張曉明 李文博
咸寧市中心醫(yī)院口腔科,咸寧 437100
聚癸二酸丙三醇酯(poly-glycerol sebacate,PGS)作為一種新型可生物降解的非線性三維網(wǎng)狀聚酯彈性體,于2002年由美國(guó)麻省理工大學(xué)Langer R研究組首次合成[1]。PGS具有優(yōu)良的生物相容性、力學(xué)性能和可降解性,在生物工程和生物醫(yī)藥材料領(lǐng)域得到了廣泛的運(yùn)用[2-5]。盡管線性聚酯材料,如聚乙交酯、聚丙交酯已經(jīng)應(yīng)用于硬組織的修復(fù)和再生[6-9],但由于其高彈性模量和不可塑性,無(wú)法用于受損組織器官的修復(fù)。非線性高分子彈性聚酯材料的制備和應(yīng)用研究得到了人們的密切關(guān)注,本文就其中具有代表性的PGS的靜電紡絲支架的制備和應(yīng)用研究進(jìn)行綜述。
支架材料在組織工程中扮演了一個(gè)重要角色,比如模擬細(xì)胞外基質(zhì),引導(dǎo)細(xì)胞黏附和繁殖,以及保持正常的組織形態(tài)[10]。與制孔技術(shù)、微成形剝脫技術(shù)[11-12]等制備組織工程支架材料的方法相比,靜電紡絲是一種方便簡(jiǎn)潔、成本低廉的技術(shù)。應(yīng)用靜電紡絲制備出的支架對(duì)細(xì)胞外基質(zhì)有較好的模擬并且結(jié)構(gòu)可控,具有超高的孔隙率和比表面積,而且能夠促進(jìn)細(xì)胞的黏附、生長(zhǎng)和分化,是當(dāng)今組織工程支架制備的熱門選擇。
作為一種新型的熱固性彈性體,PGS有許多優(yōu)點(diǎn),但也存在機(jī)械強(qiáng)度不足、初始降解速率較快等缺點(diǎn)[13-15]。人體不同組織結(jié)構(gòu)的細(xì)胞形態(tài)和大小差異巨大,如骨組織工程支架需100~250 μm的孔徑,而軟骨組織工程只需20~100 μm的孔徑。Lim等[16]也發(fā)現(xiàn)不同的靜電紡絲納米纖維復(fù)合體結(jié)構(gòu)可影響到人類骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的細(xì)胞重新編程。為了要滿足不同組織工程的需要,研究者多將PGS與其他物質(zhì)共紡,取長(zhǎng)補(bǔ)短,合理調(diào)控溶液濃度、溶劑性質(zhì)、電壓、接收距離以及溶液的濃度和流速,制備出機(jī)械性能和孔隙狀態(tài)等各項(xiàng)指標(biāo)都優(yōu)異的組織工程支架。
聚乳酸是一種被廣泛應(yīng)用于組織工程及其他生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域并且最早獲得了美國(guó)食品和藥物管理局(Food and Drug Administration,F(xiàn)DA)認(rèn)證的生物安全材料。PGS和左旋聚乳酸(poly-L-lactide,PLLA)兩種材料各有優(yōu)缺點(diǎn):PLLA雖然具有較高的機(jī)械強(qiáng)度,但因結(jié)構(gòu)中缺乏親水性基團(tuán)而嚴(yán)重地影響了其與細(xì)胞的親和性;PGS具有優(yōu)良的生物相容性和可紡性,但機(jī)械強(qiáng)度較差。采用PGS和PLLA共混進(jìn)行靜電紡絲,將兩種材料的優(yōu)點(diǎn)整合,通過(guò)PLLA使支架的力學(xué)性能提高,通過(guò)PGS使支架材料的模量降低,斷裂伸長(zhǎng)率提高,改善材料延展性及親水性能,從而獲得綜合性能優(yōu)異的支架材料。
PGS靜電紡絲支架已被廣泛應(yīng)用在心臟、血管、骨、神經(jīng)、角膜、皮膚和韌帶等組織工程的研究領(lǐng)域[17-20]。
心血管疾病是發(fā)達(dá)國(guó)家人民的主要死因[21],發(fā)病率居高不下的心肌梗死更使得心肌組織缺乏再生性,最終導(dǎo)致心力衰竭。雖然組織工程技術(shù)還沒(méi)有創(chuàng)造出與正常心臟組織完全一致的功能性人工心臟,但已經(jīng)在多方面取得了成績(jī)。
Ravichandran等[17]應(yīng)用同軸共紡技術(shù)制備出PGS短纖維,將其作為強(qiáng)心劑的藥物載體,其在同等情況下與PLLA支架相比,輔肌動(dòng)蛋白、肌鈣蛋白、肌球蛋白的重鏈和連接蛋白43表達(dá)更多。這表明,PGS短纖維所營(yíng)造的生物環(huán)境為功能性心肌組織再生創(chuàng)造了有利的條件。Park等[22]制備了帶有氣孔微體系結(jié)構(gòu)的多層次PGS支架,結(jié)合心肌細(xì)胞在不同大小的灌注壓下共培養(yǎng)。在220~290 kPa時(shí)表現(xiàn)出最大的拉伸強(qiáng)度,極限強(qiáng)度也比正常成年大鼠左心室心肌組織高出許多,細(xì)胞凋亡減少,連接蛋白-43、基質(zhì)金屬蛋白酶-2、肌鈣蛋白-1表達(dá)增多,表明帶有氣孔微體系結(jié)構(gòu)的多層次PGS支架能適應(yīng)一定的壓強(qiáng),表現(xiàn)出良好的力學(xué)性能和生物學(xué)性能,為心臟損傷后再修復(fù)提供了基礎(chǔ)支持。澳大利亞莫納什大學(xué)(Monash University)材料工程系制備的攜帶人類胚胎干細(xì)胞的PGS彈性體補(bǔ)丁,經(jīng)培養(yǎng)液預(yù)處理6 d,包裹明膠后,這種復(fù)合的PGS補(bǔ)丁被縫合在大鼠的左心室壁上,保持完整性時(shí)間超過(guò)2周,且沒(méi)有表現(xiàn)出對(duì)心臟的功能有任何的毒副作用[23]。這不僅表明,PGS是適宜人類胚胎干細(xì)胞(human embryonic stem cells,hESCs)生存再生的生物材料,而且這種心臟修復(fù)補(bǔ)丁具有良好的力學(xué)性能和活躍的植入收縮性。
人造血管攜帶生長(zhǎng)因子可以增強(qiáng)招募宿主細(xì)胞的能力,其中,基質(zhì)細(xì)胞衍生因子就是這種能誘導(dǎo)宿主細(xì)胞遷徙和黏附的生長(zhǎng)因子,這種能力卻因其較短的半衰期而受到限制。Sun等[24]合成了包含肝素和聚合陽(yáng)離子凝聚層的PGS支架,凝聚層形成均勻的支架涂層,不僅使支架保持基質(zhì)細(xì)胞衍生因子(stromal-derived factor-1alpha,SDF-1α)的高負(fù)載率,而且在靜態(tài)和生理活動(dòng)水平下保持了SDF-1α的釋放率。將PGS材料制備成細(xì)小的人造血管,應(yīng)用聚己內(nèi)酯進(jìn)行表面改性后,植入大鼠的腹主動(dòng)脈;1年后進(jìn)行表征測(cè)定時(shí)發(fā)現(xiàn),肉眼觀上人造血管已經(jīng)和原來(lái)的腹主動(dòng)脈無(wú)異,都是由連續(xù)的內(nèi)皮細(xì)胞、血管中層和外膜層構(gòu)成,80%的人造血管未出現(xiàn)明顯的狹窄、擴(kuò)大和鈣化,且再生層含有神經(jīng)和大量成熟的彈性蛋白。盡管組織排列上與真實(shí)血管存在差異,但是二者的動(dòng)態(tài)機(jī)械順應(yīng)性相似。
以前的研究多是關(guān)于軟骨組織工程,表明PGS支架能夠截留營(yíng)養(yǎng)成分,促進(jìn)軟骨組織細(xì)胞的生長(zhǎng)繁殖[25]。最近,Deng等[26]將micro-RNA-31修飾改性的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,BMSCs)植入PGS支架來(lái)修復(fù)8 mm的大鼠顱骨極限缺損,結(jié)果顯示,micro-RNA-31修飾改性組成骨基因在mRNA和蛋白質(zhì)水平的表達(dá)顯著增強(qiáng),且觀察到健康新骨和富含高密度礦物質(zhì)的陳骨。更重要的是,在生物體內(nèi)PGS攜帶micro-RNA-31修飾改性的BMSCs展現(xiàn)了優(yōu)異的生物相容性和60%的高再生率。Zaky等[27]進(jìn)行了兔子尺骨極限缺損的實(shí)驗(yàn),應(yīng)用PGS支架結(jié)合BMSCs修復(fù)缺損部位,8周后使用計(jì)算機(jī)斷層掃描觀察到大量?jī)?yōu)質(zhì)的再生骨組織。Bodakhe等[21]應(yīng)用均質(zhì)化程序使納米羥磷灰石和PGS發(fā)生光敏交聯(lián),制造出納米復(fù)合體。優(yōu)化的納米復(fù)合材料在體外表現(xiàn)出優(yōu)異的細(xì)胞附著、增殖能力和誘導(dǎo)大鼠骨髓間充質(zhì)細(xì)胞的分化性能,且機(jī)械性能增強(qiáng),極限強(qiáng)度達(dá)到8 MPa。在大鼠顱頂骨缺損的生物體模型中,復(fù)合體材料也展現(xiàn)出較高的堿性磷酸酶活性和骨再生能力。這種生物相容性、生物活性和機(jī)械性能均佳的復(fù)合體適宜作為載荷骨再生裝置應(yīng)用于微創(chuàng)外科手術(shù)。以上研究均表明,對(duì)于骨缺損,PGS彈性體是一種適宜引導(dǎo)骨再生的支架材料。
PGS制成的手術(shù)縫合線既能在傷口愈合后自動(dòng)降解并被生物體吸收,免除患者二次拆線的痛苦,同時(shí)可減少空氣或液體感染所引發(fā)的疾病,避免傳統(tǒng)腸線及纖維蛋白、膠原蛋白縫線可能導(dǎo)致血源性病毒污染的擔(dān)憂,有效促進(jìn)傷口愈合[28-29]。
PGS作為組織再生膜,應(yīng)用到腹膜創(chuàng)傷等各種組織傷病和缺損,不僅防止了干燥、缺血、術(shù)后粘連等臨床并發(fā)癥,限制了手術(shù)切口的收縮、撕裂和腐蝕,還可促使術(shù)后腹膜底層組織修復(fù)能力增強(qiáng),減少纖維蛋白的沉積,即使沉積也多被纖維素酶降解[30]。如果纖維蛋白堆積且不能得到及時(shí)清除,仍然保持其黏性及與附近組織的粘連,即有可能惡化手術(shù)結(jié)局,情況嚴(yán)重者需要進(jìn)行二次手術(shù)。將乳酸加入PGS得到共聚物,將其作為外科密封劑,與傳統(tǒng)的纖維和膠原密封劑相比,雖然不能更好地促進(jìn)傷口愈合,但是有效地降低了血液病毒感染的危險(xiǎn)。從這方面講,PGS和乳酸共聚物充當(dāng)外科密封劑是一種更好的選擇。
藥物緩釋載體體系是指藥物能按一定的速度在指定時(shí)間內(nèi)釋放到指定的位置,且能夠控制藥物在體內(nèi)的持續(xù)釋放速率,確保藥物在體內(nèi)達(dá)到有效濃度,減小不良反應(yīng)。與傳統(tǒng)不可降解的藥物緩釋體系相比,可生物降解聚合物體系由載體的降解速率控制緩釋速率,藥物性質(zhì)對(duì)其影響較小,包裹藥物量和包裹形狀有更大的選擇空間,釋放速率更加穩(wěn)定,能滿足自身不穩(wěn)定藥物的釋放要求。PGS作為藥物載體的研究[31-32]已有很多。Sun等[32]將摻雜質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%的5-氟尿嘧啶(5-fluorouracil,5-FU)在不同的溫度和時(shí)間下縮聚,隨著溫度和時(shí)間的增加,5-FU PGS的彈性模量和硬度增加,質(zhì)量損失率和5-FU釋放速度降低。Sundback等[23]針對(duì)慢性耳部感染,應(yīng)用鼓膜造孔術(shù),放置插座型PGS材料,與血管組織接觸過(guò)程中,PGS支持細(xì)胞遷移和酶促降解反應(yīng),促進(jìn)了炎癥的消除。
PGS材料因具有優(yōu)異的力學(xué)性能以及良好的生物相容性,賦予了其能改善其他物質(zhì)性能的能力。
納米二氧化硅(nanosilica)與PGS進(jìn)行原位聚合反應(yīng)和表面改性,通過(guò)高分子相互作用和納米二氧化硅的分子網(wǎng)絡(luò),每20 phr拉伸強(qiáng)度從0.9 MPa增加到5.3 MPa[30]。Celli等[33]應(yīng)用靜電紡絲技術(shù),將聚羥基丁酸戊酯與 PLLA按照7︰3質(zhì)量比的混合物和不同比例的PGS混合物紡絲,發(fā)現(xiàn)與不添加PGS的樣品相比,添加PGS的細(xì)胞黏附性更好。聚丁烯內(nèi)加入不同比例的PGS合成新型多聚物,強(qiáng)度更佳,且在長(zhǎng)期紫外線照射下不易老化。
綜上所述,靜電紡絲技術(shù)制備PGS支架的方法已經(jīng)趨近于成熟,且已成功應(yīng)用于心臟、血管和顱骨等體內(nèi)非承力或承受較小力部位的組織工程,應(yīng)用于關(guān)節(jié)區(qū)等承力部位組織重建的研究較少。Hagandora等[34]將山羊顳下頜關(guān)節(jié)盤纖維軟骨細(xì)胞和PGS共培養(yǎng),以3種細(xì)胞密度植入,培養(yǎng)24 h、2周、4周。結(jié)果表明,第4周時(shí)組織學(xué)染色發(fā)現(xiàn)大量的膠原和糖胺聚糖,且所有組別的細(xì)胞含量均顯著增加。4周時(shí)PGS支架的正切模量顯著高于24 h時(shí)。在行使功能的過(guò)程中,受力關(guān)節(jié)不斷地受到力學(xué)刺激,組織工程支架除了必須滿足一般組織工程對(duì)支架材料的生物相容性、降解性能、孔隙率等的要求外,還必須滿足纖維軟骨的生物力學(xué)要求。
[1]Wang Y, Ameer GA, Sheppard BJ, et al. A tough biodegradable elastomer[J]. Nat Biotechnol, 2002, 20(6):602-606.
[2]Sundback CA, Shyu JY, Wang Y, et al. Biocompatibility analysis of poly(glycerol sebacate) as a nerve guide material[J]. Biomaterials, 2005, 26(27):5454-5464.
[3]Chen QZ, Liang SL, Wang J, et al. Manipulation of mechanical compliance of elastomeric PGS by incorporation of halloysite nanotubes for soft tissue engineering applications[J]. J Mech Behav Biomed Mater, 2011, 4(8):1805-1818.
[4]Bruggeman JP, de Bruin BJ, Bettinger CJ, et al. Biodegradable poly(polyol sebacate) polymers[J]. Biomaterials, 2008,29(36):4726-4735.
[5]Fidkowski C, Kaazempur-Mofrad MR, Borenstein J, et al.Endothelialized microvasculature based on a biodegradable elastomer[J]. Tissue Eng, 2005, 11(1/2):302-309.
[6]Gao J, Crapo P, Nerem R, et al. Co-expression of elastin and collagen leads to highly compliant engineered blood vessels[J]. J Biomed Mater Res A, 2008, 85(4):1120-1128.[7]Crapo PM, Wang Y. Physiologic compliance in engineered small-diameter arterial constructs based on an elastomeric substrate[J]. Biomaterials, 2010, 31(7):1626-1635.
[8]Hong Z, Zhang P, He C, et al. Nano-composite of poly(L-lactide) and surface grafted hydroxyapatite: mechanical properties and biocompatibility[J]. Biomaterials, 2005, 26(32):6296-6304.
[9]Landes CA, Ballon A, Sader R. Segment stability in bimaxillary orthognathic surgery after resorbable poly(L-lactideco-glycolide) versus titanium osteosyntheses[J]. J Craniofac Surg, 2007, 18(5):1216-1229.
[10]Ghasemi-Mobarakeh L, Prabhakaran MP, Balasubramanian P, et al. Advances in electrospun nanofibers for bone and cartilage regeneration[J]. J Nanosci Nanotechnol, 2013, 13(7):4656-4671.
[11]Crapo PM, Gao J, Wang Y. Seamless tubular poly(glycerol sebacate) scaffolds: high-yield fabrication and potential applications[J]. J Biomed Mater Res A, 2008, 86(2):354-363.
[12]Radisic M, Park H, Chen F, et al. Biomimetic approach to cardiac tissue engineering: oxygen carriers and channeled scaffolds[J]. Tissue Eng, 2006, 12(8):2077-2091.
[13]Lee EJ, Vunjak-Novakovic G, Wang Y, et al. A biocompatible endothelial cell delivery system for in vitrotissue engineering[J]. Cell Transplant, 2009, 18(7):731-743.
[14]Liang SL, Yang XY, Fang XY, et al.In vitroenzymatic degradation of poly (glycerol sebacate)-based materials[J].Biomaterials, 2011, 32(33):8486-8496.
[15]Pomerantseva I, Krebs N, Hart A, et al. Degradation behavior of poly(glycerol sebacate)[J]. J Biomed Mater Res A,2009, 91(4):1038-1047.
[16]Lim SH, Mao HQ. Electrospun scaffolds for stem cell engineering[J]. Adv Drug Deliv Rev, 2009, 61(12):1084-1096.
[17]Ravichandran R, Venugopal JR, Mueller M, et al. Buckled structures and 5-azacytidine enhance cardiogenic differentiation of adipose-derived stem cells[J]. Nanomedicine: Lond,2013, 8(12):1985-1997.
[18]Ravichandran R, Venugopal JR, Sundarrajan S, et al. Expression of cardiac proteins in neonatal cardiomyocytes on PGS/fibrinogen core/shell substrate for Cardiac tissue engineering[J]. Int J Cardiol, 2013, 167(4):1461-1468.
[19]Xu B, Rollo B, Stamp LA, et al. Non-linear elasticity of core/shell spun PGS/PLLA fibres and their effect on cell proliferation[J]. Biomaterials, 2013, 34(27):6306-6317.
[20]Sant S, Hwang CM, Lee SH, et al. Hybrid PGS-PCL microfibrous scaffolds with improved mechanical and biological properties[J]. J Tissue Eng Regen Med, 2011, 5(4):283-291.
[21]Bodakhe S, Verma S, Garkhal K, et al. Injectable photocrosslinkable nanocomposite based on poly(glycerol sebacate) fumarate and hydroxyapatite: development, biocompatibility and bone regeneration in a rat calvarial bone defect model[J]. Nanomedicine: Lond, 2013, 8(11):1777-1795.
[22]Park H, Larson BL, Guillemette MD, et al. The significance of pore microarchitecture in a multi-layered elastomeric scaffold for contractile cardiac muscle constructs[J]. Biomaterials, 2011, 32(7):1856-1864.
[23]Sundback CA, McFadden J, Hart A, et al. Behavior of poly(glycerol sebacate) plugs in chronic tympanic membrane perforations[J]. J Biomed Mater Res Part B Appl Biomater,2012, 100(7):1943-1954.
[24]Sun ZJ, Sun B, Sun CW, et al. A poly glycerol-sebacate-(5-fluorouracil-1-acetic acid) polymer with potential use for cancer therapy[J]. J Bioact Compat Polym, 2012, 27(1):18-30.
[25]Mitsak AG, Dunn AM, Hollister SJ. Mechanical characterization and non-linear elastic modeling of poly(glycerol sebacate) for soft tissue engineering[J]. J Mech Behav Biomed Mater, 2012, 11:3-15.
[26]Deng Y, Bi X, Zhou H, et al. Repair of critical-sized bone defects with anti-miR-31-expressing bone marrow stromal stem cells and poly(glycerol sebacate) scaffolds[J]. Eur Cell Mater, 2014, 27:13-25.
[27]Zaky SH, Lee KW, Gao J, et al. Poly(glycerol sebacate)elastomer: a novel material for mechanically loaded bone regeneration[J]. Tissue Eng Part A, 2014, 20(1/2):45-53.
[28]Chen QZ, Ishii H, Thouas GA, et al. An elastomeric patch derived from poly(glycerol sebacate) for delivery of embryonic stem cells to the heart[J]. Biomaterials, 2010, 31(14):3885-3893.
[29]Lee KW, Johnson NR, Gao J, et al. Human progenitor cell recruitment via SDF-1α coacervate-laden PGS vascular grafts[J]. Biomaterials, 2013, 34(38):9877-9885.
[30]Kenar H, Kose GT, Toner M, et al. A 3D aligned microfi-brous myocardial tissue construct cultured under transient perfusion[J]. Biomaterials, 2011, 32(23):5320-5329.
[31]Masoumi N, Johnson KL, Howell MC, et al. Valvular interstitial cell seeded poly(glycerol sebacate) scaffolds: toward a biomimeticin vitromodel for heart valve tissue engineering[J]. Acta Biomater, 2013, 9(4):5974-5988.
[32]Sun ZJ, Sun C W, Sun B, et al. The polycondensing temperature rather than time determines the degradation and drug release of poly (glycerol-sebacate) doped with 5-fluorouracil[J]. J Biomater Sci Polym Ed, 2012, 23(6):833-841.
[33]Celli A, Marchese P, Sullalti S, et al. Preparation of new biobased polyesters containing glycerol and their photodurability for outdoor applications[J]. Green Chemistry, 2012,14(1):182-187.
[34]Hagandora CK, Gao J, Wang Y, et al. Poly (glycerol sebacate): a novel scaffold material for temporomandibular joint disc engineering[J]. Tissue Eng Part A, 2013, 19(5/6):729-737.