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      軟骨形成因子及骨生成因子在骨重塑中的作用*

      2016-03-26 12:21:39王直兵綜述程興旺張玉梅審校
      重慶醫(yī)學(xué) 2016年27期
      關(guān)鍵詞:下骨成骨成骨細(xì)胞

      王直兵 綜述,張 峽,張 瑗,程興旺,郝 勇,張玉梅,周 躍 審校

      (第三軍醫(yī)大學(xué)新橋醫(yī)院骨科,重慶 400037)

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      ·綜述·doi:10.3969/j.issn.1671-8348.2016.27.043

      軟骨形成因子及骨生成因子在骨重塑中的作用*

      王直兵 綜述,張峽△,張瑗,程興旺,郝勇,張玉梅,周躍 審校

      (第三軍醫(yī)大學(xué)新橋醫(yī)院骨科,重慶400037)

      Sox-9; RunX-2; 軟骨; 軟骨下骨

      軟骨損傷會(huì)引起軟骨下骨改變,然損傷后修復(fù),對骨科醫(yī)師來講,一直是個(gè)難題。因軟骨無血管,只有軟骨細(xì)胞,損傷后其自身修復(fù)能力非常有限。目前,許多方法的治療效果均不理想。目前,學(xué)術(shù)界普遍認(rèn)為軟骨全層損傷會(huì)引起骨關(guān)節(jié)炎,最終執(zhí)行關(guān)節(jié)置換[1]。近年來,許多學(xué)者發(fā)現(xiàn),在性別的分化、胚胎的發(fā)育、骨骼及神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育的過程中,SOX基因家族起著至關(guān)重要的作用。有研究揭示在胚胎的軟骨生發(fā)區(qū),sry相關(guān)高遷移率蛋白轉(zhuǎn)錄因子(Sry-related high-mobility-group box transcription factor,Sox-9)的表達(dá)很高,并影響Ⅱ型膠原(COLⅡ)的合成,對軟骨生成產(chǎn)生作用[2]。 與此同時(shí),runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2(runt-related transcription factor 2,RunX-2)在成骨及軟骨細(xì)胞的分化、成熟、基質(zhì)蛋白生成方面都有著重要的作用。該綜述針對軟骨誘導(dǎo)生成蛋白Sox-9和骨誘導(dǎo)生成蛋白R(shí)unX-2對軟骨損傷后,軟骨下骨的重塑作用作一總結(jié)。

      1 Sox-9分子的生物學(xué)特征

      1.1Sox基因家族近年來,許多學(xué)者發(fā)現(xiàn)SOX基因家族,在性別的分化、胚胎的發(fā)育、骨骼及神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育的過程中,起著至關(guān)重要的作用。近年對Sox-9基因的研究一直是個(gè)熱點(diǎn)。在人類17號(hào)染色體,Sox-9位于其長臂,HMG-box保守基因?yàn)槠渲饕卣鳎摶蚰芘cDNA序列特異性結(jié)合。許多研究證實(shí),SOX 轉(zhuǎn)錄因子具有維持軟骨細(xì)胞表型的重要作用[3-4]。當(dāng)今,許多學(xué)者認(rèn)為除了肥大軟骨細(xì)胞,在肌肉骨骼系統(tǒng)發(fā)育過程中,Sox-9幾乎表達(dá)于所有軟骨細(xì)胞[4]。

      1.2軟骨細(xì)胞與Sox-9的關(guān)系體外實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),Sox-9能結(jié)合特定軟骨基質(zhì)蛋白,并將其激活,例如COL2A1等膠原蛋白以及糖胺聚糖等[3-4]。Sox-9部分結(jié)合COL2A1編碼序列,說明Sox-9對COL2A1表達(dá)進(jìn)行調(diào)控。部分研究者認(rèn)為,Sox-9功能上調(diào)控軟骨的發(fā)生,然而其具體機(jī)制仍不清楚。有文獻(xiàn)揭示,軟骨祖細(xì)胞的增殖、募集、成熟以及肥大后的轉(zhuǎn)化,都與Sox-9的表達(dá)相關(guān)。但當(dāng)Sox-9基因停止表達(dá)后,相應(yīng)的軟骨特異性分子(如膠原蛋白及糖胺聚糖)也停止表達(dá),但在缺失Sox-9基因的小鼠身上卻表現(xiàn)出發(fā)育不全的彎肢[5]。Sox-9是調(diào)節(jié)軟骨分化發(fā)育的重要轉(zhuǎn)錄蛋白,在軟骨細(xì)胞膜表面存在aggrecan蛋白增強(qiáng)蛋白COLⅡ,Sox-9與其結(jié)合并使之激活、表達(dá),進(jìn)一步調(diào)節(jié)軟骨分化。有研究發(fā)現(xiàn),在非軟骨細(xì)胞內(nèi)存在軟骨基因,在該基因上存在增強(qiáng)子序列,Sox- 9能與之結(jié)合并使其激活,導(dǎo)致非軟骨細(xì)胞產(chǎn)生軟骨細(xì)胞樣表型[4]。Kim等[6]及其研究團(tuán)隊(duì)將聚(乳酸-羥基乙酸)納米微球用活化后的PEI/ Sox-9基因轉(zhuǎn)染入骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,不管是體內(nèi)還是體外實(shí)驗(yàn)均顯示Ⅱ型膠原、Aggrecan、COMP基因的表達(dá)上調(diào),同時(shí)糖胺聚糖的合成也增加,利用阿利辛藍(lán)、番紅-固綠染色也證實(shí),通過非病毒Sox-9基因轉(zhuǎn)染至軟骨細(xì)胞也能成功控制軟骨的分化。陳金武等[7]將Sox-9基因以脂質(zhì)體形式成功轉(zhuǎn)入胎兒骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow stromal cells,BMSCs),轉(zhuǎn)染后的第2、16天時(shí),他們發(fā)現(xiàn)標(biāo)簽蛋白Flag以及過表達(dá)的Sox-9使BMSCs發(fā)生軟骨細(xì)胞分化,軟骨特異性蛋白COLⅡ的表達(dá)也增加,并證實(shí)標(biāo)簽蛋白Flag由Sox-9表達(dá)。徐忠世等[8]也做了類似研究,他們將成功轉(zhuǎn)染Sox-9基因后的BMSCs,種植于支架PLGA內(nèi),在體外共培養(yǎng)后,移植入軟骨缺損后的動(dòng)物模型身上,HE染色顯示:在第12周時(shí),缺損的軟骨區(qū)域出現(xiàn)大量成熟的軟骨細(xì)胞,大量的軟骨基質(zhì)及膠原纖維在胞質(zhì)內(nèi)出現(xiàn),類似于正常軟骨。這些都表明對種子細(xì)胞行Sox-9基因的轉(zhuǎn)染,可以成功實(shí)現(xiàn)損傷軟骨的修復(fù)。

      綜上可以得出,Sox-9參與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向軟骨細(xì)胞方向分化的調(diào)控,對軟骨祖細(xì)胞增殖、募集、成熟及其肥大轉(zhuǎn)化發(fā)揮著至關(guān)重要的作用,控制軟骨特異性細(xì)胞外基質(zhì)的表達(dá),是軟骨形成、修復(fù)重建的主要調(diào)控者。

      2 RunX-2分子構(gòu)成與特性

      RunX-2屬于runt結(jié)構(gòu)域,為RunX家族轉(zhuǎn)錄因子。因N-端序列不同,RunX-2有3種異構(gòu)形式[9],按起始氨基酸序列的不同分為Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型,Ⅰ型為MRIPVD,Ⅱ型為MASNSL,Ⅲ型為MLHSPH。每種異構(gòu)體都被兩種轉(zhuǎn)錄啟動(dòng)子Pl和P2調(diào)控,同時(shí)還具有NF-KB、AP-l、c-Myb和HLH等多種其他轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)。研究顯示,即使RunX-2只存在1個(gè)完整的成骨基因結(jié)合位點(diǎn),CBFcd蛋白的過表達(dá)也能對其發(fā)揮反饋性抑制作用[10]。這個(gè)現(xiàn)象說明在CBFcd的表達(dá)過程中,CBFcd蛋白自身結(jié)合位點(diǎn)及成骨基因的存在是其負(fù)反饋調(diào)控的關(guān)鍵。該機(jī)制是成骨細(xì)胞調(diào)節(jié)分化過程中的重要環(huán)節(jié),如果沒有CBFcd蛋白自身緊密及嚴(yán)格的負(fù)反饋調(diào)節(jié)機(jī)制,成骨細(xì)胞分化過程中精確的生物學(xué)功能調(diào)控根本沒辦法完成。

      3 Run-2參與的骨代謝

      3.1RunX-2與成骨細(xì)胞的關(guān)系研究顯示,被敲除RunX-2基因的小鼠均失去了膜內(nèi)及軟骨內(nèi)成骨能力,這一研究表明,在成骨細(xì)胞的分化過程中RunX-2基因具有極其重要的作用[11]。即使存在基質(zhì)金屬蛋白酶2(bone morphogenetic protein,BMP2),缺失RunX-2基因的小鼠顱骨細(xì)胞,無論體內(nèi)還是體外均失去了分化為成骨細(xì)胞的能力,但卻保留了向脂肪細(xì)胞及軟骨細(xì)胞分化的潛力。因此可以看出,缺失RunX-2基因的BMSCs雖然喪失了向成骨細(xì)胞分化的能力,但仍具有向脂肪細(xì)胞及軟骨細(xì)胞分化的能力[12]。RunX-2基因在早期時(shí)能促進(jìn)MSCs分化為成骨細(xì)胞,Gersbach等[13]通過轉(zhuǎn)基因的技術(shù)成功使RunX-2在原代成肌細(xì)胞中穩(wěn)定表達(dá),成肌細(xì)胞獲得典型的成骨作用,骨基質(zhì)生成相關(guān)基因的表達(dá)明顯增加,堿性磷酸酶(alkaline phospha-tase,ALP)分泌顯著增加,并出現(xiàn)基質(zhì)礦化。研究顯示,首先將BMLB/c小鼠顱骨造成5mm的缺損,MSCs轉(zhuǎn)導(dǎo)Ad-Cbhl/osf2后種植于缺損區(qū)域,在體內(nèi)觀察Cbfαl/Runx-2誘導(dǎo)骨形成,4周后,發(fā)現(xiàn)85%的缺損區(qū)域出現(xiàn)骨性愈合,在對照實(shí)驗(yàn)組卻沒有發(fā)現(xiàn)骨愈合[14]。有文獻(xiàn)顯示,在體外,RunX-2過表達(dá)的成骨細(xì)胞不僅不會(huì)使骨形成增加,相反還會(huì)加速破骨細(xì)胞分化,破骨細(xì)胞分化因子的表達(dá)增加,促進(jìn)骨的吸收[15-17]。

      3.2軟骨細(xì)胞與RunX-2基因RunX-2的表達(dá)隨軟骨細(xì)胞的成熟逐漸增加,在肥大軟骨細(xì)胞內(nèi),RunX-2基因大量表達(dá),與COLⅡ的表達(dá)呈正相關(guān)。體外實(shí)驗(yàn)顯示,RunX-2基因敲除后,小鼠軟骨細(xì)胞的分化被抑制,只有少部分骨骼內(nèi)發(fā)現(xiàn)X型膠原表達(dá),出現(xiàn)成脂分化[18-20]。在轉(zhuǎn)基因小鼠體內(nèi),因RunX-2基因的過表達(dá),出現(xiàn)軟骨細(xì)胞早熟,骨化加速;在未成熟軟骨細(xì)胞內(nèi),RunX-2基因的連續(xù)表達(dá)能誘使非成熟軟骨細(xì)胞的肥大[11,21]。這些表明,軟骨細(xì)胞的成熟及其分化與RunX-2基因密不可分;此外,有研究表明,RunX-2基因還參與血管長入,基因缺失后,血管入侵的能力明顯下降[22]。將轉(zhuǎn)入小鼠體內(nèi)后,肥大軟骨細(xì)胞募集不能,該現(xiàn)象表明通過調(diào)節(jié)終末肥大軟骨細(xì)胞中的基質(zhì)蛋白相關(guān)基因,加速軟骨細(xì)胞的終末期分化,能加快軟骨的血管長入過程以及軟骨細(xì)胞分化為終末細(xì)胞[23-24]。

      3.3RunX-2對細(xì)胞外基質(zhì)的調(diào)節(jié)研究顯示,在成骨分化相關(guān)基因骨鈣蛋白基因的啟動(dòng)子中具有2個(gè)成骨細(xì)胞特定元素(osteoldast specific elements,OSE)序列,該序列為RunX-2結(jié)合位點(diǎn)。骨橋接素、ALP(alkaline phospha-tase)、骨涎蛋白和Ⅰ型膠原等其他成骨分化相關(guān)基因的啟動(dòng)子中也存在OSE。由此,RunX-2與啟動(dòng)子中的OSE序列結(jié)合后,可有效促進(jìn)骨細(xì)胞外基質(zhì)的合成,包括Ⅰ型膠原、骨保護(hù)素、骨唾蛋白、骨鈣素等[25-26]。

      以上諸多研究顯示,RunX-2基因不僅能使原代成肌樣細(xì)胞分化為具有礦化能力的成骨樣細(xì)胞表型,還能促進(jìn)MSCs向成骨細(xì)胞系分化;與此相同,Inman等[27]研究也顯示,在早期Runx-2能促進(jìn)成骨細(xì)胞分化,可是,在晚期卻為抑制成骨細(xì)胞分化。而且,在軟骨細(xì)胞向終末細(xì)胞的分化過程及胞外基質(zhì)形成方面,Runx-2都表現(xiàn)出極其重要的作用,充分揭露了Runx-2基因在損傷軟骨和軟骨下骨修復(fù)過程中的重要地位。

      4 展 望

      在軟骨細(xì)胞內(nèi),Sox-9的表達(dá)在軟骨祖細(xì)胞的增殖、募集成熟以及向肥大軟骨細(xì)胞的轉(zhuǎn)化方面起著至關(guān)重要的作用,對軟骨的發(fā)生,損傷后修復(fù)、重建起主要調(diào)控;RunX-2基因不僅能促進(jìn)成骨細(xì)胞的分化及骨形成,加速軟骨細(xì)胞的分化成熟及后期血管化,還參與破骨細(xì)胞分化、成熟及其細(xì)胞外基質(zhì)生成,這些都有力地說明了在軟骨與軟骨下骨的修復(fù)重建中,Sox-9和RunX-2有著極其重要的作用。

      鑒于此,如果能在基因工程技術(shù)中,充分發(fā)揮該兩種基因的作用,在不久的將來有望實(shí)現(xiàn)軟骨及軟骨下骨損傷后的修復(fù)。

      [1]Strauss EJ,Goodrich LR,Chen CT,et al.Biochemical and biomechanical properties of lesion and adjacent articular cartilage after chondral defect repair in an equine model[J].Amer J Sp Med,2005,33(11):1647-1653.

      [2]Wright E,Hargrave MR,Christiansen J,et al.Gangadharan U,greenfield a,koopman P.The Sry-related gene Sox9 is expressed during chondrogenesis in mouse embryos[J].Nat Genet,1995,9(1):15-20.

      [3]Lefebvre V,Huang WD,Harley VR,et al.SOX9 is a potent activator of the chondrocyte-specific enhancer of the pro alpha 1(Ⅱ) collagen gene[J].Mol Cell Biol,1997,17(4):2336-2346.

      [4]Lefebvre V,Behringer RR,De Crombrugghe B.L-Sox5,Sox6 and Sox9 control essential steps of the chondrocyte differentiation pathway[J].Osteoarthritis and Cartilage,2001,9(A):S69-S75.

      [5]Akiyama H.Control of chondrogenesis by the transcription factor Sox9[J].Mod Rheumatol,2008,18(3):213-219.

      [6]Kim JH,Park JS,Yang HN,et al.The use of biodegradable PLGA nanoparticles to mediate SOX9 gene delivery in human mesenchymal stem cells (hMSCs) and induce chondrogenesis[J].Biomaterials,2011,32(1):268-278.

      [7] 陳金武,吳軍正,李焰,等.SOX-9基因過表達(dá)誘導(dǎo)人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向軟骨細(xì)胞分化[J].臨床口腔醫(yī)學(xué)雜志,2003,19(12):712-724.

      [8]徐忠世,林博文,盧小虎,等.SOX-9轉(zhuǎn)染骨髓基質(zhì)細(xì)胞與聚乳酸-羥基乙酸共聚物的生物相容性[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù),2010,14(51):9559-9562.

      [9]Stock M,Otto F.Control of RUNX2 isoform expression:the role of promoters and enhancers[J].J Cell Biochem,2005,95(3):506-517.

      [10]Drissi H,Luc Q,Shakoori R,et al.Transcriptional autoregulation of the bone related CBFA1/RUNX2 gene[J].J Cell Physiol,2000,184(3):341-350.

      [11]Enomoto H,Furulchl T,Zanma A,et al.RUNX-2 cleftciency in chondrocytes causes adipogenic changes in vitro[J].Cell Sci,2004,117(Pt 3):417-425.

      [12]Kobayashi H,Gao Yh,Ueta C,et al.Multilineage differentiation of Cbfa1-deficient calvarial cells in vitro[J].Biochem Biophys Res Commun,2000,273(2):630-636.

      [13]Gersbach CA,Byers B,Pavlath GK,et al.Runx 2/cbfal stimulates transdifferen-tiation of primary skeletal myoblasts into a mineralizing osteoblasfic phenotype[J].Exp Cell Res,2004,300(2):406.

      [14]Zheng H,Guo Z,Ma Q,et al.Cbfa1/osf2 transduced bone marrow stromal cells facilitate bone formation in vitro and in vivo[J].Calcif Tissue Int,2004,74(2):194-203.

      [15]Liu W,Toyosawa S,Furuichi T,et al.Overexpression of Cbfa1 in osteoblasts inhibits osteoblast maturation and causes osteopenia with multiple fractures[J].J Cell Biol,2001,155(1):157-166.

      [16]Geoffroy V,Kneissel M,Fournier B,et al.High bone resorption in adult aging transgenic mice overexpressing cbfa1/runx2 in cells of the osteoblastic lineage[J].Mol Cell Biol,2002,22(17):6222-6233.

      [17]Shui C,Spelsberg TC,Riggs BL,et al.Changes in RunX-2/cbfa1 expression and activity during osteoblastic differentiation of human bone marrow strumal cells[J].J Bone Miner Res, 2003, 18(2):213-221.

      [18]Komori T.Requisite roles of Runx2 and Cbfb in skeletal development[J].J Bone Miner Metab,2003,21(4):193-197.

      [19]Inada M,Yasui T,Nomura S,et al.Maturational disturbance of chondrocytes in Cbfa1-deficient mice[J].Developmental Dynamics,1999,214(4):279-290.

      [20]Enomoto H,Enomoto-Iwamoto M,Iwamoto M,et al.Cbfa1 is a positive regulatory factor in chondrocyte maturation[J].J Biol Chem,2000,275(12):8695-8702.

      [21]Ueta C,Iwamoto M,Kanatani N,et al.Skeletal malformations caused by overexpression of Cbfa1 or its dominant negative form in chondrocytes[J].J Cell Biol,2001,153(1):87-100.

      [22]Takeda S,Bonnamy JP,Owen MJ,et a1.Continuous expression of Cbfa1 in nonhypertrophic chondrocytes uncovers its ability to induce hypertrophic chondrocyte differentiation and partially rescues Cbfa1-deficient mice[J].Genes Dev,200l,15(4):467-481.

      [23]Himeno M,Enomoto H,Liu W,et al.Impaired vascular invasion of Cbfa1-deficient cartilage engrafted in the spleen[J].J Bone Miner Res,2002,17(7):1297-1305.

      [24]Kern B,Shen J,Starbuck M,et al.Cbfa1 contributes to the osteoblast-specific expression of type Ⅰ collagen genes[J].J Biol Chem,2001,276(10):7101-7107.

      [25]Viereck V,Siggelkow H,Tauber S,et al.Differential regulation of Cbfa1/Runx2 and osteocalcin gene expression by vitamin-D3,dexamethasone,and local growth factors in primary human osteoblasts[J].J Cell Biochem,2002,86(2):348-356.

      [26] Komorl F.Regulation of skeletal development by the RUNX family of transcription factors[J].J Cell Biochemistry,2005,95(3):445-453.

      [27]Inman CK,Shore P.The osteoblast transcription factor Runx2 is expressed in mammary epithelial cells and mediates osteopontin expression[J].J Biol Chem,2003,278(49):48684-48689.

      國家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(81171720)。作者簡介:王直兵(1985-),主治醫(yī)師,碩士,主要從事骨關(guān)節(jié)損傷與修復(fù)的研究。△

      ,E-mail:wangzhiqiang18716@126.com。

      R34

      A

      1671-8348(2016)27-3865-03

      2016-02-18

      2016-04-06)

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