鞠瑞,陳晨,郭磊,李娟,葉菜英,張德昌
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羧胺三唑抑制腫瘤細胞誘導的巨噬細胞中腫瘤壞死因子-α的釋放
鞠瑞,陳晨,郭磊,李娟,葉菜英,張德昌
100005 北京,中國醫(yī)學科學院北京協(xié)和醫(yī)學院基礎(chǔ)醫(yī)學研究所藥理學系
觀察體外培養(yǎng)的腫瘤細胞對巨噬細胞炎癥因子——腫瘤壞死因子-α(TNF-α)的誘導作用;初步探索羧胺三唑(CAI)對腫瘤誘導的巨噬細胞中 TNF-α 釋放的影響。
利用 transwell 裝置,建立 Lewis 肺癌細胞(LLC)與 RAW264.7 巨噬細胞共培養(yǎng)體系,采用熒光定量 PCR 方法和 ELISA 方法分別分析 RAW264.7 中 TNF-α 的表達和釋放;用 LLC 條件培養(yǎng)基(LCM)誘導 RAW264.7,同時給予 CAI 處理,采用 CCK-8 方法分析 LCM 和 CAI 對 RAW264.7 活力的影響,采用 ELISA 方法分析 CAI 對誘導后的 RAW264.7 中 TNF-α 釋放的影響。
與 LLC 共培養(yǎng) 24 h 可顯著增加RAW264.7 中 TNF-α 相對表達量[單獨培養(yǎng) vs 共培養(yǎng),(1.00 ± 0.12)vs(2.23 ± 0.17),< 0.01]和釋放[單獨培養(yǎng) vs 共培養(yǎng),(65.21 ± 12.76)vs (143.92 ± 19.22)pg/ml,< 0.05];LCM 和 CAI 在 1 h 和 4 h 對 RAW264.7 活力沒有影響,CAI 可以顯著抑制 LCM 對RAW264.7 中 TNF-α 釋放的誘導(4 h,< 0.01)。
LLC 腫瘤微環(huán)境可以誘導 RAW264.7 中 TNF-α 的表達增加;CAI 對這種誘導的抑制使其在腫瘤環(huán)境中表現(xiàn)出一定的抗炎作用,可能是其抗腫瘤作用的機制之一。
腫瘤壞死因子 α; 巨噬細胞; 共培養(yǎng); 羧胺三唑
巨噬細胞是一種易被周圍環(huán)境所誘導的細胞,大致可以被分為 M1 表型(經(jīng)典激活的巨噬細胞)和 M2 表型(替代激活的巨噬細胞)。在對腫瘤的影響方面,一般認為 M1 巨噬細胞能夠分泌大量促炎介質(zhì),具有殺傷腫瘤細胞的功能;而 M2 巨噬細胞則參與組織重塑和創(chuàng)傷修復過程,分泌促炎介質(zhì)減少,具有促進腫瘤發(fā)展的作用[1]。
腫瘤組織中浸潤的巨噬細胞,即腫瘤相關(guān)巨噬細胞(TAM),其主要細胞因子的釋放特征被認為與 M2 巨噬細胞相似。然而,TAM 不能被簡單等同于 M2 巨噬細胞,它也有 M1 巨噬細胞的某些特征,也能通過長期釋放低濃度的促炎介質(zhì)在腫瘤微環(huán)境中引起“并不劇烈”的炎癥反應(yīng)[2-3]。這些低濃度的促炎介質(zhì)成為腫瘤細胞的生長信號,在腫瘤細胞的增殖、血管生成、侵襲和轉(zhuǎn)移等各個環(huán)節(jié)促進腫瘤的發(fā)展。在 TAM 釋放的多種促炎介質(zhì)中,腫瘤壞死因子-α(TNF-α)能夠調(diào)控多種炎癥介質(zhì)和促血管生成因子的合成,扮演關(guān)鍵角色[4]。
羧胺三唑(CAI)是一種非細胞毒類的抗癌藥物,對多種腫瘤的增殖和轉(zhuǎn)移有抑制作用[5-7]。除此之外,CAI 還在多種急慢性和免疫性炎癥的動物模型中表現(xiàn)出抗炎作用。其抗炎作用主要歸因于對炎癥組織和致炎動物腹腔巨噬細胞中 TNF-α 等炎癥介質(zhì)釋放的抑制[8-9]。
在本項實驗中,將腫瘤細胞(或其條件培養(yǎng)基)與巨噬細胞進行共培養(yǎng),觀察腫瘤環(huán)境對巨噬細胞中 TNF-α 表達和釋放的影響,并在此基礎(chǔ)上檢測 CAI 對該誘導模型中 TNF-α 釋放的影響,補充說明其在腫瘤微環(huán)境中同樣具有抗炎作用。
1.1.1 細胞系 RAW264.7 巨噬細胞購自中國醫(yī)學科學院基礎(chǔ)醫(yī)學研究所細胞中心。Lewis 肺癌細胞(LLC)購自中國科學院上海生科院細胞資源中心。
1.1.2 試劑 DMEM 高糖培養(yǎng)基、谷氨酰胺、青霉素和鏈霉素購自中國醫(yī)學科學院基礎(chǔ)醫(yī)學研究所細胞中心;胎牛血清購自美國 Gibco 公司;CAI 由中國醫(yī)學科學院藥物研究所提供;CCK-8 試劑購自日本同仁化學研究所;TNF-α ELISA 試劑盒購自上海依科賽生物制品有限公司;mRNA 提取試劑盒購自北京百泰克試劑公司;Oligo(dT)18和 M-MLV 反轉(zhuǎn)錄酶購自美國 Promega 公司;SYBR Green I 熒光定量 PCR 試劑盒購自杭州博日科技有限公司;TNF 和 β-actin 引物購自上?;瞪锛夹g(shù)有限公司。
1.1.3 裝置和儀器 Transwell(0.4 μm)、0.22 μm 濾器購自美國 Millipore 公司;酶標儀 Synergy 4 為美國基因公司產(chǎn)品;熒光定量 PCR 儀 IQ 5 為美國 Bio-Rad 公司產(chǎn)品。
1.2.1 RAW264.7 細胞和 LLC 細胞培養(yǎng) RAW264.7 和 LLC 細胞用 DMEM 高糖培養(yǎng)基(加入 10% 胎牛血清、1% 谷氨酰胺、50 mg/ml 青霉素和100 mg/ml 鏈霉素)在 37 ℃、5% CO2環(huán)境中培養(yǎng)。
1.2.2 RAW264.7 細胞和 LLC 細胞共培養(yǎng) 收集處于對數(shù)生長期的 LLC 細胞,以 5 × 104個/孔的數(shù)量接種至嵌入 24 孔板的 transwell 上室中。收集處于對數(shù)生長期的 RAW264.7 細胞,以 6 × 105個/孔的數(shù)量接種于 24 孔板中。待 transwell 中 LLC 細胞貼壁后,將 transwell 嵌入至生長有 RAW264.7 細胞的孔中。以 LLC 細胞單獨培養(yǎng)、RAW264.7 細胞單獨培養(yǎng)作為對照。共培養(yǎng) 24 h。
1.2.3 LLC 細胞條件培養(yǎng)基收集和誘導 收集處于對數(shù)生長期的 LLC 細胞,將 5 × 105個細胞接種至 T75 培養(yǎng)瓶中。待細胞生長 5 d 后,收集 T75 中的培養(yǎng)上清,過 0.22 μm 濾器除去上清中的 LLC 細胞,處理后的培養(yǎng)上清為 LLC 條件培養(yǎng)基(LCM)。收集處于對數(shù)生長期的 RAW264.7 細胞,以 6 × 105個/孔的數(shù)量接種于 24 孔板中。以 50% LCM(50% LCM + 50% 新鮮培養(yǎng)基)培養(yǎng) RAW264.7 細胞,同時給予 CAI 20 μmol/L 分別處理 1、2 和 4 h。以完全新鮮培養(yǎng)基培養(yǎng)的 RAW264.7 細胞作為對照。
1.2.4 CCK-8 測定 RAW264.7 細胞活力 在 RAW264.7 細胞和 LLC 細胞共培養(yǎng)實驗和 LCM 誘導實驗中,收集各組上清后,細胞以 PBS 洗2 次,然后向各孔加入 500 μl PBS 和 50 μl CCK-8 試劑,混勻后在 37 ℃、5% CO2環(huán)境中繼續(xù)培養(yǎng)1 h。然后將各孔上清轉(zhuǎn)移至 96 孔板中,測定450 nm 處吸光度。
1.2.5 ELISA 測定 TNF-α 釋放 收集RAW264.7細胞和 LLC 細胞共培養(yǎng)實驗和 LCM誘導實驗中各組的上清,用 ELISA 試劑盒測定上清中 TNF-α 的含量。
1.2.6 RT-PCR 測定 TNF-α 表達 用 mRNA 提取試劑盒提取 RAW264.7 細胞和 LLC 細胞共培養(yǎng)實驗中各組RAW264.7 細胞的 mRNA 。經(jīng)反轉(zhuǎn)錄后,用 SYBR Green I 熒光定量 PCR 試劑盒對 TNF-α 進行擴增。TNF-α 正向引物:5' GTCTACTG AACTTCGGGGTGAT 3';TNF-α 反向引物:5' CAC TTGGTGGTTTGCTACGAC 3'。β-actin 正向引物:5' CCTGAGGCTCTTTTCCAGCC 3';β-actin 反向引物:5' TAGAGGTCTTTACGGATGTCAACGT 3'。用 Biorad IQ 5 進行檢測和分析。
提取 RAW264.7 細胞和 LLC 細胞共培養(yǎng)實驗中各組 RAW264.7 細胞的 mRNA,進行反轉(zhuǎn)錄和熒光定量 PCR。結(jié)果顯示,與 LLC 共培養(yǎng) 24 h 的 RAW264.7 細胞中 TNF-α 表達顯著增加。單獨培養(yǎng)的 RAW264.7 細胞中 TNF-α 相對表達量為(1.00 ± 0.12),共培養(yǎng)組 RAW264.7 細胞中 TNF-α 相對表達量為(2.23 ± 0.17),< 0.01(圖 1)。
TNF-α 表達倍數(shù)Fold expression of TNF-α3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0 LLC– LLC+
Figure 1 Relative fold expression of TNF-α in RAW264.7 single cultured or co-cultured with LLC for 24 h (**< 0.01)
RAW264.7 細胞和 LLC 細胞共培養(yǎng)實驗中,單獨培養(yǎng)及與 LLC 共培養(yǎng) 24 h 的 RAW264.7 活力無明顯差別(圖 2A)。培養(yǎng) 24 h 后收集各組上清,進行 ELISA 測定。結(jié)果顯示,LLC 細胞本身釋放的 TNF-α 水平很低,為(5.97 ± 2.35)pg/ml;但是 LLC 能夠顯著促進 RAW264.7 細胞中 TNF-α 的釋放:單獨培養(yǎng)和共培養(yǎng)的 RAW264.7 細胞釋放的 TNF-α 水平分別為(65.21 ± 12.76)和(143.92 ± 19.22)pg/ml,< 0.05(圖 2B)。這兩部分結(jié)果顯示,LLC 細胞使 RAW264.7 細胞中 TNF-α 表達和分泌水平增加幅度相似,表明 LLC 細胞通過某種機制主要在表達水平誘導 RAW264.7 細胞中 TNF-α 增加。
受到腫瘤細胞誘導的炎性細胞,如巨噬細胞,釋放 TNF-α 增加。但這種誘導對 TNF-α 的增加程度較低,不但不會殺傷腫瘤細胞,反而成為腫瘤細胞生長的有利因素。上述共培養(yǎng)實驗采用 transwell 裝置將兩種細胞置于一個體系中,兩者只有培養(yǎng)基的交流,并不直接接觸。因此 LLC 是通過其釋放在培養(yǎng)基中的物質(zhì)對 RAW264.7 進行誘導的。我們接下來使用 LLC 的條件培養(yǎng)基(LCM)對 RAW264.7 進行誘導,在 1 h 和 4 h 時間點,LCM 以及 CAI 對細胞活力沒有明顯影響(圖 3A),LCM 同樣可以促進 RAW264.7 中 TNF-α 的釋放,并且 CAI 能夠有效抑制 LCM 誘導導致的 TNF-α 增加(圖 3B)。
OD450 1.6 1.2 0.8 0.4 0 腫瘤壞死因子-α 含量(pg/ml)TNF-α (pg/ml)200 160 120 80 40 0 LLC– LLC+A LLC LLC– LLC+ RAW264.7B
Figure 2 Cell viability (A) and TNF-α secretion (B) of RAW264.7 single cultured or co-cultured with LLC for 24 h (**< 0.01)
OD450 0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 0 腫瘤壞死因子-α(pg/ml)TNF-α (pg/ml) 120 100 80 60 40 20 0 1 4 1 2 4 時間(h)Time (h)A 時間(h)Time (h)B
Figure 3 The effect of LCM and CAI on RAW264.7 viability (A) and TNF-α secretion (B) within 4 hours
TAM 在腫瘤發(fā)生發(fā)展的過程中發(fā)揮重要作用。它兼具 M1 表型和 M2 表型巨噬細胞的標記物,通過調(diào)節(jié)各種促炎、抗炎介質(zhì)的平衡扮演腫瘤“幫兇”的角色[2]。在腫瘤發(fā)生、增殖、侵襲、轉(zhuǎn)移和血管生成的各個環(huán)節(jié)中,TAM 釋放的 TNF-α 均發(fā)揮重要作用[4]。TAM 經(jīng)腫瘤微環(huán)境誘導生成的 TNF-α 水平遠低于經(jīng)典激活(如脂多糖刺激)的巨噬細胞釋放的 TNF-α 水平。而正是這種“并不劇烈”的炎癥反應(yīng),不但不會殺傷腫瘤細胞,反而成為腫瘤細胞的生長信號。目前認為 TNF-α 促進腫瘤發(fā)展的機制主要有以下幾點:①通過影響活性氧破壞 DNA,并抑制 DNA 的修復;②通過旁分泌方式成為腫瘤細胞生存信號;③通過誘導基質(zhì)金屬蛋白酶誘導組織的重塑;④通過調(diào)控趨化因子及其受體控制淋巴細胞的浸潤;⑤通過誘導促血管生成因子促進血管的形成;⑥促進腫瘤產(chǎn)生對細胞毒類藥物的耐藥;⑦促進腫瘤惡液質(zhì)發(fā)生等。
在本項研究中,我們首先建立 LLC 細胞與 RAW264.7 細胞共培養(yǎng)的模型,確定了前者對后者 TNF-α 表達和釋放的促進作用和促進的程度。經(jīng)過與 LLC 共培養(yǎng),RAW264.7 中 TNF-α 釋放顯著增加,但是遠低于脂多糖的刺激作用,這一點與目前對腫瘤炎性微環(huán)境的認識一致。由于已知 CAI 在多種炎癥模型中表現(xiàn)出下調(diào) TNF-α 的作用,我們在該模型的基礎(chǔ)上檢測了 CAI 對腫瘤微環(huán)境中 TNF-α 含量的影響,發(fā)現(xiàn) CAI 在所設(shè)時間點均顯著抑制 LLC 對 TNF-α 的誘導作用。
目前,通過拮抗 TNF-α 進行抗腫瘤治療已被廣泛認可。Infliximab 和 etanercept 治療腫瘤的I期和II期臨床研究發(fā)現(xiàn)它們能有效控制晚期患者的病情[10-12]。一些研究也已經(jīng)證實,能夠下調(diào) TNF-α 的沙利度胺對多發(fā)性骨髓瘤、腎細胞癌、前列腺癌、黑色素瘤、膠質(zhì)瘤和 Kaposi 肉瘤有抑制作用[13-15]。
CAI 在多種移植瘤模型中表現(xiàn)出抗癌作用,并且其抗癌治療已進入臨床試驗階段。本項研究結(jié)果顯示,除直接抑制腫瘤細胞的生長外,CAI 還能抑制 TAM 中炎癥介質(zhì)——TNF-α 的釋放,這可能是其抗腫瘤作用的另一個機制。利用這一作用,我們可嘗試將 CAI 與其他抗炎藥物聯(lián)合使用,觀察其抑制 TNF-α 和腫瘤生長的效果能否得到增強。這將是優(yōu)化 CAI 抗癌作用的一個比較理想的思路,可能會有可觀的應(yīng)用前景。
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Carboxyamidotriazole inhibits the tumor necrosis factor-α secretion from the tumor cells-induced macrophages
JU Rui, CHEN Chen, GUO Lei, LI Juan, YE Cai-ying, ZHANG De-chang
To investigate the tumor necrosis factor-α (TNF-α) expression and secretion enhancement in macrophages induced by tumor cells, as well as the inhibitory effect of carboxyamidotriazole (CAI) on TNF-α induction in tumor-educated macrophages.
The Lewis lung carcinoma (LLC) cells and RAW264.7 macrophages were co-cultured with the transwell inserts, LLC conditioned medium (LCM) was also used to induce RAW264.7 with or without CAI treatment. Real time RT-PCR and ELISA methods were applied to analyze the TNF-α expression and secretion in RAW264.7, respectively. CCK-8 was applied to determine the effect of LLC (LCM) and CAI on the viability of RAW264.7.
TNF-α expression [cultured alone vs co-cultured, (1.00 ± 0.12) vs (2.23 ± 0.17),< 0.01] and secretion [cultured alone vs co-cultured, (65.21 ± 12.76) vs (143.92 ± 19.22) pg/ml,< 0.05] were greatly increased in RAW264.7 after being co-cultured with LLC for 24 hours. LCM and CAI did not influence the viability of RAW264.7 at 1 hour and 4 hour, while CAI inhibited TNF-α secretion in RAW264.7 induced by LCM (4 h,< 0.01).
LLC tumor environment can greatly enhance the TNF-α expression in RAW264.7. CAI inhibits this induction significantly and shows anti-inflammation activity in tumor environment, which may contribute to its anti-cancer effects.
Tumor necrosis factor-alpha; Macrophages; Co-culture; Carboxyamidotriazole
ZHANG De-chang, Email: zhangdechang45@vip.sina.com; YE Cai-ying, Email: caiyingye@126.com
10.3969/cmba.j.issn.1673-713X.2014.02.007
“十二五”國家科技重大專項(2014ZX09507003-003);國家自然科學基金(81201728);高等學校博士學科點專項科研基金新教師類(20121106120019)
張德昌,Email:zhangdechang45@vip.sina.com;葉菜英,Email:caiyingye@126.com
2013-12-26
Author Affiliation: Department of Pharmacology, Institute of Basic Medical Sciences, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100005, China