Science,2006,85(8):1383-1388.
[4]GARDINER G E,CASEY P G,CASEY G,et al.Relative ability of orally administered Lactobacillus murinus to predominate and persist in the porcine gastrointestinal tract[J].Applied and Environmental Microbiology,2004,70(4):1895-1906.
[5]ZOETENDAL E G,COLLIER C T,KOIKE S,et al.Molecular ecological analysis of the gastrointestinal microbiota:a review[J].The Journal of Nutrition,2004,134(2):465-472.
[6]DAVIS M E,BROWN D C,BAKER A,et al.Effect of direct-fed microbial and antibiotic supplementation on gastrointestinal microflora,mucin histochemical characterization,and immune populations of weanling pigs[J].Livestock Science,2007,108(1/2/3):249-253.
[7]BROOM L J,MILLER H M,KERR K G,et al.Effects of zinc oxide and Enterococcus faecium SF68 dietary supplementation on the performance,intestinal microbiota and immune status of weaned piglets[J].Research in Veterinary Science,2006,80(1):45-54.
[8]HUANG C,QIAO S,LI D,et al.Effects of Lactobacillus on the performance,diarrhoea incidence,VFA concentration and gastrointestinal microbial flora of weaning pigs[J].Asian-Austral Journal of Animal Sciences,2004,17(3):401-409.
[9]PLUSKE J R.Morphological and functional changes in the small intestine of the newly-weaned pig[M]//PIVA A B,KNUDSEN K E,LINDBERG J E.Gut Environment of Pigs.Nottingham:Nottingham University Press,2001:1-27.
[10]ESTIENNE M J,HARTSOCK T G,HARPER A F.Effects of antibiotics and probiotics on suckling pig and weaned pig performance[J].International Journal of Applied Research in Veterinary Medicine,2005,3:303-308.
[11]GIANG H H,VIET T Q,OGLE B,et al.Growth performance,digestibility,gut environment and health status in weaned pigs fed a diet supplemented with potentially probiotic complexes of lactic acid bacteria[J].Livestock Science,2010,129(1):95-103.
[12]NOUSIAINEN J,JAVANINEN P,SETALA J.Lactic acid bacteria microbiological and functional aspects[M]//SALMINEN S,VON WRIGHT A,OUWEHAND A.Lactic acid bacteria as animal probiotics.New York:Marcel Dekker Inc.,2004:547-580.
[13]LEE Y K,LIM C Y,TENG W L,et al.Quantitative approach in the study of adhesion of lactic acid bacteria to intestinal cells and their competition with enterobacteria[J].Applied and Environmental Microbiology,2000,66(9):3692-3697.
[14]CASTILLO M S,MARTíN-ORùE M,MANZANILLA E G,et al.Quantification of total bacteria,Enterobacteria and Lactobacilli populations in pig digesta by real-time PCR[J].Veterinary Microbiology,2006,114(1/2):165-170.
[15]MURALIDHARA K S,SHEGGEBY G G,ELLIKER P R,et al.Effect of feeding Lactobacilli on the coliform and Lactobacillus flora of intestinal tissue and feces from piglets[J].Journal of Food Protection,1977,40:288-293.
[16]CASTILLO M,MARTíN-ORùE S M,ANGUITA M,et al.Adaptation of gut microbiota to corn physical structure and different types of dietary fibre[J].Livestock Science,2007,109(1/2/3):149-152.
[17]侯璐.豬源糞腸球菌的特性及對(duì)仔豬生長(zhǎng)性能和免疫力影響的研究[D].碩士學(xué)位論文.呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2010:40-41.
[18]MALLO J J,RIOPEREZ J,HONRUBIA P.The addition of Enterococcus faecium to diet improves piglet’s intestinal microbiota and performance[J].Livestock Science,2010,133(1):176-178.
[19]侯成立.豬源益生乳桿菌的分離、篩選及應(yīng)用研究[D].碩士學(xué)位論文.呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2012:49-51.
[20]ZHU J.A review of microbiology in swine manure odor control[J].Agriculture Ecosystems and Environment,2000,78(2):93-106.
[21]BONGAERTS G,SEVERIJNEN R,TIMMERMAN H.Effect of antibiotics,prebiotics and probiotics in treatment for hepatic encephalopathy[J].Medical Hypotheses,2005,64(1):64-68.
[22]LYE H S,RUSUL G,LIONG M T.Removal of cholesterol by Lactobacilli via incorporation and conversion to coprostanol[J].Journal of Dairy Science,2010,93(4):1383-1392.
[23]PINEIRO M,GYMNICH S,KNURA S,et al.Meat juice:an alternative matrix for assessing animal health by measuring acute phase proteins.Correlations of pig-MAP and haptoglobin concentrations in pig meat juice and plasma[J].Research in Veterinary Science,2009,87(2):273-276.
[24]WITTEN I.Ways of evaluating the health status of slaughter pigs and its effect on the storage life of pork by using haptoglobin analysis[D].Ph.D.Thesis.Hannover:University of Veterinary Medicine,2005:63-65.
[25]LE F N,JONDREVILLE C,MATTE J J,et al.Importance of sanitary environment for growth performance and plasma nutrient homeostasis during the post-weaning period in pigs[J].Archives of Animal Nutrition,2006,60(1):23-34.
[26]PETERSEN H H,NIELSEN J P,HEEGAARD P M.Application of acute phase protein measurements in veterinary clinical chemistry[J].Veterinarian Research,2004,35(2):163-187.
[27]許美芳.血液急性期蛋白作為豬群健康評(píng)價(jià)指標(biāo)的研究[D].碩士學(xué)位論文.金華:浙江師范大學(xué),2011:35-37.