王加豪 賈 睿, 劉英娟 杜金梁 曹麗萍 殷國俊,*
(1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)無錫漁業(yè)學(xué)院,無錫 214081;2.中國水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心,農(nóng)業(yè)部淡水漁業(yè)和種質(zhì)資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/魚類免疫藥理學(xué)國際聯(lián)合實(shí)驗(yàn)室,無錫 214081)
生物活性肽是一類在生物體內(nèi)對生物活動具有調(diào)節(jié)作用的肽類化合物[1],具有易吸收、促進(jìn)免疫、抗菌、抗病毒等優(yōu)點(diǎn),其種類繁多,主要有乳肽、玉米肽、畜產(chǎn)肽等,是當(dāng)前國際研究最熱門以及最有發(fā)展前景的功能因子。目前,國內(nèi)外研究人員已從不同來源的蛋白質(zhì)中提取到各種具有抗氧化活性的肽類物質(zhì)[2],Hattori等[3]、Suetsuna等[4]、Suetsuna 等[5]分別從不溶性的彈性蛋白、酪蛋白和沙丁魚中分離得到了抗氧化肽。豬血在我國是很好的蛋白質(zhì)源,具有很高的營養(yǎng)價(jià)值[6],但由于其自身具有分子質(zhì)量大、難消化等缺點(diǎn),嚴(yán)重影響了豬血在我國養(yǎng)殖業(yè)的應(yīng)用[7]。而豬血多肽(peptides from swine blood,PSB)的出現(xiàn),則彌補(bǔ)了豬血的這些缺點(diǎn),豬血多肽是利用微生物發(fā)酵豬血而分離獲得的一類具有多種生物活性的短肽,它具有易吸收、利用率高等優(yōu)點(diǎn),是當(dāng)前研究的熱點(diǎn)。方俊等[8]研究發(fā)現(xiàn),豬血多肽對于機(jī)體中的自由基具有明顯的清除作用,顯示其具有較強(qiáng)的抗氧化能力。關(guān)于豬血多肽在水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)中的應(yīng)用未見相關(guān)報(bào)道。
本研究以建鯉(Cyprinus carpio var.Jian)為試驗(yàn)對象,用豬血多肽和飼料混合喂養(yǎng)健康無傷的建鯉,在不同階段取血樣、頭腎,通過檢測血清中各種抗氧化酶活性的變化以及蛋白質(zhì)濃度的變化,并結(jié)合體外試驗(yàn)測定的指標(biāo)變化來評價(jià)豬血多肽對建鯉抗氧化能力和免疫功能的影響,為豬血蛋白質(zhì)源生物活性肽在魚類飼料中的應(yīng)用研究提供理論依據(jù)。
試驗(yàn)用建鯉取自中國水產(chǎn)科學(xué)院淡水漁業(yè)研究中心漁場,所選建鯉健康無傷、平均體重在100 g左右,飼養(yǎng)于循環(huán)水系統(tǒng)中,水溫27℃,每天投喂配制的飼料2次。
豬血多肽購自北京漁經(jīng)生物技術(shù)有限公司,為分子質(zhì)量<1 ku的小肽混合物。
細(xì)菌脂多糖(LPS)、L-15培養(yǎng)基、杜氏磷酸鹽緩沖液(D-PBS)、二甲基亞砜(DMSO)、氯化硝基四氮唑藍(lán)(NBT)、佛波豆寇乙酸酯(PMA)、Hank’s平 衡 鹽 溶 液 (HBSS)、鏈 霉 素/青 霉 素(streptomycin/penicillin,S/P)、肝素(heparin)購于美國Sigma公司;胎牛血清(FCS)和細(xì)胞培養(yǎng)板購于GIBCO生物技術(shù)有限公司;超氧化物歧化酶(SOD)、堿性磷酸酶(AKP)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、過氧化氫酶(CAT)活性及總蛋白(TP)、白蛋白(ALB)含量等測定試劑盒購自于南京建成生物工程研究所;白介素-1β(IL-1β)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、補(bǔ)體 3(C3)、補(bǔ)體 4(C4)含量測定試劑盒購自于上海朝瑞生物科技有限公司,WST-1試劑盒購自于碧云天生物技術(shù)研究。
1.3.1 建鯉頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞的分離
采用 Bayne[9]和曹麗萍等[10]的方法分離建鯉頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞。將分離的細(xì)胞濃度調(diào)整為 107個(gè)/mL。接種到 96孔板上,每孔100μL,27℃培養(yǎng)2 h后,洗去未貼壁細(xì)胞,加入100μL L-15培養(yǎng)基(含1%S/P和5%FCS),27℃培養(yǎng)備用。
將培養(yǎng)備用的白細(xì)胞和巨噬細(xì)胞在96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中培養(yǎng)24 h后,吸棄培養(yǎng)基,再加入含有不同濃度 (10、20、40、80 μg/mL)豬血多肽的L-15培養(yǎng)基100μL,同時(shí)設(shè)空白對照(加入等量L-15培養(yǎng)基)和陽性對照(加入等量含500μg/mL LPS的L-15培養(yǎng)基),作用24 h后,分別檢測白細(xì)胞增殖能力和巨噬細(xì)胞呼吸爆發(fā)活性。
1.3.2 外周血白細(xì)胞增殖能力的測定
白細(xì)胞增殖能力通過WST-1(是一種高度水溶性的四唑鹽)試劑盒檢測。將細(xì)胞以每孔1×104個(gè)/mL的量接種于96孔板中,培養(yǎng)24 h后,分別用含不同濃度豬血多肽(10、20、40、80 μg/mL)的L-15培養(yǎng)基進(jìn)行處理,每孔加入100μL,然后每孔加入10μL WST-1孵育2 h,每孔混合均勻后選擇450 nm波長,在酶聯(lián)免疫檢測儀上測定各孔的吸光度值,記錄結(jié)果。共測定8尾魚,每尾魚為1個(gè)重復(fù)。
1.3.3 頭腎巨噬細(xì)胞呼吸爆發(fā)活性的測定
氧呼吸爆發(fā)和氮呼吸爆發(fā)活性均根據(jù)Yin等[11]的方法進(jìn)行檢測,其結(jié)果用吸光度值表示,共測定8尾魚,每尾魚為1個(gè)重復(fù)。
1.4.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
將初始體重為(100±2)g的建鯉隨機(jī)分為5組,即1個(gè)對照組和4個(gè)試驗(yàn)組,每組20尾。對照組飼喂基礎(chǔ)飼料(表1),基礎(chǔ)飼料中不添加豬血多肽;4個(gè)試驗(yàn)組分別飼喂在基礎(chǔ)飼料中添加0.5(PSB0.5 組)、1.0(PSB1 組)、2.0(PSB2 組)和5.0 g/kg(PSB5組)豬血多肽的試驗(yàn)飼料。飼養(yǎng)8周,期間分4次采集血液,采集時(shí)間分別在試驗(yàn)第1、2、4、8 周。
1.4.2 血清制備
每組選8尾建鯉,從尾靜脈采血,血樣在4℃冰箱中靜置4 h后,4℃下4 000 r/min離心10 min制備血清,每尾魚均單獨(dú)制備血清,-20℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.4.3 血清生化指標(biāo)及抗氧化指標(biāo)測定
按照試劑盒操作說明,分別測定血清中SOD、CAT、AKP、GSH-Px活性以及TP和ALB含量。
表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet(air-dry basis)%
1.4.4 血清免疫指標(biāo)測定
參照試劑盒操作說明,分別測定血清中IL-1β、TNF-α、C3、C4 含量。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SD)表示,數(shù)據(jù)分析采用SPSS 16.0軟件包中的單因素方差分析(one-way ANOVA)和Duncan氏法多重化比較處理,對樣本(空白對照組與試驗(yàn)組之間)進(jìn)行t檢驗(yàn)。P<0.05為差異顯著。
由表2可知,LPS能顯著提高建鯉外周血白細(xì)胞的增殖能力,同時(shí)也可以增強(qiáng)頭腎巨噬細(xì)胞的氮呼吸爆發(fā)和氧呼吸爆發(fā)活性,說明經(jīng)檢測的離體培養(yǎng)的細(xì)胞狀態(tài)是正常的。當(dāng)用不同濃度的豬血多肽處理白細(xì)胞后,白細(xì)胞的增值能力隨著濃度的提高出現(xiàn)了不同的變化。與空白對照組相比,各濃度豬血多肽組的細(xì)胞增殖能力均有所提高,濃度為20和 40μg/mL的組提高顯著(P<0.05),濃度為 80μg/mL的組提高極顯著(P<0.01)。與空白對照組相比,添加40和80μg/mL豬血多肽顯著增強(qiáng)了建鯉頭腎巨噬細(xì)胞氮呼吸爆發(fā)活性(P<0.05)。與空白對照組相比,添加40μg/mL豬血多肽顯著增強(qiáng)了建鯉頭腎巨噬細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活性(P<0.05),添加 80μg/mL豬血多肽極顯著增強(qiáng)了建鯉巨噬細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活性(P<0.01)。
豬血多肽對建鯉血清生化指標(biāo)的影響結(jié)果見表3。與對照組對比,在第1周,PSB2和PSB5組血清中 TP含量顯著增加(P<0.05);在第2周,PSB5組血清中TP含量顯著增加(P<0.05);在第4和8周,PSB1、PSB2和 PSB5組血清中 TP含量均顯著增加(P<0.05)。
與對照組相比,在第1、2和4周,各試驗(yàn)組血清中ALB含量沒有顯著變化(P>0.05);在第8周,PSB1、PSB2和PSB5組血清中ALB含量均顯著增加(P<0.05)。此外,在第 4周,PSB2和 PSB5組血清中 ALB含量顯著高于 PSB0.5組(P<0.05)。
與對照組相比,在第1周,PSB5組血清中AKP活性顯著升高(P<0.05);在第 2周,PSB1、PSB2和PSB5組血清中AKP活性顯著升高(P<0.05);在第4周,各試驗(yàn)組血清中AKP活性均顯著升高(P<0.05);在第 8周,PSB2和 PSB5組血清中AKP活性顯著升高(P<0.05)。
表2 豬血多肽對體外培養(yǎng)建鯉細(xì)胞性能的影響(以O(shè)D值計(jì))Table 2 Effects of PSB on properties of Jian carp cells cultured in vitro(as expressed by OD value)
表3 豬血多肽對建鯉血清生化指標(biāo)的影響Table 3 Effects of PSB on serum biochemical indices of Jian carp
豬血多肽對建鯉血清抗氧化指標(biāo)的影響結(jié)果見表4。
與對照組相比,在第1和2周,PSB2和PSB5組血清中 CAT活性顯著升高(P<0.05);在第4周,PSB5組血清中CAT活性顯著升高(P<0.05);在第8周,PSB1、PSB2和PSB5組血清中CAT活性顯著升高(P<0.05)。
與對照組相比,在第1周,PSB2和PSB5組血清中SOD活性顯著升高(P<0.05);在第2、4和8周,僅 PSB5組血清中SOD活性顯著升高(P<0.05),其他試驗(yàn)組沒有顯著變化(P>0.05)。
與對照組相比,在第1和2周,各試驗(yàn)組血清中GSH-Px活性沒有顯著變化(P>0.05);在第4和8周,僅PSB5組血清中GSH-Px活性顯著升高(P<0.05),其他試驗(yàn)組沒有顯著變化(P>0.05)。
表4 豬血多肽對建鯉血清抗氧化指標(biāo)的影響Table 4 Effects of PSB on serum antioxidant indices of Jian carp U/mL
豬血多肽對建鯉血清免疫指標(biāo)的影響結(jié)果見表5。
與對照組相比,在第1周,各試驗(yàn)組血清中IL-1β含量沒有顯著變化(P>0.05);在第 2周,PSB2和PSB5組血清中IL-1β含量顯著升高(P<0.05);在第4周,PSB5組血清中 IL-1β含量顯著升高(P<0.05);在第 8周,PSB2和 PSB5組血清中 IL-1β 含量顯著升高(P<0.05)。
與對照組相比,在第1周,PSB0.5組血清中TNF-α 含量顯著降低(P<0.05);在第 2 周,各試驗(yàn)組血清中TNF-α含量沒有顯著變化(P>0.05);在第4和8周,PSB2和PSB5組血清中TNF-α含量顯著升高(P<0.05)。
與對照組相比,在第1周,PSB0.5和PSB1組血清中C3含量顯著降低(P<0.05),隨著豬血多肽添加量的升高,血清中C3含量是逐漸升高的;在第2和4周,各試驗(yàn)組血清中C3含量沒有顯著變化(P>0.05);在第 8周,PSB2和 PSB5組血清中 C3 含量顯著升高(P<0.05)。
與對照組對比,在第1和2周,各試驗(yàn)組血清中C4含量沒有顯著變化(P>0.05);在第4周,PSB2和PSB5組血清中 C4含量顯著升高(P<0.05);在第 8周,PSB1、PSB2和 PSB5組血清中C4 含量顯著升高(P<0.05)。
巨噬細(xì)胞被認(rèn)為是宿主防御系統(tǒng)的重要組成部分,是魚類最重要的免疫活性細(xì)胞之一,在識別、吞噬外來病原體,處理和呈遞抗原,激活淋巴細(xì)胞啟動特異性免疫應(yīng)答以及分泌淋巴因子等方面發(fā)揮重要作用[12-14],其活性與功能是反映和評價(jià)魚類免疫水平的重要指標(biāo)[15]。巨噬細(xì)胞有助于內(nèi)部環(huán)境穩(wěn)態(tài)免受外部環(huán)境的干擾,活化的巨噬細(xì)胞可以釋放多種免疫因子,如一氧化氮(NO)、IL-1β、TNF-α和活性氧中間體等物質(zhì),在宿主防御病原體和任何類型的浸潤細(xì)胞(包括癌細(xì)胞)中發(fā)揮重要作用[15]。Kim 等[16]認(rèn)為 NO 是由巨噬細(xì)胞分泌的,可以通過格里斯(Griess)反應(yīng)測定亞硝酸鹽濃度。需特別指出的是,由巨噬細(xì)胞釋放的NO是一種高反應(yīng)性的自由基,在調(diào)節(jié)各種免疫應(yīng)答中起重要作用。
本研究試驗(yàn)結(jié)果顯示,添加40和80μg/mL豬血多肽可以顯著或極顯著增強(qiáng)建鯉頭腎巨噬細(xì)胞氮呼吸爆發(fā)和氧呼吸爆發(fā)活性。Matar等[17]、Meisel等[18]研究均表明,乳酸菌發(fā)酵釋放的多肽有助于調(diào)節(jié)淋巴細(xì)胞的增殖,調(diào)節(jié)某些細(xì)胞因子的生產(chǎn),刺激巨噬細(xì)胞的吞噬活動。Migliore-Samour等[19]研究表明,由酪蛋白衍生的免疫肽,在對抗由肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae)引起的微生物感染中起顯著作用,這種作用已經(jīng)在小白鼠試驗(yàn)中得到證實(shí)。這與本試驗(yàn)結(jié)果一致,表明豬血多肽有助于提高頭腎巨噬細(xì)胞的免疫活性,從而增強(qiáng)建鯉自身的非特異性免疫機(jī)能。
表5 豬血多肽對建鯉血清免疫指標(biāo)的影響Table 5 Effects of PSB on serum immune indices of Jian carp ng/mL
建鯉血清中ALB和TP含量反映魚體健康、營養(yǎng)以及代謝狀況,同時(shí)也間接反映機(jī)體非特異性免疫水平的高低[20]。TP主要是由ALB和球蛋白(GLB)組成的,血清TP含量高表明機(jī)體蛋白質(zhì)代謝旺盛,有利于機(jī)體對蛋白質(zhì)的吸收和利用,同時(shí)可以降低飼料消耗。ALB是脊椎動物血漿中含量豐富且容易純化的一種蛋白質(zhì),是血液系統(tǒng)的重要成分,能夠結(jié)合和運(yùn)輸多種內(nèi)源性以及外源性物質(zhì),清除自由基,并在抗凝血以及抑制血小板功能等生理過程中發(fā)揮一定功能[21]。本試驗(yàn)中,用添加豬血多肽的飼料飼喂建鯉后,測定結(jié)果表明血清TP和ALB含量隨著豬血多肽添加量的升高而升高,表明豬血多肽對建鯉機(jī)體的新陳代謝是有積極影響的,對建鯉抗氧化能力的提升也具有一定的促進(jìn)作用。趙紅霞等[22]研究發(fā)現(xiàn),在飼料中添加谷胱甘肽(GSH)能夠增強(qiáng)草魚蛋白質(zhì)的合成作用。李清等[23]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加生物活性肽可以顯著降低建鯉血清中尿素氮含量,有利于提高蛋白質(zhì)的合成效率。葉均安等[24]研究發(fā)現(xiàn),谷氨酰胺二肽對于日本對蝦TP合成也具有一定促進(jìn)作用。
AKP是一種在生物體代謝調(diào)控中起重要作用的代謝調(diào)控酶,直接參與磷酸基團(tuán)的轉(zhuǎn)移和鈣、磷代謝,在吸收和利用營養(yǎng)物質(zhì)的過程中起重要作用,AKP可以改變病原體表面結(jié)構(gòu),從而增強(qiáng)機(jī)體對病原體的識別和吞噬能力[25]。本試驗(yàn)中,與對照組相比,飼料中添加5.0 g/kg豬血多肽對建鯉血清中AKP活性有顯著的增強(qiáng)作用。鋅是合成AKP必需的金屬離子,豬血多肽有助于促進(jìn)AKP活性的增強(qiáng)可能與豬血多肽中含有鋅離子有關(guān)。郭存榮等[26]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加不同濃度的魚蛋白多肽-鋅配合物可以增加羅非魚血清中AKP活性,并有隨著濃度增加而增加的趨勢,從而增強(qiáng)其免疫力。
抗氧化劑包括酶促和非酶促2個(gè)部分,在當(dāng)前科學(xué)研究中,SOD、CAT、谷胱甘肽巰基轉(zhuǎn)移酶(GST)、GSH-Px等逐漸引起重視[27]。機(jī)體中由SOD、GSH-Px和CAT等組成的抗氧化酶系統(tǒng),是防自由基損傷的第1道防線,其活性變化能準(zhǔn)確反映機(jī)體內(nèi)的抗氧化狀態(tài)[28-30]。豬血蛋白經(jīng)菌株發(fā)酵,發(fā)酵液過濾后可以得到分子質(zhì)量在2 ku以下的豬血多肽混合物,這種混合物對部分活性氧自由基具有強(qiáng)力的清除作用。有研究表明,經(jīng)D-半乳糖誘導(dǎo)衰老ICR小鼠,口服攝入水母復(fù)合蛋白酶水解制備的膠原蛋白,可增加小鼠血清SOD和GSH-Px活性,同時(shí)伴隨血清和肝臟中丙二醛(MDA)含量的大量減少[31]。這與本試驗(yàn)的結(jié)果是一致的。在本試驗(yàn)中,用含豬血多肽的飼料飼喂建鯉后,建鯉血清中SOD和CAT活性隨著豬血多肽添加量的升高呈逐漸升高的趨勢,且PSB5組較對照組顯著升高,GSH-Px活性也有不同程度的升高,表明豬血多肽能夠提高建鯉體內(nèi)一些抗氧化酶的活性,有助于提高建鯉的抗氧化能力。
血清中存在多種的免疫因子,如白介素、腫瘤壞死因子、C3和C4等,測量血清免疫指標(biāo)是對機(jī)體免疫水平的體現(xiàn)[32-34]。巨噬細(xì)胞可以釋放多種細(xì)胞因子,如 NO、IL-1β、TNF-α 和活性氧中間體等物質(zhì);C3是血清中含量最高的補(bǔ)體成分,主要由巨噬細(xì)胞和肝臟合成;C4是一種多功能β1-球蛋白,在活化補(bǔ)體、促進(jìn)吞噬、防止免疫復(fù)合物沉著和中和病毒等方面發(fā)揮作用[35]。TNF-α、IL-1β對于宿主受損或非正常細(xì)胞和組織的恢復(fù)起一定重要作用。方俊等[36]研究表明,豬血多肽能夠提高正常小鼠以及環(huán)磷酸酰胺所致免疫功能低下小鼠的免疫功能,并認(rèn)為豬血多肽能夠從多個(gè)方面增強(qiáng)小鼠的免疫功能,其中最主要的是增強(qiáng)小鼠巨噬細(xì)胞的機(jī)能。劉清海等[37]研究表明,黑鯛口服微生物多肽后,血清中C3和C4含量顯著升高,多種免疫球蛋白的含量也顯著增加。李清等[23]研究也表明,隨著生物活性肽用量的增加,鯉魚血清中免疫球蛋白M(IgM)和C4的含量顯著增加。這與本試驗(yàn)的研究結(jié)果是一致的,表明豬血多肽可以促進(jìn)細(xì)胞因子的釋放,提高建鯉的免疫功能。
① 在體外試驗(yàn)中,豬血多肽濃度在40和80μg/mL時(shí),建鯉外周血白細(xì)胞的增殖能力顯著提高,頭腎巨噬細(xì)胞的氮呼吸爆發(fā)和氧呼吸爆發(fā)活性也顯著增強(qiáng)。
② 在體內(nèi)試驗(yàn)中,飼料中添加5.0 g/kg豬血多肽對提高建鯉的抗氧化能力和免疫功能具有很好的效果。
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