• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      干細(xì)胞在軟骨再生中的應(yīng)用

      2016-11-09 02:27:13王明杰劉舒云郭維民張雨彭江盧世璧郭全義
      中國醫(yī)藥生物技術(shù) 2016年5期
      關(guān)鍵詞:祖細(xì)胞軟骨干細(xì)胞

      王明杰 ,劉舒云 ,郭維民,張雨,彭江,盧世璧,郭全義

      干細(xì)胞在軟骨再生中的應(yīng)用

      王明杰 ,劉舒云 ,郭維民,張雨,彭江,盧世璧,郭全義

      軟骨損傷是最常見的膝關(guān)節(jié)疾病之一。由于軟骨無血管、神經(jīng)、淋巴組織,營養(yǎng)成分主要來自膝關(guān)節(jié)的滑液,這些組織學(xué)的特點(diǎn)使得軟骨損傷的自我修復(fù)能力極為有限。創(chuàng)傷性的軟骨損傷和早期的骨性關(guān)節(jié)炎(OA)會(huì)引起患者關(guān)節(jié)的疼痛和腫脹,若損傷不予處理則會(huì)加速關(guān)節(jié)的退變,引起更嚴(yán)重的功能障礙。軟骨損傷以及后續(xù)的關(guān)節(jié)退變給患者生活帶來極大的不便,同時(shí)軟骨損傷作為長期和慢性的疾病也消耗著大量的醫(yī)療資源。然而,隨著組織工程相關(guān)再生醫(yī)學(xué)的發(fā)展,使得軟骨損傷的修復(fù)得以實(shí)現(xiàn)[1]。

      組織工程技術(shù)主要包括種子細(xì)胞、支架材料和細(xì)胞因子等,其中種子細(xì)胞是影響修復(fù)效果的重要因素之一。自體軟骨細(xì)胞移植(ACI)技術(shù)在修復(fù)軟骨損傷中應(yīng)用廣泛且臨床效果肯定,因此自體的軟骨細(xì)胞被認(rèn)為是組織工程軟骨種子細(xì)胞的“金標(biāo)準(zhǔn)”。但自體軟骨細(xì)胞在臨床中的應(yīng)用存在著許多待解決的問題:①由于自體軟骨細(xì)胞的供區(qū)面積有限,為了滿足修復(fù)所需的細(xì)胞數(shù)量,在移植之前需要將細(xì)胞在體外單層擴(kuò)增培養(yǎng),然而在培養(yǎng)過程中會(huì)出現(xiàn)軟骨細(xì)胞的去分化,導(dǎo)致軟骨細(xì)胞表型丟失。去分化的軟骨細(xì)胞在再生修復(fù)過程中易生成質(zhì)量較差的纖維軟骨,而非透明軟骨。纖維軟骨生物力學(xué)特性差,無法達(dá)到經(jīng)久耐用的效果。②自體軟骨細(xì)胞移植需要二次手術(shù),患者難以接受復(fù)雜的治療過程。③獲取自體軟骨細(xì)胞的健康供區(qū)雖然是膝關(guān)節(jié)非負(fù)重區(qū)的位置,但也存在供區(qū)破壞所導(dǎo)致的一系列風(fēng)險(xiǎn)。雖然“3D”或添加細(xì)胞因子的體外培養(yǎng)條件,能夠減少軟骨細(xì)胞表型的丟失,但損傷供區(qū)健康軟骨和二次手術(shù)的問題仍然使得自體軟骨細(xì)胞修復(fù)軟骨損傷的臨床應(yīng)用受到很多限制[2-3]。

      干細(xì)胞根據(jù)發(fā)育潛能可分為全能干細(xì)胞(totipotent stem cells,TSCs)、多能干細(xì)胞(induced pluripotent stem cells,iPSs)和單能干細(xì)胞(unipotent stem cells,USCs)。由于干細(xì)胞的自我更新復(fù)制和多項(xiàng)分化的潛能,使得干細(xì)胞在組織再生領(lǐng)域得到了廣泛關(guān)注。同時(shí)由于軟骨組織不可自我修復(fù)的特性,也使得干細(xì)胞在軟骨組織再生領(lǐng)域的研究越來越多,且間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSCs)相關(guān)的研究已經(jīng)在臨床中得到了應(yīng)用[4]。關(guān)注干細(xì)胞在軟骨再生領(lǐng)域的發(fā)展,利于提供一些軟骨再生的修復(fù)策略。

      1 軟骨祖細(xì)胞與軟骨細(xì)胞的特點(diǎn)

      基于軟骨細(xì)胞表面存在不斷損傷修復(fù)的理論[5],軟骨祖細(xì)胞(cartilage derived progenitor cells,CDPCs)最先由Dowthwaite 等在 2007 年提出,并在研究中發(fā)現(xiàn)該細(xì)胞群對于纖維連接蛋白具有較高的親和性,集落形成能力較強(qiáng),同時(shí)表達(dá)細(xì)胞命運(yùn)選擇基因 Notch 1。另有研究報(bào)道,在晚期骨性關(guān)節(jié)炎患者的軟骨中發(fā)現(xiàn)軟骨祖細(xì)胞的存在[6],該研究結(jié)果展示了軟骨祖細(xì)胞具有較好的成軟骨能力、具有向損傷區(qū)的軟骨組織趨化的特性、具有下調(diào)成骨轉(zhuǎn)錄因子 Run-2和上調(diào)成軟骨轉(zhuǎn)錄因子 Sox-9 的特性以及增加細(xì)胞外基質(zhì)合成的特性。先前的研究結(jié)果證明軟骨干細(xì)胞僅存在于軟骨組織的表層[5,7],2014 年,Yu 等[8]發(fā)現(xiàn)軟骨組織的深層同樣有軟骨祖細(xì)胞的存在。在軟骨祖細(xì)胞數(shù)量方面,表層 1/3區(qū)域多于深層 2/3 的區(qū)域,但不同區(qū)域的軟骨祖細(xì)胞具有向不同組織系分化的不同基因表達(dá)特性,這種特性對于維持關(guān)節(jié)軟骨內(nèi)在的穩(wěn)態(tài)具有重要的意義。近年來有研究表明:軟骨祖細(xì)胞與軟骨細(xì)胞相比較,過度表達(dá)白介素趨化因子-8(IL-8)和 C-C 基配體-2(CCL-2)。軟骨祖細(xì)胞過度表達(dá)的趨化因子使得免疫細(xì)胞集聚,從而在軟骨的損傷與修復(fù)過程中起到調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)的作用。軟骨祖細(xì)胞具有干細(xì)胞的表面標(biāo)志物,如 STRO-1、CD90 和 CD166 等,也同樣具有多項(xiàng)分化潛能。軟骨祖細(xì)胞成軟骨誘導(dǎo)后可檢測到大量的 II 型膠原和蛋白多糖且不含有與軟骨退變老化相關(guān)的X 型膠原,與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)的成軟骨誘導(dǎo)相比有著明顯的不同[9]。同時(shí) BMSCs 與軟骨祖細(xì)胞體外成軟骨誘導(dǎo)相比更容易引起細(xì)胞肥大。另外也有文獻(xiàn)報(bào)道軟骨祖細(xì)胞的體外誘導(dǎo)成軟骨效果明顯優(yōu)于滑膜間充質(zhì)干細(xì)胞(synovium-derived mesenchymal stem cells,SMSCs)[10]。這些研究結(jié)果顯示軟骨祖細(xì)胞用于軟骨再生的效果很可能要優(yōu)于 MSCs。

      2016 年,Jiang 等[11]進(jìn)一步探討了人源性的軟骨祖細(xì)胞以及該細(xì)胞在臨床軟骨組織損傷修復(fù)中的應(yīng)用潛能。該研究在體內(nèi)和體外試驗(yàn)中對比了軟骨祖細(xì)胞的成軟骨能力,發(fā)現(xiàn)在低密度、低糖的“2D”培養(yǎng)模式中,不經(jīng)誘導(dǎo)的軟骨祖細(xì)胞可以自發(fā)進(jìn)入軟骨分化程序,為該細(xì)胞的臨床應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。為了進(jìn)一步檢驗(yàn)該細(xì)胞修復(fù)軟骨的效果,15 名年輕患者接受了應(yīng)用軟骨祖細(xì)胞修復(fù) 6 ~ 13 cm2大小軟骨缺損的治療,修復(fù)效果顯著,患者的疼痛感消失,日?;顒?dòng)自如。雖然經(jīng)過誘導(dǎo)后的軟骨祖細(xì)胞和正常的關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞相比在細(xì)胞表型和再生軟骨的質(zhì)量上還有一定的差距,但是軟骨干細(xì)胞和其他大多數(shù)的干細(xì)胞相比,具有更好的軟骨再生能力。關(guān)于軟骨祖細(xì)胞的相關(guān)研究還停留在比較早期的階段,需要進(jìn)一步的研究來闡釋其在軟骨再生中的作用。因?yàn)閼?yīng)用自體軟骨祖細(xì)胞修復(fù)軟骨缺損同樣面臨損傷健康軟骨區(qū)域和二次手術(shù)等一系列問題,因此在克服細(xì)胞免疫排斥問題或者證明該細(xì)胞本身具有較低的免疫原性的基礎(chǔ)之上,應(yīng)用同種異體軟骨祖細(xì)胞修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨缺損可能是未來較為有希望的方法之一。

      2 干細(xì)胞成軟骨分化

      干細(xì)胞的多項(xiàng)分化潛能和自我復(fù)制能力是其成為良好組織工程軟骨種子細(xì)胞的基礎(chǔ),將干細(xì)胞誘導(dǎo)成為軟骨細(xì)胞樣的細(xì)胞是構(gòu)建組織工程軟骨的重要因素。干細(xì)胞根據(jù)其發(fā)育階段,可分為胚胎干細(xì)胞(embryonic stem cells,ESCs)和成體干細(xì)胞(adult stem cells,ASCs)。胚胎干細(xì)胞的優(yōu)勢在于無限制的自我更新能力和多能性,通過對其成軟骨誘導(dǎo)可以產(chǎn)生足量的軟骨細(xì)胞。未經(jīng)處理的胚胎干細(xì)胞存在致瘤性和較高發(fā)生畸胎瘤的風(fēng)險(xiǎn),因此應(yīng)用穩(wěn)定和有效的培養(yǎng)條件來擴(kuò)增和誘導(dǎo)其向特定的軟骨系分化至關(guān)重要。許多不同的策略被單一或聯(lián)合應(yīng)用于誘導(dǎo)胚胎干細(xì)胞向軟骨系分化:①通過胚胎小體的形成。這種策略模仿胚胎發(fā)育的早期,即上胚層、中胚層和下胚層的形成;②通過胚胎干細(xì)胞生成間充質(zhì)干細(xì)胞?;陂g充質(zhì)干細(xì)胞所具有的免疫豁免特性和更高的安全性考慮,有學(xué)者已經(jīng)研究出了從胚胎干細(xì)胞派生出間充質(zhì)干細(xì)胞,并向軟骨分化和應(yīng)用到軟骨組織工程修復(fù)的技術(shù);③生長因子和細(xì)胞活素。應(yīng)用最多的是 TGFβ 家族,主要是 TGFβ-1 和 TGFβ-2。另外還有 BMP 家族,主要是BMP-2、BMP-4 和 BMP-6。其他的還有 PDGF-bb、IGF-1和 SHH(Sonic Hedgehog Protein);④與成體干細(xì)胞類似的策略,如與軟骨細(xì)胞或纖維細(xì)胞共培養(yǎng)以及改變細(xì)胞微環(huán)境的 3D 培養(yǎng)、低氧誘導(dǎo)、力學(xué)刺激等[12]。

      iPSs 可以通過基因改造任何體細(xì)胞而獲得。iPSs 與ESCs 相比較,其優(yōu)勢在于兼具無限自我復(fù)制和多能性,且不存在倫理學(xué)問題。iPSs 最早是通過改變小鼠成纖維細(xì)胞4 個(gè)相關(guān)因子(Oct3/4、Klf-4、c-Myc、Sox-2)獲得[13]。這是一項(xiàng)在干細(xì)胞領(lǐng)域中具有突破性的研究成果,也為基因治療和組織工程相關(guān)的研究提供了新的工具。體細(xì)胞、成纖維細(xì)胞和軟骨細(xì)胞都已經(jīng)被改造重新編程為 iPSs 且能夠誘導(dǎo)分化成軟骨系。通過皮膚成纖維細(xì)胞產(chǎn)生的 iPSs 誘導(dǎo)成為軟骨細(xì)胞,同時(shí)根據(jù) HLA 表型,建立一個(gè) iPSs 庫,該細(xì)胞庫能夠提供同種異體 iPSs 應(yīng)用于軟骨組織再生研究。該細(xì)胞庫的應(yīng)用和傳統(tǒng)組織工程軟骨再生相比,能夠減少花費(fèi)同時(shí)也能夠覆蓋大量患病人群[14]。已有相關(guān)研究表明軟骨細(xì)胞來源的 iPSs 系與其他細(xì)胞來源的 iPSs 系相比能夠更高地表達(dá)蛋白多糖基因,同時(shí)軟骨細(xì)胞來源 iPSs 系的軟骨相關(guān)基因的表達(dá)與軟骨形成相關(guān)基因無差別。通過進(jìn)一步探究其生物學(xué)特性,建立分化策略,優(yōu)化生產(chǎn)程序,最終實(shí)現(xiàn)生產(chǎn)足夠的、有功能的 iPSs 源性軟骨細(xì)胞樣細(xì)胞種群。未來,iPSs 有希望成為一種新穎的、較安全的組織工程軟骨種子細(xì)胞[14]。

      MSCs 目前被認(rèn)為是最有希望實(shí)現(xiàn)軟骨再生的細(xì)胞,已經(jīng)被應(yīng)用到臨床中并取得良好的效果。MSCs 向軟骨細(xì)胞分化是通過某些分子和細(xì)胞活素(其中起主要作用的是生長因子)、細(xì)胞所處的微環(huán)境所誘導(dǎo)。不同的生長因子在 MSCs向軟骨分化的不同階段起到了不同的作用[15-16]:①起始階段,起作用的因子包括 TGFβ、FGF-2、FGF-4、FGF-8、FGF-10、Wnt-3a、Wnt-4a、Wnt-7a、SHH、BMP-2、BMP-4、BMP-7。所起的作用主要是募集和凝聚 MSCs 以及促進(jìn)MSCs 的增殖。②早期成軟骨階段,起作用的因子包括IGF-1、BMP-2、BMP-4、BMP-7、FGF-2/FGFR-2、GDF-5。所起作用是成軟骨細(xì)胞到軟骨細(xì)胞的分化過程以及軟骨祖細(xì)胞的增殖。③中后期成軟骨階段,起作用的因子包括FGF-18、FGFR-3、BMP-2、BMP-7、Ihh、PTHrP-R。所起的作用是向成熟的軟骨細(xì)胞分化。MSCs 最先是從骨髓組織中分離出來,也可以從其他組織中提取,包括脂肪組織、胎盤組織、臍帶組織、臍帶血、外周血、羊膜等。這些細(xì)胞的成軟骨特性均已研究證實(shí)。通過 MSCs 黏附和大規(guī)模培養(yǎng)的特性,可以將其分離出來,盡管沒有特定的表面標(biāo)記來分選該群細(xì)胞,國際細(xì)胞治療協(xié)會(huì)(International Society of Cellular Therapy)定義了 MSCs 需陽性表達(dá) CD105、CD73、CD90,陰性表達(dá) CD45、CD34、CD14、CD19、CD11b 和HLA-DR。由于缺乏特定的標(biāo)志物來識(shí)別 MSCs 細(xì)胞群,因此想要明確地比較不同組織來源的 MSCs 在成軟骨的相似性和區(qū)別性較為困難[17]。成熟的軟骨細(xì)胞定居于軟骨組織中,軟骨細(xì)胞之所以能夠維持其細(xì)胞表型與定居的微環(huán)境密切相關(guān)[18],包括特殊的細(xì)胞外基質(zhì)、低氧的環(huán)境[19]、力學(xué)刺激[15]以及特殊的形態(tài)學(xué)結(jié)構(gòu)。因此,MSCs 所處的微環(huán)境對其向軟骨分化起到了特定的作用,包括“3D”培養(yǎng)模式、ECM 支架培養(yǎng)、低氧環(huán)境、力學(xué)刺激等。另外共培養(yǎng)[20]作為一種較為新穎的培養(yǎng)模式,目的在于利用軟骨細(xì)胞和 MSCs 各自優(yōu)勢,實(shí)現(xiàn)軟骨細(xì)胞對 MSCs 的誘導(dǎo)作用,同時(shí)實(shí)現(xiàn) MSCs 促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖作用。

      MSCs 一直被認(rèn)為是軟骨修復(fù)的“萬能藥”,但許多結(jié)果卻不及預(yù)期。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),MSCs 自身存在著軟骨內(nèi)成骨的分化程序,軟骨內(nèi)成骨伴隨著軟骨細(xì)胞的肥大,肥大的軟骨細(xì)胞不適合作為組織工程軟骨的種子細(xì)胞[21],因此,MSCs 向軟骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化成軟骨過程中,軟骨細(xì)胞肥大問題是影響誘導(dǎo)效果的關(guān)鍵因素之一,同時(shí)也是制約誘導(dǎo)后的干細(xì)胞在臨床應(yīng)用的限制性因素之一。許多用來抑制軟骨細(xì)胞肥大策略都被證明是有效的,例如蛋白或基因水平的干預(yù)(PTHrP、TGFβ、Sox-9),細(xì)胞共培養(yǎng)(軟骨細(xì)胞和干細(xì)胞),培養(yǎng)膜的應(yīng)用(硫酸軟骨素和軟骨細(xì)胞外基質(zhì)),低氧環(huán)境,生物力學(xué)刺激等[22]。然而,通過干細(xì)胞的誘導(dǎo)還不能產(chǎn)生像透明軟骨一樣的完全正常的軟骨組織。因此,應(yīng)用基于干細(xì)胞的組織工程軟骨修復(fù)技術(shù)達(dá)到完美的軟骨修復(fù)還將面臨著巨大的挑戰(zhàn)。

      3 干細(xì)胞軟骨修復(fù)的臨床應(yīng)用

      成體干細(xì)胞(ASCs)最先應(yīng)用于臨床治療,與 ESCs和 iPSs 細(xì)胞相比具有更高的安全性。MSCs 作為 ASCs中最具代表性的干細(xì)胞被廣泛應(yīng)用于臨床軟骨再生之中。MSCs 可來源于各種組織,如骨髓、脂肪、胎盤、臍帶血、滑膜、外周血、肌腱、軟骨等。如表 1 所示,到目前為止,用于軟骨損傷臨床治療的干細(xì)胞有 BMSCs、脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞(ADSCs)、SMSCs、外周血干細(xì)胞(PBMSCs)和hCDPCs 等,均取得了較為滿意的修復(fù)效果。BMSCs 修復(fù)軟骨損傷的臨床應(yīng)用較早,且取得了滿意的修復(fù)效果。近年來也有應(yīng)用同種異體的 BMSCs 來治療骨性關(guān)節(jié)炎的相關(guān)研究。ADSCs 相比較 BMSCs 在治療軟骨損傷方面有一定的優(yōu)勢,如避免骨質(zhì)疏松所導(dǎo)致的 BMSCs 數(shù)量和質(zhì)量的下降,血管基質(zhì)片段細(xì)胞(stromal vascular fraction,SVF)不經(jīng)體外培養(yǎng)治療軟骨傷安全性更高,吸脂術(shù)后的脂肪組織作為醫(yī)療廢棄物得到重新利用等。PBMSCs 易于獲取,且可以通過一次手術(shù)完成修復(fù),這也是該細(xì)胞應(yīng)用于臨床的一大優(yōu)勢所在。應(yīng)用 SMSCs 和 CDPCs 修復(fù)軟骨損傷的報(bào)道較少,與其他 MSCs 相比較,其優(yōu)勢和劣勢需要更多的臨床試驗(yàn)來驗(yàn)證。但由于 CDPCs 起源于軟骨組織本身,具有更好的向軟骨分化的能力,可能是一種比較有潛力的細(xì)胞。用干細(xì)胞修復(fù)軟骨損傷,修復(fù)的部位主要包括膝關(guān)節(jié)的軟骨、半月板以及踝關(guān)節(jié)距骨的軟骨。損傷的類型主要是單純局限性的軟骨損傷或者骨性關(guān)節(jié)炎的早期。細(xì)胞到達(dá)損傷部位的方式主要有單純干細(xì)胞的直接注射、細(xì)胞混合透明質(zhì)酸(HA)、細(xì)胞混合富集血小板(PRP)、細(xì)胞混合纖維蛋白膠和細(xì)胞復(fù)合膠原支架材料。目前應(yīng)用各種干細(xì)胞治療軟骨損傷還僅僅局限于應(yīng)用未經(jīng)處理或單純體外擴(kuò)增培養(yǎng)的干細(xì)胞,雖然實(shí)驗(yàn)室中已經(jīng)證實(shí)了干細(xì)胞誘導(dǎo)成軟骨的可行性和安全性,但尚未有體外誘導(dǎo)干細(xì)胞成軟骨應(yīng)用于臨床的報(bào)道。其中最主要的限制在于誘導(dǎo)后細(xì)胞的不穩(wěn)定性[49](易退變和成瘤),以及更進(jìn)一步的安全性得不到有效的證明。因此,需要更多的研究證據(jù)來證明誘導(dǎo)干細(xì)胞成軟骨后的安全性。

      表 1 近年來干細(xì)胞在軟骨再生方面的臨床試驗(yàn)研究

      續(xù)表 1

      4 結(jié)論與展望

      干細(xì)胞的相關(guān)研究是軟骨再生中的重要基礎(chǔ)性研究之一。盡管目前干細(xì)胞在軟骨修復(fù)過程中所起到的作用以及具體起作用的機(jī)制并不是很清楚,且不同種類的干細(xì)胞在臨床上得到應(yīng)用的可能性和限制性尚存在很大爭議,但干細(xì)胞在該領(lǐng)域的許多優(yōu)勢是顯而易見的。MSCs 作為干細(xì)胞軟骨再生領(lǐng)域應(yīng)用最為廣泛的種子細(xì)胞,其安全性和有效性在基礎(chǔ)研究和臨床研究中都得到了較可靠的證據(jù)。雖然許多應(yīng)用干細(xì)胞修復(fù)軟骨損傷臨床試驗(yàn)的相關(guān)研究取得了令人滿意的療效,但仍需更大樣本量和更長隨訪時(shí)間的臨床研究來進(jìn)一步證明干細(xì)胞在軟骨修復(fù)中的安全性和有效性。

      [1] Goldring MB, Goldring SR. Articular cartilage and subchondral bone in the pathogenesis of osteoarthritis. Ann N Y Acad Sci, 2010, 1192:230-237.

      [2] Welch T, Mandelbaum B, Tom M. Autologous chondrocyte implantation: past, present, and future. Sports Med Arthrosc, 2016,24(2):85-91.

      [3] Brittberg M, Lindahl A, Nilsson A, et al. Treatment of deep cartilage defects in the knee with autologous chondrocyte transplantation. N Engl J Med, 1994, 331(14):889-895.

      [4] Richardson SM, Kalamegam G, Pushparaj PN, et al. Mesenchymal stem cells in regenerative medicine: Focus on articular cartilage and intervertebral disc regeneration. Methods, 2016, 99:69-80.

      [5] Dowthwaite GP, Bishop JC, Redman SN, et al. The surface of articular cartilage contains a progenitor cell population. J Cell Sci,2004, 117(Pt 6):889-897.

      [6] Koelling S, Kruegel J, Irmer M, et al. Migratory chondrogenic progenitor cells from repair tissue during the later stages of human osteoarthritis. Cell Stem Cell, 2009, 4(4):324-335.

      [7] Williams R, Khan IM, Richardson K, et al. Identification and clonal characterisation of a progenitor cell sub-population in normal human articular cartilage. PLoS One, 2010, 5(10):e13246.

      [8] Yu Y, Zheng H, Buckwalter JA, et al. Single cell sorting identifies progenitor cell population from full thickness bovine articular cartilage. Osteoarthritis Cartilage, 2014, 22(9):1318-1326.

      [9] McCarthy HE, Bara JJ, Brakspear K, et al. The comparison of equine articular cartilage progenitor cells and bone marrow-derived stromal cells as potential cell sources for cartilage repair in the horse. Vet J,2012, 192(3):345-351.

      [10] Zhou C, Zheng H, Seol D, et al. Gene expression profiles reveal that chondrogenic progenitor cells and synovial cells are closely related. J Orthop Res, 2014, 32(8):981-988.

      [11] Jiang Y, Cai Y, Zhang W, et al. Human cartilage-derived progenitor cells from committed chondrocytes for efficient cartilage repair and regeneration. Stem Cells Transl Med, 2016, 5(6):733-744.

      [12] Fu C, Yan Z, Xu H, et al. Isolation, identification and differentiation of human embryonic cartilage stem cells. Cell Biol Int, 2015, 39(7):777-787.

      [13] Takahashi K, Yamanaka S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell,2006, 126(4):663-676.

      [14] Tsumaki N, Okada M, Yamashita A. iPS cell technologies and cartilage regeneration. Bone, 2015, 70:48-54.

      [15] Panadero JA, Lanceros-Mendez S, Ribelles JL. Differentiation of mesenchymal stem cells for cartilage tissue engineering: Individual and synergetic effects of three-dimensional environment and mechanical loading. Acta Biomater, 2016, 33:1-12.

      [16] Augustyniak E, Trzeciak T, Richter M, et al. The role of growth factors in stem cell-directed chondrogenesis: a real hope for damaged cartilage regeneration. Int Orthop, 2015, 39(5):995-1003.

      [17] Seo S, Na K. Mesenchymal stem cell-based tissue engineering for chondrogenesis. J Biomed Biotechnol, 2011, 2011:806891.

      [18] Zhou M, Yuan X, Yin H, et al. Restoration of chondrocytic phenotype on a two-dimensional micropatterned surface. Biointerphases, 2015,10(1):011003.

      [19] Shang J, Liu H, Li J, et al. Roles of hypoxia during the chondrogenic differentiation of mesenchymal stem cells. Curr Stem Cell Res Ther,2014, 9(2):141-147.

      [20] Hubka KM, Dahlin RL, Meretoja VV, et al. Enhancing chondrogenic phenotype for cartilage tissue engineering: monoculture and coculture of articular chondrocytes and mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part B Rev, 2014, 20(6):641-654.

      [21] Chen S, Fu P, Cong R, et al. Strategies to minimize hypertrophy in cartilage engineering and regeneration. Genes Dis, 2015, 2(1):76-95.

      [22] Sun MM, Beier F. Chondrocyte hypertrophy in skeletal development,growth, and disease. Birth Defects Res C Embryo Today, 2014, 102(1):74-82.

      [23] Davatchi F, Sadeghi Abdollahi B, Mohyeddin M, et al. Mesenchymal stem cell therapy for knee osteoarthritis: 5 years follow-up of three patients. Int J Rheum Dis, 2016, 19(3):219-225.

      [24] Vega A, Martín-Ferrero MA, Del Canto F, et al. Treatment of knee osteoarthritis with allogeneic bone marrow mesenchymal stem cells: A Randomized Controlled Trial. Transplantation, 2015, 99(8):1681-1690.

      [25] Vangsness CT Jr, Farr J 2nd, Boyd J, et al. Adult human mesenchymal stem cells delivered via intra-articular injection to the knee following partial medial meniscectomy: a randomized, double-blind, controlled study. J Bone Joint Surg Am, 2014, 96(2):90-98.

      [26] Orozco L, Munar A, Soler R, et al. Treatment of knee osteoarthritiswith autologous mesenchymal stem cells: two-year follow-up results. Transplantation, 2014, 97(11):e66-e68.

      [27] Wong KL, Lee KB, Tai BC, et al. Injectable cultured bone marrow-derived mesenchymal stem cells in varus knees with cartilage defects undergoing high tibial osteotomy: a prospective, randomized controlled clinical trial with 2 years' follow-up. Arthroscopy, 2013,29(12):2020-2028.

      [28] Richter M, Zech S. Matrix-associated stem cell transplantation(MAST) in chondral defects of foot and ankle is effective. Foot Ankle Surg, 2013, 19(2):84-90.

      [29] Lee KB, Wang VT, Chan YH, et al. A novel, minimally-invasive technique of cartilage repair in the human knee using arthroscopic microfracture and injections of mesenchymal stem cells and hyaluronic acid--a prospective comparative study on safety and short-term efficacy. Ann Acad Med Singapore, 2012, 41(11):511-517.

      [30] Sekiya I, Muneta T, Horie M, et al. Arthroscopic transplantation of synovial stem cells improves clinical outcomes in knees with cartilage defects. Clin Orthop Relat Res, 2015, 473(7):2316-2326.

      [31] Koh YG, Kwon OR, Kim YS, et al. Adipose-derived mesenchymal stem cells with microfracture versus microfracture alone: 2-Year Follow-up of a Prospective Randomized Trial. Arthroscopy, 2016,32(1):97-109.

      [32] Kim YS, Choi YJ, Lee SW, et al. Assessment of clinical and MRI outcomes after mesenchymal stem cell implantation in patients with knee osteoarthritis: a prospective study. Osteoarthritis Cartilage, 2016,24(2):237-245.

      [33] Michalek J, Moster R, Lukac L, et al. Autologous adipose tissue-derived stromal vascular fraction cells application in patients with osteoarthritis. Cell Transplant, 2015. [Epub ahead of print]

      [34] Koh YG, Choi YJ, Kwon SK, et al. Clinical results and second-look arthroscopic findings after treatment with adipose-derived stem cells for knee osteoarthritis. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc, 2015,23(5):1308-1316.

      [35] Kim YS, Choi YJ, Suh DS, et al. Mesenchymal stem cell implantation in osteoarthritic knees: is fibrin glue effective as a scaffold? Am J Sports Med, 2015, 43(1):176-185.

      [36] Kim YS, Choi YJ, Koh YG. Mesenchymal stem cell implantation in knee osteoarthritis: an assessment of the factors influencing clinical outcomes. Am J Sports Med, 2015, 43(9):2293-2301.

      [37] Pak J, Lee JH, Lee SH. Regenerative repair of damaged meniscus with autologous adipose tissue-derived stem cells. Biomed Res Int,2014, 2014:436029.

      [38] Koh YG, Choi YJ, Kwon OR, et al. Second-look arthroscopic evaluation of cartilage lesions after mesenchymal stem cell implantation in osteoarthritic knees. Am J Sports Med, 2014, 42(7):1628-1637.

      [39] Kim YS, Lee HJ, Choi YJ, et al. Does an injection of a stromal vascular fraction containing adipose-derived mesenchymal stem cells influence the outcomes of marrow stimulation in osteochondral lesions of the talus? A clinical and magnetic resonance imaging study. Am J Sports Med, 2014, 42(10):2424-2434.

      [40] Jo CH, Lee YG, Shin WH, et al. Intra-articular injection of mesenchymal stem cells for the treatment of osteoarthritis of the knee:a proof-of-concept clinical trial. Stem Cells, 2014, 32(5):1254-1266.

      [41] Pak J, Chang JJ, Lee JH, et al. Safety reporting on implantation of autologous adipose tissue-derived stem cells with platelet-rich plasma into human articular joints. BMC Musculoskelet Disord, 2013,14:337.

      [42] Koh YG, Jo SB, Kwon OR, et al. Mesenchymal stem cell injections improve symptoms of knee osteoarthritis. Arthroscopy, 2013, 29(4):748-755.

      [43] Kim YS, Park EH, Kim YC, et al. Clinical outcomes of mesenchymal stem cell injection with arthroscopic treatment in older patients with osteochondral lesions of the talus. Am J Sports Med, 2013, 41(5):1090-1099.

      [44] Koh YG, Choi YJ. Infrapatellar fat pad-derived mesenchymal stem cell therapy for knee osteoarthritis. Knee, 2012, 19(6):902-907.

      [45] Fu WL, Ao YF, Ke XY, et al. Repair of large full-thickness cartilage defect by activating endogenous peripheral blood stem cells and autologous periosteum flap transplantation combined with patellofemoral realignment. Knee, 2014, 21(2):609-612.

      [46] Turajane T, Chaweewannakorn U, Larbpaiboonpong V, et al. Combination of intra-articular autologous activated peripheral blood stem cells with growth factor addition/preservation and hyaluronic acid in conjunction with arthroscopic microdrilling mesenchymal cell stimulation Improves quality of life and regenerates articular cartilage in early osteoarthritic knee disease. J Med Assoc Thai, 2013, 96(5):580-588.

      [47] Saw KY, Anz A, Siew-Yoke Jee C, et al. Articular cartilage regeneration with autologous peripheral blood stem cells versus hyaluronic acid: a randomized controlled trial. Arthroscopy, 2013,29(4):684-694.

      [48] Skowroński J, Skowroński R, Rutka M. Cartilage lesions of the knee treated with blood mesenchymal stem cells - results. Ortop Traumatol Rehabil, 2012, 14(6):569-577.

      [49] Somoza RA, Welter JF, Correa D, et al. Chondrogenic differentiation of mesenchymal stem cells: challenges and unfulfilled expectations. Tissue Eng Part B Rev, 2014, 20(6):596-608.

      10.3969/j.issn.1673-713X.2016.05.013

      國家自然科學(xué)基金重點(diǎn)項(xiàng)目(2113404);國家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(81472092)

      100853 北京,解放軍總醫(yī)院骨科研究所北京市再生醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/全軍戰(zhàn)創(chuàng)傷重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室

      郭全義,Email:doctorguo_301@163.com

      2016-07-27

      同為第一作者

      猜你喜歡
      祖細(xì)胞軟骨干細(xì)胞
      干細(xì)胞:“小細(xì)胞”造就“大健康”
      造血干細(xì)胞移植與捐獻(xiàn)
      鞍區(qū)軟骨黏液纖維瘤1例
      干細(xì)胞產(chǎn)業(yè)的春天來了?
      原發(fā)肺軟骨瘤1例報(bào)告并文獻(xiàn)復(fù)習(xí)
      Wnt3a基因沉默對內(nèi)皮祖細(xì)胞增殖的影響
      內(nèi)皮祖細(xì)胞在缺血性腦卒中診治中的研究進(jìn)展
      干細(xì)胞治療有待規(guī)范
      懸滴和懸浮法相結(jié)合培養(yǎng)胰腺祖細(xì)胞
      微環(huán)境在體外大量擴(kuò)增晚期內(nèi)皮祖細(xì)胞中的作用
      九江县| 临西县| 大方县| 辽阳市| 吴忠市| 衡南县| 宁津县| 丹阳市| 东安县| 鄯善县| 六安市| 周口市| 丰城市| 且末县| 梅州市| 福安市| 鸡泽县| 长宁县| 来凤县| 珲春市| 米脂县| 抚松县| 龙里县| 孟连| 新乡市| 浪卡子县| 方正县| 凤冈县| 和硕县| 丽江市| 尚义县| 德清县| 肇庆市| 通许县| 随州市| 大理市| 天台县| 乌鲁木齐市| 桓台县| 微博| 乐昌市|