張在其 幸小亮 賀凱 黃雪霜 楊勇 張荔銘
心博驟停(cardiac arrest,CA)引起嚴(yán)重的全身性組織缺氧缺血,心肺復(fù)蘇(cardiopulmonary resuscitation, CPR)可使機(jī)體恢復(fù)自主循環(huán),但也會造成不可逆全身性缺血/再灌注損傷[1-3]。以往研究發(fā)現(xiàn),過多的活性氧(reactive oxygen species,ROS)對心肌細(xì)胞有顯著損害作用[4-6]。因此,如何降低缺血/再灌注損傷時大量ROS的產(chǎn)生成為臨床上的研究重點(diǎn)。誘導(dǎo)內(nèi)源性一氧化碳產(chǎn)生可有效保護(hù)復(fù)蘇后心功能和缺氧/復(fù)氧損傷的心肌細(xì)胞[7-9],但其是否通過降低ROS而起作用未見報道。本研究采用一氧化碳釋放分子3(CO-releasing molecules, CORM-3)干預(yù)缺氧/復(fù)氧大鼠心肌細(xì)胞,通過觀察CORM-3的不同濃度及不同干預(yù)時間對心肌細(xì)胞內(nèi)ROS產(chǎn)生的影響,探討CORM-3保護(hù)作用的濃度和時間效應(yīng)。
一、實(shí)驗(yàn)材料
大鼠心肌細(xì)胞H9c2株購于武漢博士德生物工程有限公司,細(xì)胞培養(yǎng)所需要的高糖DMEM、無糖DMEM、胎牛血清、胰酶均購于GIBICO公司,CORM-3購于Sigma公司,ROS檢測試劑盒購于上海碧云天生物技術(shù)有限公司,實(shí)驗(yàn)儀器及耗材均由湖南醫(yī)藥學(xué)院生物醫(yī)學(xué)研究中心提供。
二、實(shí)驗(yàn)方法
1.大鼠心肌細(xì)胞H9c2的培養(yǎng)及缺氧/復(fù)氧處理:根據(jù)參考文獻(xiàn)進(jìn)行大鼠心肌細(xì)胞H9c2的缺氧處理[10-12]。將大鼠心肌細(xì)胞H9c2置于含100 g/L胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)的DMEM高糖培養(yǎng)基中培養(yǎng),每2~3 d更換培養(yǎng)基,當(dāng)細(xì)胞生長至匯合度90%左右時用2.5 g/L胰酶消化轉(zhuǎn)至24孔板進(jìn)行培養(yǎng),隨機(jī)分為對照組、缺氧6 h組和缺氧10 h 組。對照培養(yǎng)和復(fù)氧培養(yǎng)均采用100 g/L FBS的高糖DMEM培養(yǎng)基,放入5%CO2、95%空氣、37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng);缺氧培養(yǎng)采用無FBS的DMEM無糖培養(yǎng)基,置于5%CO2、95%N2、37℃缺氧培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。各組實(shí)驗(yàn)結(jié)束后檢測心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量。
2.CORM-3溶液配制及干預(yù)分組:10 mg CORM-3粉末溶于3.4 mL無菌水中溶解后配成10 mmol/L的濃儲液,分裝至PCR管中-20℃保存,使用時再進(jìn)行稀釋。將CORM-3溶解在PBS(pH值7.40)中稀釋并室溫靜止2 d,使用前用N2鼓泡10 min去除液體中殘余的CO,制備成含CO活性的CORM溶液。為探討不同濃度CORM-3對缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響,將H9c2心肌細(xì)胞缺氧6 h后,分別采用10 μM、50 μM、100 μM和200 μM 的CORM-3復(fù)氧6 h進(jìn)行心肌細(xì)胞內(nèi)ROS檢測;為探討不同復(fù)氧時間對缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響,選用50 μM CORM-3對缺氧6 h的心肌細(xì)胞分別進(jìn)行2 h、4 h、6 h、10 h復(fù)氧后檢測心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量。
3.心肌細(xì)胞內(nèi)ROS檢測:各組心肌細(xì)胞按照1∶10 00的比例加入10 mM的2,7-二氯熒光黃雙乙酸鹽(2′,7′-dichlorofluorescein diacetate,DCFH-DA)使其終濃度為10 μM,在37℃培養(yǎng)箱中放置20 min后用PBS洗滌細(xì)胞3次,再用0.25%胰酶消化后重懸于100 μL PBS中,將細(xì)胞轉(zhuǎn)移至黑色平底96孔板中置于多功能酶標(biāo)儀中測量495 nm/525 nm波長下的熒光值。熒光值與對照組相比進(jìn)行歸一化處理,計算相對吸光度(A)。
三、統(tǒng)計學(xué)分析
一、不同缺氧時間對心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響
與對照組相比,缺氧6 h組的心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量升高極顯著(P<0.0001);缺氧10 h組的心肌細(xì)胞死亡過多,未進(jìn)行ROS檢測見圖1。
注:aP<0.000 1
圖1缺氧6 h對心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量的影響
二、不同濃度CORM-3對缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響
與對照組相比,10 μmol/L CORM-3組的心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量有所降低,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);50 μmol/L、100 μmol/L CORM-3組的心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量均顯著降低P<0.05;200 μmol/L CORM-3組的心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量有所升高,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),然而與50 μmol/L、100 μmol/L組相比時,心肌細(xì)胞內(nèi)ROS量均顯著升高(P<0.05)。見圖2。
三、不同復(fù)氧時間對缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響
與對照組相比,復(fù)氧2 h、4 h組細(xì)胞內(nèi)ROS量有所降低,但差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。復(fù)氧6 h、10 h組細(xì)胞內(nèi)ROS量均顯著降低(P<0.05)。與復(fù)氧2 h、4 h組相比,復(fù)氧6 h組細(xì)胞內(nèi)ROS量均顯著降低(P<0.05)。與復(fù)氧6 h組相比,復(fù)氧10 h組細(xì)胞內(nèi)ROS量有輕微的升高(P>0.05)。見圖3。
注:分別為CORM-3 10 μmol/L,50 μmol/L,100 μmol/L,與對照組比較aP<0.05;CORM-3 200 μmol/L與對照組比較,bP<0.05;分別為CORM-3 50 μmol/L,100 μmol/L,與200 μmol/L比較cP<0.05
圖2不同濃度CORM-3對缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響
注:復(fù)氧2 h組,4 h組與對照組相比,aP>0.05;復(fù)氧6 h組,10 h 組與對照組相比bP<0.05;復(fù)氧2 h組,4 h組與復(fù)氧6 h組相比cP<0.05;復(fù)氧10 h組與復(fù)氧6 h組相比,dP<0.05
圖3不同復(fù)氧時間對缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響
心肺復(fù)蘇是搶救心臟驟?;颊叩闹饕胧?,但同時也會造成不可逆缺血/再灌注損傷[1-3],復(fù)蘇后心功能不全是復(fù)蘇早期高死亡率的重要原因。目前,關(guān)于缺血/再灌注損傷存在多種學(xué)說進(jìn)行,其中之一就是ROS損傷學(xué)說,主要原因?yàn)槿毖踉缙谝鸫罅縍OS的產(chǎn)生,引起氧化應(yīng)激反應(yīng),導(dǎo)致CPR后組織細(xì)胞損傷,因此,有研究者認(rèn)為改善氧化應(yīng)激反應(yīng)對于減少心臟驟停的損傷具有重要作用[13-15]。ROS是細(xì)胞代謝過程中產(chǎn)生的氧自由基和能轉(zhuǎn)化為氧自由基的物質(zhì),其中內(nèi)源性ROS主要來自線粒體的有氧呼吸與代謝,為呼吸鏈的主要產(chǎn)物源。ROS是機(jī)體內(nèi)不可或缺的物質(zhì),一定濃度的ROS對機(jī)體起著重要的生理作用[16],當(dāng)濃度較高時,反而會對機(jī)體產(chǎn)生損傷[17-18]。Hao等[19]認(rèn)為高濃度的ROS不宜外周造血干細(xì)胞特性的維持。Zhang等[20]認(rèn)為,ROS在胰腺癌中起“雙刃劍”的作用,高濃度ROS顯著損傷癌細(xì)胞并導(dǎo)致其死亡,Yang等[21]認(rèn)為,癌細(xì)胞內(nèi)ROS量較正常細(xì)胞明顯增多,因此成為選擇性治療癌癥新的研究靶點(diǎn)。降低缺氧細(xì)胞內(nèi)ROS量的產(chǎn)生對維持機(jī)體正常功能具有重要意義。
CORM-3為水溶性CO釋放分子[22-23],Pizarro等[24]研究發(fā)現(xiàn),使用CORM-3能減輕捐贈者肝臟冷凍保存和轉(zhuǎn)移中的損傷,研究者認(rèn)為該輔助保護(hù)方法同樣適用于心臟、腎臟等氣管的保存和轉(zhuǎn)運(yùn)。Kim等[25]研究發(fā)現(xiàn),CORM-3聯(lián)合NO能反向誘導(dǎo)肝線粒體生成,成為治療線粒體疾病的一項(xiàng)重要策略。Long等[23]研究發(fā)現(xiàn),CORM-3能通過磷酸鹽運(yùn)輸解偶聯(lián)線粒體的呼吸作用。Bergstraesser 等[26]研究發(fā)現(xiàn),CORM-3能抑制內(nèi)皮細(xì)胞血管細(xì)胞粘附分子-1的表達(dá),該抑制作用也是通過線粒體呼吸作用及抑制p38實(shí)現(xiàn)的。因此,鑒于CORM-3在線粒體呼吸中的作用及對肝、心、腎等器官的保護(hù)作用,筆者推測CORM-3可能通過降低細(xì)胞ROS量減小再灌注損傷作用。為此,筆者首先探討不同缺氧時間對心肌細(xì)胞內(nèi)ROS的影響,發(fā)現(xiàn)缺氧6 h心肌細(xì)胞內(nèi)ROS顯著升高,缺氧10 h心肌細(xì)胞死亡過多,ROS產(chǎn)生量無可比性,故未進(jìn)行ROS檢測,從而選擇6 h作為本研究后續(xù)實(shí)驗(yàn)的缺氧時間,而復(fù)氧時間則參考文獻(xiàn)設(shè)定[12, 27-29]。
本研究發(fā)現(xiàn)50 μmol/L和100 μmol/L濃度的CORM-3進(jìn)行缺氧/復(fù)氧干預(yù)時,細(xì)胞內(nèi)ROS的量顯著降低,其中,50 μmol/L的CORM-3效果更好;但當(dāng)繼續(xù)增加CORM-3濃度至200 μmol/L時,細(xì)胞內(nèi)ROS量反而升高,提示CORM-3對缺氧/復(fù)氧的心肌細(xì)胞可能存在“雙刃劍”效應(yīng),即適當(dāng)濃度時,存在保護(hù)作用;濃度過高時,反而損傷細(xì)胞。此外,為探討CORM-3對缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞的保護(hù)作用是否存在時間效應(yīng),選擇50 μmol/L濃度的CORM-3對缺氧6 h的心肌細(xì)胞分別進(jìn)行復(fù)氧2 h、4 h、6 h、10 h的研究,發(fā)現(xiàn)進(jìn)行2 h、4 h復(fù)氧時,細(xì)胞內(nèi)ROS量呈現(xiàn)降低,但差異不顯著;但當(dāng)復(fù)氧時間分別延長至6 h、10 h時,細(xì)胞內(nèi)ROS量均呈現(xiàn)顯著降低,其中復(fù)氧6 h的效果更好,提示CORM-3對降低細(xì)胞內(nèi)ROS的量與其復(fù)氧時間相關(guān)。
1 Jentzer JC,Chonde MD,Dezfulian C.Myocardial dysfunction and shock after cardiac arrest [J].Biomed Res Int, 2015:314796.
2 Patil KD,Halperin HR,Becker LB.Cardiac arrest: resuscitation and reperfusion[J].Circ Res, 2015,116(12):2041-2049.
3 Scolletta S,Donadello K,Santonocito C,et al.Biomarkers as predictors of outcome after cardiac arrest[J].Expert Rev Clin Pharmacol, 2012,5(6):687-699.
4 Wang ZH,Liu JL,Wu L,et al.Concentration-dependent wrestling between detrimental and protective effects of H2O2 during myocardial ischemia/reperfusion[J].Cell Death Dis,2014,5:1297.
5 Xie J,Zhou X,Hu X,et al.H2O2 evokes injury of cardiomyocytes through upregulating HMGB1[J].Hellenic J Cardiol,2014,55(2):101-106.
6 Qu D,Han J,Ren H,et al.Cardioprotective effects of astragalin against myocardial ischemia/reperfusion injury in isolated rat heart[J].Oxid Med Cell Longev,2016:8194690.
7 Stein AB,Bolli R,Dawn B,et al.Carbon monoxide induces a late preconditioning-mimetic cardioprotective and antiapoptotic milieu in the myocardium[J].J Mol Cell Cardiol,2012, 52(1):228-236.
8 Zhao S,Lin Q,Li H,et al.Carbon monoxide releasing molecule2 attenuated ischemia/reperfusioninduced apoptosis in cardiomyocytes via a mitochondrial pathway[J].Mol Med Rep,2014,9(2):754-762.
9 Peers C,Steele DS.Carbon monoxide: a vital signalling molecule and potent toxin in the myocardium[J].J Mol Cell Cardiol, 2012,52(2):359-365.
10 Zhang Y,Liao H,Zhong S,et al.Effect of N-n-butyl haloperidol iodide on ROS/JNK/Egr-1 signaling in H9c2 cells after hypoxia/reoxygenation[J].Sci Rep, 2015,5:11809.
11 Zhao P,Li F,Gao W,et al.Angiotensin1-7 protects cardiomyocytes from hypoxia/reoxygenation-induced oxidative stress by preventing ROS-associated mitochondrial dysfunction and activating the Akt signaling pathway[J].Acta Histochem, 2015, 117(8):803-810.
12 Li C,Hu M,Wang Y,et al.Hydrogen sulfide preconditioning protects against myocardial ischemia/reperfusion injury in rats through inhibition of endo/sarcoplasmic reticulum stress[J].Int J Clin Exp Pathol, 2015,8(7):7740-7751.
13 Zhuo X,Xie L,Shi FR,et al. The benefits of respective and combined use of green tea polyphenols and ERK inhibitor on the survival and neurologic outcomes in cardiac arrest rats induced by ventricular fibrillation[J].Am J Emerg Med, 2016,34(3):570-575.
14 Liu B,Qian JM.Cytoprotective role of heme oxygenase-1 in liver ischemia reperfusion injury[J].Int J Clin Exp Med,2015,8(11):19867-19873.
15 Yao L,Wang P,Chen M,et al.Carbon monoxide-releasing molecules attenuate postresuscitation myocardial injury and protect cardiac mitochondrial function by reducing the production of mitochondrial reactive oxygen species in a rat model of cardiac arrest[J].J Cardiovasc Pharmacol Ther,2015,20(3):330-341.
16 Sugamura K,Keaney JF.Reactive oxygen species in cardiovascular disease[J].Free Radic Biol Med,2011,51(5):978-992.
17 Kalogeris T,Bao Y,Korthuis RJ.Mitochondrial reactive oxygen species: a double edged sword in ischemia/reperfusion vs preconditioning[J].Redox Biol,2014,2:702-714.
18 Zuo L,Best TM,Roberts WJ,et al.Characterization of reactive oxygen species in diaphragm[J].Acta Physiol (Oxf), 2015,213(3):700-710.
19 Hao YW,Xu HM,Cheng DY,et al.Role of antioxidant in protecting the biological function of hematopoietic stem cells[J].Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi, 2014,22(1):142-147.
20 Zhang L,Li J,Zong L,et al.Reactive oxygen species and targeted therapy for pancreatic cancer[J]. Oxid Med Cell Longev,2016:1616781.
21 Yang Y,Karakhanova S,Hartwig W,et al. Mitochondria and mitochondrial ROS in cancer: novel targets for anticancer therapy[J].J Cell Physiol, 2016.
22 Foresti R,Hammad J,Clark JE,et al.Vasoactive properties of CORM-3, a novel water-soluble carbon monoxide-releasing molecule[J].Br J Pharmacol,2004,142(3):453-460.
23 Long R,Salouage I,Berdeaux A,et al.CORM-3, a water soluble CO-releasing molecule, uncouples mitochondrial respiration via interaction with the phosphate carrier[J].Biochim Biophys Acta,2014,1837(1):201-209.
24 Pizarro MD,Rodriguez JV,Mamprin ME,et al.Protective effects of a carbon monoxide-releasing molecule (CORM-3) during hepatic cold preservation[J].Cryobiology, 2009, 58(3):248-255.
25 Kim SK,Joe Y,Zheng M,et al.Resveratrol induces hepatic mitochondrial biogenesis through the sequential activation of nitric oxide and carbon monoxide production[J].Antioxid Redox Signal,2014,20(16):2589-2605.
26 Bergstraesser C,Hoeger S,Song H,et al.Inhibition of VCAM-1 expression in endothelial cells by CORM-3:the role of the ubiquitin-proteasome system, p38, and mitochondrial respiration[J].Free Radic Biol Med, 2012,52(4):794-802.
27 Cong B,Xu Y,Sheng H,et al.Cardioprotection of 17beta-estradiol against hypoxia/reoxygenation in cardiomyocytes is partly through up-regulation of CRH receptor type 2[J].Mol Cell Endocrinol,2014,382(1):17-25.
28 Dong G,Chen T,Ren X,et al.Rg1 prevents myocardial hypoxia/reoxygenation injury by regulating mitochondrial dynamics imbalance via modulation of glutamate dehydrogenase and mitofusin 2[J].Mitochondrion,2016,26:7-18.
29 Gao Y,Jia P,Shu W,et al.The protective effect of lycopene on hypoxia/reoxygenation-induced endoplasmic reticulum stress in H9C2 cardiomyocytes[J].Eur J Pharmacol,2016, 774:71-79.