劉驍,謝晶,黃碩琳
(上海海洋大學食品學院,上海水產(chǎn)品加工及貯藏工程技術(shù)中心,上海,201306)
魚類因味道鮮美、營養(yǎng)豐富,不僅是人們餐桌上的美味佳肴,也是人們?nèi)粘I钪袛z取優(yōu)質(zhì)蛋白質(zhì)的來源之一。隨著生活品質(zhì)提高,消費者對魚類鮮活程度的要求也越高,因此我國活魚運輸市場份額不斷加大。然而由于產(chǎn)銷地域跨度大、?;罴夹g(shù)不成熟以及運輸設(shè)備配置不完善等原因,導致活魚運輸成本高、遠距離運輸耗損率大(超過10%)以及海水活魚運輸難等問題[1-2],大大制約了活魚銷售市場的發(fā)展。
目前魚類運輸方式分為有水運輸和無水運輸。有水運輸主要通過增加水中溶氧量、適當降低水溫、改變鹽度和輔助麻醉等方式提高運輸量和存活率[3-5]。無水運輸是一種新型的活魚運輸方法,首先通過物理或化學方法使魚類進入休眠狀態(tài),然后在無水或霧態(tài)狀態(tài)下進行運輸[6-8]。而無論有水或無水運輸都存在一定的缺陷,有水運輸由于設(shè)備配置和包裝方式等原因出現(xiàn)缺氧、水質(zhì)惡化以及晃動引起魚體受損,因此較適宜中短途運輸;無水運輸物理誘導休眠法技術(shù)不成熟且成本相對較高,而化學法主要通過麻醉劑誘導,市售前需進行休藥且存在一定安全風險。因此,開發(fā)新的魚類保活運輸方法,確保其在運輸和銷售過程中的保活、食用安全,是實現(xiàn)漁業(yè)現(xiàn)代化亟待解決的問題。本文綜述了國內(nèi)外主要應用的運輸方法,分析總結(jié)了影響魚類?;钸\輸質(zhì)量的主要因素、產(chǎn)生的應激反應及其研究方法。
高密度、低死亡率的魚類運輸方法,一直是魚類?;钛芯康闹攸c和難點,目前國內(nèi)外魚類保活運輸?shù)闹饕椒ㄓ袃羲?、增氧法、降溫法和麻醉法?/p>
水質(zhì)是魚類有水?;钸\輸中的關(guān)鍵,魚類的呼吸代謝使水質(zhì)逐漸惡化,如不及時采取措施會導致魚類大量死亡。運輸時可在箱體底部覆蓋適量的膨脹珍珠巖或活性炭可吸附魚類代謝產(chǎn)生的廢物以凈化水質(zhì)。此外,在一些觀賞魚的運輸中可以嘗試使用硝化細菌以降解水質(zhì)中有毒氨類物質(zhì),Dhanasiri等[9]在斑馬魚的運輸中嘗試使用硝化細菌能夠有效地降低氨類毒素提高水質(zhì),產(chǎn)品的存活率高達100%。
增氧法是目前最常用、便捷的魚類商業(yè)運輸方法,其主要存在的形式有2種:曝氣和包裝充氧。曝氣是有水運輸中常用增氧措施,既能維持水中溶氧量,又可降低CO2濃度。目前常用的曝氣方式主要有:壓縮氣態(tài)氧、液態(tài)氧、攪拌器和供氧機等,運輸時根據(jù)距離、時間選擇曝氣方式,如中短途可選用壓縮氣態(tài)氧和液態(tài)氧、高密度長時間的運輸可將將供氧機和攪拌器結(jié)合使用[10]。包裝充氧的使用可追溯到20世紀50年代,首次使用于觀賞魚的運輸[11],后來逐漸發(fā)展成熟,其主要過程是在排盡空氣的包裝袋中加入適量的水和活魚,充滿氧氣后封口運輸。運輸時為防止包裝袋破損,袋外常用泡沫箱保護。
低溫狀態(tài)下魚類呼吸和代謝速率緩慢,從而提高運輸存活率。當溫度降低到某一點時魚類會出現(xiàn)休眠狀態(tài),生命活動達到最低,此時可對其進行無水?;钸\輸。在無水?;顣r需要合適的降溫速率和時間,避免溫度大幅變化導致的魚類細胞功能紊亂。白艷龍等[7]研究發(fā)現(xiàn),黃顙魚在2℃純氧狀態(tài)下可無水?;?4 h。Zeng等[12]研究發(fā)現(xiàn),鯽魚以1℃/h速率降溫可以保護乳酸脫氫酶和異檸檬酸脫氫酶的活性,無水保活時間可達到24 h。戴志遠等[13]研究表明,活紫貽用真空包裝并置于4℃保藏可以存活9 d。劉偉東[14]研究表明,在3℃條件下大菱鲆無水?;?0 h,存活率達95%。
魚類運輸常使用化學麻醉劑降低其呼吸和代謝強度,抑制其中樞神經(jīng)以緩解操作刺激引起的應激反應,減少對魚的損傷,提高運輸質(zhì)量。鮮活水產(chǎn)品運輸中常用的麻醉劑有間氨基苯甲酸乙酯甲磺酸鹽(MS-222)、丁香酚和CO2。美國允許在食用魚中使用的麻醉劑只有MS-222,且休藥21 d后才允許在市場上銷售[15]。Pramod 等[16]研究得出,MS-222 能有效減緩運輸中紫紅鯽的應激反應,提高運輸存活率減少經(jīng)濟損失。丁香酚因高效、安全、成本低等優(yōu)點成為水產(chǎn)品新型運輸麻醉劑。陳德芳等[17]研究表明,丁香酚可作為鯽魚的一種安全有效的麻醉劑。Velí?ek 等[18]研究表明,30 mg/L 丁香酚對鯰魚有明顯的鎮(zhèn)靜效果且無副作用。Hegyi等[19]研究顯示,虹鱒魚有水運輸中使用丁香酚后,其血糖濃度和皮質(zhì)醇含量明顯下降。Mi等[6]研究發(fā)現(xiàn),鯽魚經(jīng)過丁香酚麻醉,在8℃無水?;顣r間可達38 h,且肌肉質(zhì)量沒有改變,恢復后所有的應激反應也隨之消失。CO2達到一定濃度時對水產(chǎn)品也有麻醉效果,與其他麻醉劑相比優(yōu)點在于不需要休藥期。張恒等[8]研究發(fā)現(xiàn),在10℃、CO2濃度為700 mg/L時,鯽魚無水?;顣r間可達15 h。
目前對于魚類有水運輸?shù)难芯窟€不夠系統(tǒng),通常只考慮2或3個影響因素進行優(yōu)化運輸方法,尤其針對不同魚種在不同運輸條件下的禁食時間研究甚少,對不不同季節(jié)的魚類運輸研究報道也較少。因此,綜合考察各因素對魚類生理的影響,進而優(yōu)化得到有水運輸方法對于保證運輸后產(chǎn)品質(zhì)量和食用安全有重要意義。無水運輸作為一種新型的魚類活體運輸方式,其具有低成本、低損耗等優(yōu)點,成為今后魚類運輸?shù)陌l(fā)展趨勢。
魚類生命活動會極大地受周圍環(huán)境的影響,因此魚類?;钸\輸?shù)年P(guān)鍵是使魚適應運輸環(huán)境或盡量延緩運輸環(huán)境的惡化,以達到提高運輸質(zhì)量目的。而影響魚類保活運輸質(zhì)量的因素是多方面的,且互相聯(lián)系、互相影響,它們主要包括:魚體體質(zhì)、暫養(yǎng)、水質(zhì)和外力脅迫等[20-21]。
不同種類的魚生活習性各異,對環(huán)境耐受程度也不同,如黑魚能適應少水缺氧環(huán)境具有耐運輸?shù)奶攸c,鯉魚較鰱魚在運輸中不易受到驚嚇因此可減少物理損傷[22]。即使同種魚類也有苗體、幼體、新體和成體之分,相同運輸量下耗氧量也不同,運輸時應根據(jù)不同生長時期的魚類制定適宜的運輸方案。運輸存活率也由魚類自身健康狀況決定,待運鮮活魚類應盡量選擇體表無損傷、體質(zhì)健壯、無病有活力的個體[23]。
人工養(yǎng)殖或捕撈的魚不宜直接運輸,需進行一段時間的停餌暫養(yǎng),一方面降低運輸過程中魚類呼吸代謝延緩水質(zhì)惡化,另一方面可減少捕撈導致的應激反應,達到提高運輸質(zhì)量的目的。有研究表明,日本竹莢魚在捕撈后經(jīng)過8 d左右的停餌蓄養(yǎng)可顯著增加運輸存活率[24]。暫養(yǎng)環(huán)境條件主要由產(chǎn)品品種、運輸方法決定,如淡水魚類暫養(yǎng)最佳密度在20~45 kg/m3,時間一般為2 d[23],而低溫運輸可在暫養(yǎng)期對魚類提前進行低溫馴化,使其逐漸適應低溫環(huán)境,減少溫度驟變帶來的有害應激。
魚類為變溫動物,其生理狀況受環(huán)境溫度的影響。每種水生生物都有相應的生存溫度帶和最佳生存溫度,當超出生存溫度范圍時,生物體會出現(xiàn)一系列的不良反應,導致機體免疫力低下甚至死亡[25];而在生存溫度范圍內(nèi),隨著溫度的降低,魚類的呼吸代謝緩慢,耗氧量減少,CO2和氨類等代謝物產(chǎn)量降低,因此在活魚運輸過程中常采用降溫措施以提高運輸效率。研究表明運輸水溫適當降低10℃,多數(shù)水產(chǎn)品的耗氧量和氨類物質(zhì)產(chǎn)量降低50%[3]。Golombieski等[26]研究發(fā)現(xiàn),在15℃條件下運輸銀鯰魚的存活率明顯高于20℃和25℃下的。
水不僅是魚類進行氣體和離子交換的媒介,也是其代謝廢物的稀釋劑,優(yōu)質(zhì)水是維持水生生物健康生存的必須條件。
(1)水的來源。運輸用水的來源可以分為:養(yǎng)殖水、地表水、地下水和自來水。其中養(yǎng)殖水營養(yǎng)物質(zhì)過多不宜用于運輸;地表水包括江、湖和海水等,其擁有良好的含氧量且CO2和N2也不高,但會增加養(yǎng)殖魚類感染致病菌和毒素幾率,因此適應于在此水域捕撈的魚類運輸;地下水溶氧量較低而CO2和N2偏高,可能還有H2S和Fe2+;自來水中含有氯氣對魚類體表和呼吸有一定危害[27]。因此運輸時根據(jù)魚的來源選擇水源,并進行一定的處理,如地下水或自來水作為暫養(yǎng)和運輸用水應提前進行曝氣、日照等處理。
(2)鹽度。魚類生活的水環(huán)境常與體液是不等滲的,海水魚的體液滲透濃度低于它們生活的海水,而淡水魚的體液比介質(zhì)的滲透濃度高,所以對于魚類來說滲透調(diào)節(jié)非常重要,魚體內(nèi)滲透調(diào)節(jié)失衡可引起機體功能紊亂,嚴重的甚至導致其死亡。由于淡水魚的高滲特性,在運輸過程中比海水魚更易出現(xiàn)滲透調(diào)節(jié)失衡,因此常在運輸水體中添加食鹽(NaCl)。研究發(fā)現(xiàn)鯉魚使用含9 g/L NaCl的水運輸可明顯提高運輸存活率[28],大量研究表明,在運輸水中適當添加鹽有利于淡水魚運輸[29-30];但 Gomes等[31]研究發(fā)現(xiàn),巨舌滑魚幼魚在塑料袋包裝運輸時添加NaCl不僅沒有減少應激還導致滲透壓調(diào)節(jié)障礙。因此淡水魚運輸時應根據(jù)實際情況添加鹽。
(3)溶氧量。水生動物主要以水為媒介呼吸代謝消耗O2,因此水中溶氧量對魚類運輸起關(guān)鍵作用。水中的溶解氣體與空氣達到平衡時出現(xiàn)飽和狀態(tài),當溶解氣體大于平衡濃度時出現(xiàn)過飽和,魚在過飽和水中易得氣泡?。?2]。有研究表明,魚在氧飽和度達到200%的水中運輸時不會導致氣泡病,但鰓蓋活動頻率會降低,易造成血液中CO2含量升高,影響魚的正常生理狀態(tài),因此運輸?shù)淖罴讶苎趿繎S持在或接近完全飽和[33]。隨運輸時間延長水中的溶氧量會不斷減少,CO2含量會不斷增加,當CO2濃度達到一定程度時,魚自身排出CO2量會降低,引起高碳酸血癥和酸中毒,嚴重時導致其昏厥甚至死亡[27]。因此可根據(jù)運輸時長采取適當降溫、曝氣等措施。
(4)氨氮物質(zhì)。魚在長時間運輸過程中,排泄物及黏液等不能及時凈化會造成水體渾濁,這些有毒物質(zhì)不僅使魚出現(xiàn)氨中毒,形成的懸濁物還會附著于魚的鰓部,造成魚體攝氧困難[21,28]。因此在遠距離運輸時可考慮中途換水或使用過濾裝置延緩水質(zhì)惡化。
魚類在運輸過程中還受一些外界脅迫如捕撈、搬運、噪音和顛簸的影響。López等[34]研究表明,虹鱒魚經(jīng)過5 min搬運,其體內(nèi)激素水平會升高并影響肝臟內(nèi)糖原和脂類生成,而要恢復正常水平至少需要8 h。Wysocki等[35]將歐洲鱸魚和鯉魚置于噪音環(huán)境中,經(jīng)檢測發(fā)現(xiàn)其皮質(zhì)醇急驟升高。運輸密度也是制約活魚運輸效率的重要因素。在有限的水質(zhì)條件下,高密度運輸?shù)暮难蹩旌痛罅緾O2生成會導致魚類缺氧,且鱗片和黏液的物理磨損會使魚免疫力下降而引起疾?。?6-37],因此一定要慎重選擇活魚運輸?shù)拿芏取?/p>
魚類運輸過程中環(huán)境的不斷變化如水質(zhì)惡化、溫度波動及機械振動等,會引起魚類的應激反應[4,21]。應激反應是生物體適應生存環(huán)境得以生存和發(fā)展的基礎(chǔ)。適度應激能提高魚類對環(huán)境的適應能力;而過度應激會導致機體行為和生理功能的紊亂。魚類在運輸過程首先會產(chǎn)生游動方式、呼吸頻率等行為變化,然后其生理產(chǎn)生相應變化。
魚類在運輸過程中受到搬運和晃動會出現(xiàn)跳躍、躲避、側(cè)翻等行為,容易產(chǎn)生機體損傷或呼吸困難。通過觀察水生生物的行為變化可從側(cè)面反映一定的應激程度[38]。然而,Nomura 等[39]通過水下錄像觀察大西洋小鮭魚在運輸船中的行為變化,發(fā)現(xiàn)魚類游動基本正常、偶爾出現(xiàn)回避行為,而血液中皮質(zhì)醇含量明顯增加,表明行為反應與血液指標反映的生理變化不一定存在正相關(guān)。Van等[40]以逃跑行為、呼吸頻率建立行為反應參數(shù),研究發(fā)現(xiàn)能在低氧環(huán)境及恢復過程中存活的虹鱒魚較為安靜,而死亡的虹鱒魚在死前會產(chǎn)生劇烈的躲避和掙扎,并且體內(nèi)皮質(zhì)醇和兒茶酚胺的含量明顯升高。
魚類的生理應激反應主要分為3個階段:首先是由下丘腦-垂體-腎上腺和腎上腺髓質(zhì)組織構(gòu)成的神經(jīng)內(nèi)分泌系統(tǒng)的變化,體內(nèi)釋放激素;其次,由上一階段釋放的激素引起滲透壓平衡、能量代謝和免疫系統(tǒng)的改變;最后是魚類適應刺激,其生理機能恢復正常,或無法適應應激源出現(xiàn)生長速率、繁殖能力和免疫能力降低等變化[41-43]。魚類生理應激研究常用的量化指標主要有血液生理生化、氧化應激和免疫學等。
(1)血液生理生化指標。研究魚類血液可以了解其在逆境條件下血液成分的變化,分析引起這些變化的因素,進而了解魚類保活運輸?shù)臋C制。魚類的血液成分會受到運輸過程中的捕撈、搬運、缺氧以及水質(zhì)惡化的影響[34-35,43]。在魚類應激檢測與評價中應用最多、研究最深的血液指標是皮質(zhì)醇激素,其有高穩(wěn)定性且變化程度同應激源的強度和持續(xù)時間呈正相關(guān)[44],使其成為評價應激反應的首要指標。彭士明等[45]以血液中皮質(zhì)醇含量評價運輸密度對銀鯧幼魚的影響。血糖含量能反映能量代謝的變化,血糖變化時效較皮質(zhì)醇慢且易被測定[46],因此血糖也被廣泛用于監(jiān)測魚類應激反應代謝變化,如鯽魚在適應低溫無水環(huán)境時血糖濃度明顯下降[12]。此外,血細胞總數(shù)、血淋巴蛋白濃度、乳酸、脂類以及一些酶類的變化,某種程度也反映應激過程中水產(chǎn)品生理功能的變化情況,常作為評價水產(chǎn)品應激狀況的輔助指標[21-12]。
(2)氧化應激指標?;钚匝?reactive oxygen species,ROS)對維持細胞活性起關(guān)鍵作用,但魚類在缺氧、高溫和惡劣的水環(huán)境下產(chǎn)生的大量ROS則因不能有效地分解,而使細胞產(chǎn)生損傷,導致氧化應激反應[47]。氧化應激是研究魚類應激反應的重要分支,對于魚類運輸導致氧化應激的研究興起較晚,但發(fā)展比較快。目前氧化應激主要以丙二醛、酶抗氧化系統(tǒng)及相關(guān)酶的基因表達(如超氧化物歧化酶、過氧化氫酶)、非酶抗氧化系統(tǒng)(如谷胱甘肽)等作為量化指標,它能較好地反映魚類氧化應激反應狀況[48]。此外,細胞中ROS的積聚也是引起熱休克現(xiàn)象的重要因素,會增加應激蛋白(heatshock protein,HSPs)的表達,而HSPs可以激活超氧化物歧化酶、過氧化氫酶等,同時可以抑制線粒體膜的去極化以減緩細胞的損傷[49]。HSPs還是細胞蛋白質(zhì)和脂類代謝的伴侶分子,一定程度上反映了魚體抵御不良刺激的能力,在這方面的研究主要以 HSP90、HSP70為主[50]。
(3)免疫學指標。應激反應導致的機體免疫能力的改變是因為細胞因子和激素的互相調(diào)控。研究人員已通過白細胞數(shù)目、溶菌酶活性、白細胞介素、腫瘤壞死因子和吞噬細胞的呼吸爆發(fā)等免疫學指標對不同刺激下魚類的免疫功能變化進行了大量研究[51-52]。這方面研究對揭示活魚運輸過程中免疫系統(tǒng)與疾病之間調(diào)控及損傷機制方面有重要作用。
研究魚類運輸過程中應激的發(fā)生及危害,并進行及時有效地監(jiān)測,從而探索相應的緩解措施,對優(yōu)化運輸方法、提高運輸質(zhì)量等方面具有重要意義。
目前魚類?;钸\輸亟待解決的問題和研究方向包括:
(1)目前魚類應激反應的監(jiān)測技術(shù)與方法主要以生理反應為主,但采樣過程中的捕撈、搬運、麻醉等措施會對魚體造成額外的刺激,為更真實、客觀地反映魚類運輸過程中應激狀況,可通過諸如行為、形態(tài)變化結(jié)合生理應激建立易于直接觀察臨床癥狀的一套便捷、實用的監(jiān)測方法。
(2)無水運輸是通過降低溫度或使用麻醉劑使魚類進入休眠狀態(tài),然后在較低溫度的無水或霧態(tài)狀態(tài)下進行運輸,然而不同魚種休眠所需要的溫度和麻醉劑量不同,即使相同魚種不同季節(jié)所耐受的低溫和麻醉劑量也不同。因此,為保證無水運輸質(zhì)量,需對不同魚種在不同季節(jié)的低溫休眠溫度、最佳降溫速率、最適麻醉劑量以及相應的包裝方式進行研究。此外,目前魚類運輸所用的麻醉劑都存在一定缺陷,如需要休藥恢復或成本高,可通過研究我國傳統(tǒng)醫(yī)學中具有鎮(zhèn)靜效果的草藥,比如酸棗仁、薄荷等開發(fā)新型安全、高效的麻醉劑。
(3)魚類無水?;罴夹g(shù)的研究相對較多,而針對無水保活機制的研究甚少,除利用血液、氧化應激和免疫學等指標反映以外,還可利用蛋白質(zhì)組學、代謝組學以及基因組學等技術(shù)進行深入研究,篩選出無水保活相關(guān)的標志物。
[1] 吳慧曼.淡水活魚現(xiàn)代流通的裝備技術(shù)集成與模式優(yōu)化研究[D].北京:中國農(nóng)業(yè)大學,2014:1-2.
[2] 朱健康.活海鮮流通產(chǎn)業(yè)化的運輸方法和技術(shù)[J].福建水產(chǎn),2007,6(2):54-57.
[3] Iwama G W,Pickering A D,Sumpter J P,et al.Fish Stress and Health in Aquaculture[M].London:Cambridge University Press,2011:35-72.
[4] Heery K.Fish transport in the aquaculture sector:An overview of the road transport of Atlantic salmon in Tasmania[J].Journal of Veterinary Behavior:Clinical Applications and Research,2009,4:163-168.
[5] Topic P N,Strunjak P I,Coz R R,et al.Tricaine methanesulfonate(MS-222)application in fish anaesthesia[J].Journal of Applied Ichthyology,2012,28(4):553-564.
[6] Mi H,Qian C,Mao L.Quality and biochemical properties of artificially hibernated crucian carp for waterless preservation[J].Fish Physiology and Biochemistry,2012,38(6):1721-1728.
[7] 白艷龍,譚昭儀,邸向乾,等.黃顙魚無水保活技術(shù)研究[J].食品工業(yè)科技,2013,34(1):334-337.
[8] 張恒,汪玉祥,冒森莉,等.淡水魚碳酸休眠法無水保活運輸技術(shù)[J].水產(chǎn)科技情報,2008,35(5):236-240.
[9] Dhanasiri A K S,Kiron V,F(xiàn)ernandes J M O,et al.Novel application of nitrifying bacterial consortia to ease ammonia toxicity in ornamental fish transport units:trials with zebrafish[J].Journal of Applied Microbiology,2011,111(2):278-292.
[10] Harmon T S.Methods for reducing stressors and maintaining water quality associated with live fish transport in tanks:a review of the basics[J].Reviews in Aquaculture,2009,1(1):58-66.
[11] Lim L C,Dhert P,Sorgeloos P.Recent developments and improvements in ornamental fish packaging systems for air transport[J].Aquaculture Research,2003,34(11):923-935.
[12] Zeng P,Chen T,Shen J.Effects of cold acclimation and storage temperature on crucian carp(Carassius auratus gibelio)in a waterless preservation[J].Fish Physiology and Biochemistry,2013,12:1-10.
[13] 戴志遠,張燕平,張虹,等.紫貽貝低溫無水?;钸^程中的生化變化[J].中國食品學報,2004,4(3):16-19.
[14] 劉偉東.大菱鲆(Scophthalmus maximus)?;畹幕A(chǔ)研究[D].青島:中國海洋大學,2009:30-43.
[15] Schnick R R.Zero withdrawal anesthetic for all finfish and shellfish:need and candidates[J].Fisheries,2006,31(3):122-126.
[16] Pramod P K,Ramachandran A,Sajeevan T P,et al.Comparative efficacy of MS‐222 and benzocaine as anaesthetics under simulated transport conditions of a tropical ornamental fish Puntius filamentosus(Valenciennes)[J].Aquaculture Research,2010,41(2):309-314.
[17] 陳德芳,汪開毓,肖丹,等.丁香酚對鯽魚麻醉效果的研究[J].水產(chǎn)科技情報,2010,37(6):288-291.
[18] Velí?ek J,W?asow T,Gomulka P,et al.Effects of clove oil anaesthesia on European catfish(Silurus glanis L.)[J].Acta veterinaria Brno,2006,75(1):99-106.
[19] Hegyi A,Urbányi B,Kovács M,et al.Investigation of potential stress parameters in rainbow trout(Oncorhynchus mykiss)[J].Acta Biologica Hungarica,2010,61(1):24-32.
[20] 米紅波,侯曉榮,茅林春.魚蝦類保活運輸?shù)难芯颗c應用進展[J].食品科學,2013,34(13):365-369.
[21] Fotedar S,Evans L.Health management during handling and live transport of crustaceans:a review[J].Journal of Invertebrate Pathology,2011,106(1):143-152.
[22] 閻太平,劉亞東.提高活魚運輸成活率的方法與措施[J].現(xiàn)代農(nóng)業(yè),2006(5):54-56.
[23] GB/T 27638-2011.活魚運輸技術(shù)規(guī)范[S].
[24] Tanaka R,F(xiàn)ukushima H,Maeda T,et al.Effect of shortterm holding without feeding after capture on reduction in oxidative stress and maintenance of lipid and amino acid contents in Decapterus maraudsi[J].North American Journal of Aquaculture,2013,75(4):562-571.
[25] Vinagre C,Madeira D,Narciso L,et al.Effect of temperature on oxidative stress in fish:Lipid peroxidation and catalase activity in the muscle of juvenile seabass(Dicentrarchus labrax)[J].Ecological Indicators,2012,23:274-279.
[26] Golombieski J I,Silva L V F,Baldisserotto B,et al.Transport of silver catfish(Rhamdia quelen)fingerlings at different times,load densities,and temperatures[J].Aquaculture,2003,216(1):95-102.
[27] Portz D E,Woodley C M,Cech J J.Stress-associated impacts of short-term holding on fishes[J].Reviews in Fish Biology and Fisheries,2006,16(2):125-170.
[28] Islam M N,Hossain M A.Mortality rate of fish seeds(Labeo rohita)during traditional transportation system in the northwest bangladesh[J].Journal of Scientific Research,2013,5(2):383-392.
[29] Cech J J,Bartholow S D,Young P S.Hopkins TE Striped bass exercise and handling stress in freshwater:physiological responses to recovery environment[J].Transactions of the American Fisheries Society,1996,125(2):308-320.
[30] Swanson C,Mager RC,Doroshov I.Use of salts,anesthetics,and polymers to minimize handling and transport mortality in delta smelt[J].Transactions of the American Fisheries Society,1996,125(2):326-329.
[31] Gomes L C,Edsandra C C,Richard P B,et al.Use of salt during transportation of air breathing pirarucu juveniles(Arapaima gigas)in plastic bags[J].Aquaculture,2006,256(1):521-528.
[32] Noga E J.Fish Disease:Diagnosis and Treatment[M].Hoboken:John Wiley & Sons,2010:107-108.
[33] Harmon T S.Methods for reducing stressors and maintaining water quality associated with live fish transport in tanks:a review of the basics[J].Reviews in Aquaculture,2009,1(1):58-66.
[34] López P M A,Hernández P J,Gesto M,et al.Short-term time course of liver metabolic response to acute handling stress in rainbow trout(Oncorhynchus mykiss)[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Molecular&Integrative Physiology,2014,168:40-49.
[35] Wysocki L E,Dittami J P,Ladich F.Ship noise and cortisol secretion in European freshwater fishes[J].Biological Conservation,2006,128(4):501-508.
[36] Ruane N M,Komen H.Measuring cortisol in the water as an indicator of stress caused by increased loading density in common carp(Cyprinus carpio)[J].Aquaculture,2003,218(1):685-693.
[37] Braun N,Nu?er A P O.Stress in Pimelodus maculatus(Siluriformes:Pimelodidae)at different densities and times in a simulated transport[J].Zoologia(Curitiba),2014,31(1):101-104.
[38] Huntingford F A,Adams C,Braithwaite V A,et al.Current issues in fish welfare[J].Journal of fish biology,2006,68(2):332-372.
[39] Nomura M,Sloman K A,Von K,et al.Physiology and behaviour of Atlantic salmon smolts during commercial land and sea transport[J].Physiology & Behavior,2009,96(2):233-243.
[40] Van R M,Pit D S S,Balm P H M,et al.Behavioral strategy and the physiological stress response in rainbow trout exposed to severe hypoxia[J].Hormones and Behavior,1996,30(1):85-92.
[41] Barton B A.Stress in fishes:a diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteroids[J].Integrative and Comparative Biology,2002,42(3):517-525.
[42] 趙建華,楊德國,陳建武,等.魚類應激生物學研究與應用[J].生命科學,2011,23(4):394-401.
[43] Anusha K D,Jorge M F,Viswanath K.Acclimation of zebrafish to transport stress[J].Zebrafish,2013,10(1):87-98.
[44] Fanouraki E,Mylonas C C,Papandroulakis N,et al.Species specificity in the magnitude and duration of the acute stress response in Mediterranean marine fish in culture[J].General and Comparative Endocrinology,2011,173(2):313-322.
[45] 彭士明,施兆鴻,李杰,等.運輸脅迫對銀鯧血清皮質(zhì)醇、血糖、組織中糖元及乳酸含量的影響[J].水產(chǎn)學報,2011,6(35):831-837.
[46] Lays N,Iversen M M T,F(xiàn)rantzen M,et al.Physiological stress responses in spotted wolffish(Anarhichas minor)subjected to acute disturbance and progressive hypoxia[J].Aquaculture,2009,295(1):126-133.
[47] Paital B.Antioxidant and oxidative stress parameters in brain of Heteropneustes fossilis under air exposure condition;role of mitochondrial electron transport chain[J].Ecotoxicology and Environmental Safety,2013,95:69-77.
[48] Olsvik P A,Kristensen T,Waagb? R,et al.mRNA expression of antioxidant enzymes(SOD,CAT and GSH-Px)and lipid peroxidative stress in liver of Atlantic salmon(Salmo salar)exposed to hyperoxic water during smoltification[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part C:Toxicology & Pharmacology,2005,141(3):314-323.
[49] Madeira D,Narciso L,Cabral H N,et al.Influence of temperature in thermal and oxidative stress responses in estuarine fish[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Molecular & Integrative Physiology,2013,166(2):237-243.
[50] Roberts R J,Agius C,Saliba C,et al.Heat shock proteins(chaperones)in fish and shellfish and their potential role in relation to fish health:a review[J].Journal of Fish Diseases,2010,33(10):789-801.
[51] Costas B,Concei?ao L E C,Aragao C,et al.Physiological responses of Senegalese sole(Solea senegalensis Kaup,1858)after stress challenge:Effects on non-specific immune parameters,plasma free amino acids and energy metabolism[J].Aquaculture,2011,316(1):68-76.
[52] ZHANG Y Y,LIU B,GE X P,et al.The influence of various feeding patterns of emodin on growth,non-specific immune responses,and disease resistance to Aeromonas hydrophila in juvenile Wuchang bream(Megalobrama amblycephala)[J].Fish & Shellfish Immunology,2014,36(1):187-193.