陳達菊 曾瑞珍 楊青 朱漢勇 陳顯梅 梁計南 張志勝
摘 ?要 ?從建蘭與寒蘭雜交后代的根狀莖、試管苗和根狀莖薄層均誘導出試管花,誘導率分別為61.67%、80.00%和16.67%。對根狀莖、試管苗和根狀莖薄層試管花形成過程的形態(tài)學觀察結果顯示,試管花的形成和發(fā)育過程可分為花芽誘導期,花芽形態(tài)建成期,開花期,謝花期4個時期。以試管苗為材料的試管花形態(tài)建成所需的時間最短,根狀莖次之,根狀莖薄層所需的時間最長。細胞學觀察結果顯示,根狀莖試管花起源于皮層,其形態(tài)建成過程可分為花序原基形成期、花序原基分化期、小花原基形成期和小花原基分化期4個時期。
關鍵詞 ?蘭花;試管花;試管苗;根狀莖;薄層;細胞學觀察
中圖分類號 ?S682.31 ? ? ? ? ?文獻標識碼 ?A
Morphological and Cytological Observation on Formation of
Hybrid Offspring of Cymbidium ensifolium and
C. karan Test-tube Flower
CHEN Daju1, 2, ZENG Ruizhen2, YANG Qing1, ZHU Hanyong1,
CHEN Xianmei1, LIANG Jinan2, ZHANG Zhisheng2 *
1 Institute of Biotechnology, Wenshan Academy of Agricultural Sciences, Wenshan, Yunnan 663000, China
2 Guangdong Provincial Key Laboratory of Plant Molecular Breeding, South China Agricultural University,
Guangzhou, Guangdong 510642, China
Abstract ?Test-tube flowers were induced from rhizomes, plantlets and thin-cell layers of rhizomes of hybrid offspring of Cymbidium ensifolium and C. karan, the induction rates were 61.67%, 80.00% and 16.67%.. Forming process of in vitro flowering of rhizomes, plantlets and thin-cell layers of rhizomes were observed and the process could be divided into 4 stages: flower-bud induction, flower-bud development, flowering period, and inflorescences shed. The morphogenesis time of test-tube flower was the shortest by using of plantlets in vitro as materials, following by rhizomes, and the longest appeared in using thin-cell layers of rhizomes as material. Test-tube flower of rhizomes originated from cortex, and its formation and development could be divided into 4 stages: formation of inflorescence primordium, differentiation of inflorescence primordium, formation of floret primordium, differentiation of floret primordium.
Key words ?Orchid; Test-tube flower; Test-tube seedling; Rhizome; Thin-cell layers; Cytological observation
doi ?10.3969/j.issn.1000-2561.2015.10.019
中國蘭花通常是指蘭屬(Cymbidium)蘭花中的一部分地生種,如春蘭、蕙蘭、建蘭、墨蘭和寒蘭等[1]。在溫室栽培條件下,這些蘭花從種子播種到開花至少需要5 a時間。因此研究這類蘭花提早開花的技術,對縮短育種周期,推動中國蘭花育種和產業(yè)發(fā)展具有重要的現(xiàn)實意義。
植物在離體培養(yǎng)過程中會發(fā)生開花現(xiàn)象,但通常頻率很低。本文將植物的器官、組織、細胞、中間繁殖體和試管苗等在離體培養(yǎng)條件下形成的花定義為試管花(test-tube flower)。1981年,王熊等[2]以建蘭[C. ensifolium(L.)SW.)]和[(C. ensifolium cv. ‘Qiulan)]為試驗材料,建立了快速無性繁殖系,并發(fā)現(xiàn)試管幼苗開花現(xiàn)象。1984年,王熊[3]報道秋蘭試管苗一年四季都有花蕾形成,從植株形成到花朵開放最短只需2個月。1988年又報道成功誘導素心建蘭的試管開花[4]。Zhang等[5]研究結果表明,3.3~10 μmol/L TDZ或10~33 μmol/L 2iP與1.5 μmol/L NAA結合能誘導建蘭的根狀莖形成早熟花,這些花形態(tài)正常,開花時間持續(xù)2周。鄭立明等[6]將春蘭×大花蕙蘭的一個株系的原球莖及幼苗接種在附加BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L的1/2 MS培養(yǎng)基上,2個月后形成肉眼可見的花蕾,1~2 cm幼苗的花芽形成率達19%。近年來,雖然許多學者對試管花做了很多研究,但目前對試管花形成和發(fā)育過程缺乏系統(tǒng)的研究,同時也未見到以根狀莖薄層誘導試管花的研究報道。
本研究以建蘭(小桃紅)×寒蘭的雜種根狀莖、根狀莖薄層和試管苗為材料,研究蘭花試管花誘導技術及其形成和發(fā)育過程,為建立高效試管花誘導技術體系,加速國蘭新品種選育和開展成花機理研究奠定基礎。
1 ?材料與方法
1.1 ?材料
將小桃紅×寒蘭的雜交種子接種到種子萌發(fā)培養(yǎng)基上誘導出根狀莖,繼代繁殖一定的數(shù)量后,將其中一部分進行苗分化,另一部分繼續(xù)進行繼代增殖。將繼代培養(yǎng)的根狀莖切成1 cm和1 mm薄層。以3 cm左右高的試管苗、1 cm根狀莖和1 mm根狀莖薄層為試驗材料進行試管花誘導。
1.2 ?方法
1.2.1 ?試管花的誘導 ? 由于薄層在誘導過程中容易壞死,根狀莖容易分化而生根試管苗分化較難,因此采用了不同培養(yǎng)基。將根狀莖接種到MS1+6-BA 10 mg/L+蔗糖5%+1.2%卡拉粉,根狀莖薄層接種到MS+TDZ 0.05 mg/L+6-BA 4 mg/L+5%Su+1.4%卡拉粉,試管苗接種到MS2+6-BA 8 mg/L+TDZ 0.05 mg/L+6% Su+1.2%卡拉粉培養(yǎng)基上于16~26 ℃,8 h光照,光照強度3~5 μmol/(m2·s)下培養(yǎng)。每天觀察和記錄材料的形態(tài)學變化,并在解剖鏡下拍照直到材料開花。
MS1:1/12N,15P,MS基本培養(yǎng)基其他成分不變,硝酸鉀增加,磷酸二氫鉀中磷增加到15倍,不含硝酸銨;MS12:1/4N,30P,NH4-N/NO3-N:1 ∶ 5,MS基本培養(yǎng)基其他成分不變,磷酸二氫鉀中的磷增加到30倍。
1.2.2 ?試管花形成和發(fā)育過程的細胞學觀察 ? 采用PEG包埋切片法[7]。
2 ?結果與分析
2.1 ?試管花的誘導
將根狀莖、根狀莖薄層和試管苗接種誘導培養(yǎng)基上進行試管花的誘導(表1)。研究結果表明,根狀莖、根狀莖薄層和試管苗均能誘導形成試管花,且誘導所需要的溫度和光照條件一致,適宜的溫度和光照條件均為溫度16~25 ℃變溫,光照度3~5 μmol/(m2·s)和每日8 h光照。但不同起始材料的最適誘導培養(yǎng)基和在該培養(yǎng)基的誘導率不同。根狀莖試管花的適宜誘導培養(yǎng)基為MS1+6-BA 10 mg/L+5% Su,誘導率為61.67%,根狀莖薄層試管花的適宜誘導培養(yǎng)為MS+TDZ 0.05 mg/L+6-BA 4 mg/L+4% Su,誘導率為16.67%,試管苗試管花的適宜誘導培養(yǎng)為MS12+6-BA 8 mg/L+TDZ 0.05 mg/L+6% Su,誘導率為80.00%,正常開花率為26.67%。
2.2 ?試管花形成過程的形態(tài)學觀察
2.2.1 ?根狀莖試管花的形成過程 ? 小桃紅×寒蘭根狀莖材料較細,深綠色(圖1-A),接入花芽誘導培養(yǎng)基上培養(yǎng)15 d后,部分根狀莖周圍開始出現(xiàn)白色突起(圖1-B),30 d左右芽長約0.5 cm,乳白色、芽尖紅色,每條根狀莖分化出1~2個芽(圖1-C),若芽呈乳白色,芽尖紅褐色,芽體晶瑩剔透,則可能是花芽。如果此時條件不適宜花芽發(fā)育,芽尖就壞死,無法分化形成花蕾或畸變。
培養(yǎng)50 d到60 d后花芽伸長,長出3-4個鞘包被著花序(圖1-D),這時可以確定分化出來的芽是花芽。培養(yǎng)90 d左右,苞片形成,小花可見,有些花序只有一朵花,而有些則有多朵花(圖1-E)。隨后小花繼續(xù)發(fā)育,100~120 d小花陸續(xù)開放(圖1-F,圖1-G),部分小花需要培養(yǎng)150 d或者更長的時間才開放(圖1-H),開花10 d左右顏色變淡,花干枯并開始凋謝。
2.2.2 ?試管苗試管花的形成過程 ? 將小桃紅×寒蘭的試管苗接入花芽誘導培養(yǎng)基上培養(yǎng)(圖2-A),30 d左右,莖尖分生組織由營養(yǎng)生長轉向生殖生長,形成淺綠色或白色的鞘和花芽;40 d左右分化出苞片和小花(圖2-B);隨后花序繼續(xù)伸長,花蕾繼續(xù)發(fā)育,50~60 d花蕾清楚可見,并開始向一側彎曲(圖2-C);80 d左右小花開放(圖2-D)。但大部分莖尖形成的花芽瘦弱且無法發(fā)育成為正?;ɑ蛘邿o法開花。
隨著莖尖分生組織分化花芽的進行,試管苗基部也開始膨大,形成假鱗莖(圖2-F)。當莖端的花芽發(fā)育到一定程度,假鱗莖上的腋芽開始分化形成花芽(圖2-E),當莖尖分化出的花芽壞死或花凋謝之后,側花芽迅速發(fā)育(圖2-F,2-G),培養(yǎng)100 d左右小花開放(圖2-H),大部分側花芽比莖尖花芽壯,能正常開花。培養(yǎng)至110 d左右,花凋謝(圖2-I)。試管花也可以從基部膨大而莖尖未分化花芽的試管苗的葉腋直接分化形成,每個葉腋都有可能分化出花芽,甚至從花序的鞘也能分化出花芽。但如果植株營養(yǎng)供應不足或條件不適宜時,花芽不能正常發(fā)育和開花。
2.2.3 ?根狀莖薄層試管花的形成過程 ? 將根狀莖切成薄層后接入培養(yǎng)基中培養(yǎng)(圖3-A),30 d左右,50%以上的根狀莖薄層死亡(圖3-B),存活的多為根狀莖頂端的薄層,其中大部分都能分化出錐形芽(圖3-B);40 d后花芽開始伸長,芽尖淺褐色,彎曲(圖3-C);80 d左右鞘分化形成,小花也開始分化形成(圖3-D);90 d左右花序進一步伸長(圖3-E),120 d左右,花序伸到最長,小花之間分開,含苞待放(圖3-F)。150 d左右開放(圖3-G,3-H),然后凋謝或壞死(圖3-I)。
2.3 ?根狀莖試管花形成過程的細胞學觀察
根狀莖是由單層細胞的表皮、皮層和中柱組成(圖4-A)。將根狀莖接入誘導培養(yǎng)基中10~15 d,皮層細胞開始分裂形成突起(圖4-B),隨后表皮細胞和皮層細胞分離,在突起的下方分化產生維管束組織,從而形成“T”結構(圖4-C)。此時為花序原基形成期。
隨著培養(yǎng)的進行,試管花分化進入花序原基分化期(圖4-D),此時鞘逐漸分化形成,生殖生長錐呈半球形,光滑,一直包在鞘中(圖4-E),培養(yǎng)60 d左右,鞘分化完成(圖4-F)。
苞葉原基的出現(xiàn)標志著試管花分化進入小花原基形成期,苞片原基的分化是從生長錐基部開始的,由于兩個苞片原基同時形成,他們和生長錐一起形成品字結構(圖4-F),隨著苞片的形成(圖4-G),生長錐逐漸變尖,上面出現(xiàn)突起,接著在苞片內側形成小花原基(圖4-H)。隨后小花原基不斷伸長,中部出現(xiàn)突起,形成小花的基本形狀結構(圖4-I),培養(yǎng)后80 d,小花分化結束。
根狀莖試管花形成過程的分期及其各期特征見表2。
3 ?討論與結論
蘭花離體開花的研究國內外已經有大量的報道[2-6,8-43]。蘭科中包括蘭屬中的部分種及雜交后代(建蘭[2,4]、寒蘭[16-17]、春蘭×大花蕙蘭[6]、春劍×大花蕙蘭[41]Cymbidium niveo-marginatum Mak.[8]),石斛蘭屬中的部分種或品種(如春石斛[18-21]、鐵皮石斛[19,22]、細莖石斛[23]、金釵石斛[24]、霍山石斛[25]、疊鞘石斛[26]、報春石斛[27]、Dendrobium Madame Thong-In[28-29]、Dendrobium Sonia17[30]、Dendrobium Chao Praya Smile[31]、Friederick's Dendrobium[32]等),文心蘭屬[9](Psygmorchis pusilla[33-34]),蝴蝶蘭屬[14] (Doritaenopsis and Phalaenopsis[32,38]),大花蕙蘭[6],石豆蘭屬[37],虎蛇蘭屬[39],美冠蘭屬[42],地寶蘭屬[43], 五唇蘭屬(Doritis pulcherrima)與尖囊蘭屬Kingiella philippinensis[13]等幾個屬及其屬間雜交種已經獲得了試管花。本研究結果表明,建蘭與寒蘭雜交后代的根狀莖、試管苗和根狀薄層也可以成功誘導形成試管花。
研究蘭花試管開花能大大縮短蘭花在試管外從苗期到成熟開花期的時間[36],滿足育種者提早對花部性狀選擇的需求。要通過誘導試管花來加速育種進程或者把試驗結果商品化,就需要誘導出正常的花,但目前有關正常開花率的研究還較少[23],并且大部分蘭花的試管花誘導率和正常開花率低下仍是蘭花試管開花技術應用的主要障礙。本試驗結果表明,建蘭小桃紅與寒蘭的雜交后代的切根試管苗、根狀莖、根狀莖薄層的試管花誘導率分別為80%、61.67%和16.67%,正常開花率分別為26.67%、12.50%和1.67%,說明不同材料正常開花率差異大。試驗中還發(fā)現(xiàn),誘導試管花需要一定的脅迫處理,過度脅迫常常導致花芽的畸形,因此針對根狀莖、試管苗、薄層的特點需采用適宜的培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件才可能獲得較高的正常開花率。
目前,對蘭花試管花形成過程的形態(tài)學觀察及其細胞學機理的研究報道較少[24,40],王琳[24]認為金釵石斛40 d有花原基出現(xiàn),隨后出現(xiàn)萼片原基,50 d有新月形的萼片,60 d有花瓣原基出現(xiàn),70 d形成花瓣。本實驗經過觀察蘭屬蘭花試管花的形成和發(fā)育過程,把蘭花試管花形態(tài)發(fā)生過程分為花芽誘導期、花芽形態(tài)建成期、開花期和謝花期4個時期,并根據(jù)根狀莖試管花的細胞學發(fā)生過程,將試管花形成過程分為花序原基形成期、花序原基分化期、小花原基形成期和小花原基分化期4個時期,這為根據(jù)不同時期的特點進行精細調控,進一步提高正常開花率,闡明試管花形成的分子機理奠定基礎。
參考文獻
[1] 盧思聰. 中國蘭與洋蘭[M]. 北京: 金盾出版社, 1994.
[2] 王 ?熊, 陳季楚, 劉桂云. 建蘭和秋蘭原球莖的發(fā)生及其無性系的建立[J]. 植物生理學報, 1981, 7(2): 203-207.
[3] 王 ?熊. 蘭花快速無性繁殖系的研究及花芽分化的探討[J]. 植物生理學報, 1984, 10(4): 391-396.
[4] 王 ?熊, 張菊野, 連宏坤, 等. 素心建蘭無性繁殖系的建立及其開花[J]. 園藝學報, 1988, 15(3): 205-208.
[5] Zhang C, Chang W C. Cytokinins promotion of flowering in Cymbidium ensifolium var. misericors in vitro[J]. Plant Growth Regulation, 2003, 39(3): 217-221.
[6] 鄭立明, 龐基良. 春蘭×大花蕙蘭雜種試管苗開花現(xiàn)象[J]. 植物生理與分子生物學學報, 2006, 32(3): 320-324.
[7] 朱洪亮, 劉向東, 盧永根, 等. 研究植物胚囊中微管的PEG切片法的改進[J]. 南農業(yè)大學學報, 2001, 22(4): 52-54.
[8] Kostenyuk I, Oh B J, So I S. Induction of early flowering in Cymbidium niveo-marginatum Mak in vitro[J]. Plant Cell Reports, 1999, 19(1): 1-5.
[9] Kerbauy G B. In vitro flowering of Oncidium varicosum mericlones(orchidaceae)[J]. Plant Science Letters, 1984, 35(1): 73-75.
[10] Paek K Y, Shim G B, Kim J J. Exploitation of temperate cymbidiums and establishment of a micropropagation system.Ⅰ.Asymbiotic germination temperate cymbidiums and the effect of media and growth regulators on organogenesis[J]. Journal of the Korean Society for Horticultural Science, 1989, 30(1): 74-80.
[11] Arditti J, Ernst R . Micropropagataion of orchids[M]. ?New York: Wiley, 1992.
[12] Wang G Y, Xu Z H, Chia T P, et al. In vitro flowering of orchid(Dendrobium candidum)[M].//You B. Biotechnology in agriculture. Amsterdam: Kluwer, 1993: 373-378.
[13] Duan J X, Yazawa S. In vitro floral development in Doriella Tiny(Doritis pulcherrima×Kingiella philippinensis)[J]. Sci Hort, 1994, 59: 253-264.
[14] Duan J X, Yazawa S. Floral induction and development in Phalaenopsis in vitro[J]. Plant Cell Tissue Organ Cult, 1995, 43: 71-74.
[15] Guek E S, Chiang S L, Chong J G. High frequency early in vitro flowering of Dendrobium Madame Thong-In(Orchidaceae)[J]. Plant Cell Reports, 2007, 26(4): 383-93.
[16] 朱國兵. 寒蘭快速繁殖技術及其試管成花的研究[D]. 南昌: 南昌大學, 2006.
[17] 陳達菊. 蘭花試管花的誘導及其發(fā)生機理的研究[D]. 廣州: 華南農業(yè)大學, 2006.
[18] 李 ?璐, 翁 ?浩, 賴鐘雄. 春石斛原球莖增殖與試管開花初步研究[C]//植物細胞與組織培養(yǎng)技術研究[M]. 北京: 中國科學技術出版社, 2009: 133-140.
[19] 李 ?璐. 石斛蘭試管開花及其分子機制研究[D]. 福州: 福建農林大學, 2010.
[20] Wang Z H, Wang L, Ye Q S. High frequency early flowering from in vitro seedlings of Dendrobium nobile[J]. Scientia Horticulturae, 2009, 122(2): 328-331.
[21] 張新平. 春石斛蘭組培增殖及蘭花試管開花研究[D]. 楊 ?凌: 西北農林科技大學, 2008.
[22] Wang G, Xu Z, Chia T F, et al. In vitro flowering of Dendrobium candidum[J]. Science in China Series C: Life Sciences, 1997, 40(1): 35-42.
[23] 王再花. 金釵石斛與細莖石斛試管開花研究[D]. 廣州: 華南師范大學, 2005.
[24] 王 ?琳. 金釵石斛試管開花研究[D]. 廣州: 華南師范大學, 2004.
[25] 陳肖英. 霍山石斛試管開花研究[D]. 廣州: 華南師范大學, 2003.
[26] 關 ?萍, 石建明. 疊鞘石斛莖段組織培養(yǎng)與花芽誘導[J]. 時珍國醫(yī)國藥, 2009, 20(1): 205-206.
[27] Deb R C, Sungkunlong. Rapid multiplication and induction of early in vitro flowering in Dendrobium primulinum Lindl[J]. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology, 2009, 18(2): 241-244
[28] Sim G E, Goh C J, Loh C S. Induction of in vitro flowering in Dendrobium Madame Thong-In(Orchidaceae)seedlings is associated with increase in endogenous N6-(Δ2-isopentenyl)-adenine(iP)and N6-(Δ2-isopentenyl)-adenosine(iPA)levels[J]. Plant Cell Reports, 2008, 27(8): 1 281-1 289.
[29] Sim G E, Loh C S, Goh C J. High frequency early in vitro flowering of Dendrobium Madame Thong-In(Orchidaceae)[J]. Plant Cell Rep, 2007(26): 383-393.
[30] Tee C S, Maziah M, Tan C S. Induction of in vitro flowering in the orchid Dendrobium Sonia 17[J]. Biologia Plantarum, 2008, 52(4): 723-726.
[31] Hee K H, Loh C S, Yeoh H H. Early in vitro flowering and seed production in culture in Dendrobium Chao Praya Smile (Orchidaceae)[J]. Plant Cell Reports, 2007, 26(12): 2 055-2 062.
[32] Te-chato S, Nujeen P, Muangsorn S. Paclobutrazol enhance bud break and flowering of Friederick's Dendrobium orchid in vitro[J]. Journal of Agricultural Technology, 2009, 5(1): 157-165.
[33] Vaz A P A, Kerbauy G B. Effects of mineral nutrients on in vitro growth and flower formation of Psygmorchis pusilla(Orchidaceae)[J]. Acta Hort(ISHS), 2000, 520: 149-156.
[34] Vaz A P A, Figueiredo-Ribeiro R d C L, Kerbauy G B. Photoperiod and temperature effects on in vitro growth and flowering of P.pusilla, an epiphytic orchid[J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2004, 42(5): 411-415.
[35] Blanchard M G, Runkle E S. Benzyladenine promotes flowering in Doritaenopsis and Phalaenopsis Orchids[J]. Journal of Plant Growth Regulation, 2008, 27(2): 141-150.
[36] Jaime A. Teixeira da S, Gilberto B K, et al. In vitro flowering of orchids[J]. Critical Reviews in Biotechnology, 2014, 34(1): 56-76.
[37] Than M M M, Pal A, Jha S. In Vitro flowering and propagation of Bulbophyllum auricomum Lindl. The Royal Flower of Myanmar[J]. Acta Hort (ISHS), 2009,28(9): 105-111.
[38] Blanchard M G, Runkle E S. Benzyladenine promotes flowering in Doritaenopsis and Phalaenopsis Orchids[J]. Journal of Plant Growth Regulation, 2008, 27(2): 141-150.
[39] Yagame T, Yamato M, Mii M, et al. Developmental processes of achlorophyllous orchid, Epipogium roseum: from seed germination to flowering under symbiotic cultivation with Mycorrhizal fungus[J]. Journal of Plant Research, 2007, 120(2): 229-236.
[40] 蔣新芳, 寒蘭試管成花的形態(tài)解剖學研究[D]. ?南昌: 南昌大學, 2007.
[41] 楊 ?旸. 國蘭(春劍×大花蕙蘭)試管內誘導開花的探索性研究[D]. 雅安: 四川農業(yè)大學, 2012.
[42] Chang Y Y, Kao N H, Li J Y, et al. Characterization of the possibleroles for B functional MADS box genes in regulation of perianth formation in orchid (Oncidium Gower Ramsey)[J]. Plant Physiol, 2010, 152: 837-853.
[43] Bhadra S K, Hossain M M. In vitro flowering in Geodorum densiflorum(Lam.)Schltr[J]. J Orchid Soc India, 2003, (17): 63-66.