周寧菱,邵建軍,陳紅兵,吳志華,周 煌,4
(1.景德鎮(zhèn)市市場和質(zhì)量監(jiān)督管理局,江西 景德鎮(zhèn) 333000;2.景德鎮(zhèn)市食品藥品檢驗所,江西 景德鎮(zhèn) 333000;3.南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國家重點實驗室,江西 南昌 330047;4.吉安職業(yè)技術(shù)學(xué)院,江西 吉安 343000)
利用連續(xù)提取法定量花生蛋白
周寧菱1,2,3,邵建軍1,2,陳紅兵3,吳志華3,周 煌3,4
(1.景德鎮(zhèn)市市場和質(zhì)量監(jiān)督管理局,江西 景德鎮(zhèn) 333000;2.景德鎮(zhèn)市食品藥品檢驗所,江西 景德鎮(zhèn) 333000;3.南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國家重點實驗室,江西 南昌 330047;4.吉安職業(yè)技術(shù)學(xué)院,江西 吉安 343000)
為了建立一個數(shù)學(xué)模型,用于計算花生基質(zhì)中蛋白含量,實驗將花生脫脂粉進(jìn)行五步連續(xù)提取,利用Bradford法和SDS-PAGE,分別定量出每次花生提取液中可提取的蛋白、花生過敏原蛋白Ara h 3/4和Ara h 6,用于分析提取量與提取次數(shù)的關(guān)系。結(jié)果顯示,每次蛋白提取量可用等比數(shù)列an=a1qn-1表示,根據(jù)等比數(shù)列求和公式可計算出可提取的總蛋白量。因此,利用五步連續(xù)提取法獲得的數(shù)學(xué)模型可作為一種計算花生基質(zhì)中蛋白含量的方法。
花生蛋白;定量;提取;Ara h 3/4;Ara h 6
花生中含25%—36%蛋白[1],含量高且營養(yǎng)價值豐富,受到廣泛重視和利用?;ㄉ鞍椎慕M分、含量、結(jié)構(gòu)和性質(zhì)是進(jìn)行生物研究和精深加工的重要基礎(chǔ)。通常,花生粗蛋白可采用凱氏定氮法,花生提取液中總蛋白量可采用Bradford法[2]和BCA法[3]等方法,單種蛋白可配合灰度分析法計算,另外花生提取液中過敏原含量可采用ELISA法[4]。在上述定量方法中,凱氏定氮法主要用于測定固體基質(zhì)中蛋白量,但耗時,靈敏度不高;Bradford法和ELISA法均具有快速、易操作、高靈敏度、干擾少等特點,受到實驗室廣泛的運用,但兩者只能檢測提取液中蛋白量,不能反映花生基質(zhì)中總蛋白或者單種蛋白含量的完整信息。而在花生蛋白研究中,定量基質(zhì)中的蛋白是非常重要的。遺憾的是,目前,尚未見檢測花生基質(zhì)中單種蛋白的定量檢測方法的相關(guān)報道。
在蛋白提取過程中,提取次數(shù)、溫度、速率、時間、提取劑等因素均會影響提取效果[5],導(dǎo)致提取出的蛋白含量或種類存在差異。在以往的研究中,大部分是通過優(yōu)化提取條件,增加提取量,但未見對提取次數(shù)與蛋白提取量關(guān)系進(jìn)行研究的相關(guān)報道。因此,本研究以花生單種蛋白Ara h 3/4[6]和 Ara h 6[7]為例,采用五次連續(xù)提取蛋白實驗,探究經(jīng)多次提取后花生蛋白含量和種類的變化規(guī)律,以期建立一個數(shù)學(xué)模型,用于計算出花生基質(zhì)中蛋白的含量。
2.1 材料
22個品種花生
2.2 儀器與設(shè)備
高速冷凍離心機(jī)(美國Beckman公司);RH basic 2 S25型磁力攪拌器(德國IKA LABORTECHNIK);TS-3型脫色搖床(海門市麒麟醫(yī)用儀器廠);FDV型超細(xì)粉碎機(jī)(北京興時利和科技發(fā)展有限公司);迷你蛋白電泳儀(美國Bio-Rad公司);GS-800掃描儀(北京宇艾奇科技有限公司);BR 680型酶標(biāo)儀(美國Bio-Rad公司);MVS-1型漩渦混合器(北京北德有限公司);PB-10型pH計(德國Sartorius公司)。
2.3 實驗方法
2.3.1 花生蛋白的提取[8]
(1)花生脫脂
花生仁(贛花7號),去種皮,用低溫粉碎機(jī)粉碎,用丙酮按1:5(W/V)低溫攪拌,脫脂2 h,低溫離心30 min,棄上清,取沉淀重復(fù)脫脂2次,最終將沉淀自然風(fēng)干得花生脫脂粉,-20 ℃下凍存?zhèn)溆谩?/p>
(2)花生蛋白的連續(xù)提取方法
花生脫脂粉2.00 g用浸提液(50 mM Tris-HCl緩沖液,(pH8.0) ,1:5 (W/V))低溫浸提2 h,低溫離心30 min,所得上清液即為第一次提取液。剩下沉淀同提取步驟一繼續(xù)提取,連續(xù)提取四次,記錄每次提取液體積。所得提取蛋白液分別凍存于-20 ℃下以備用。
2.3.2 花生蛋白含量的測定
花生粗蛋白含量采用凱氏定氮法測定,測得的含氮量乘以蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)化系數(shù)即為粗蛋白含量,此處蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)化系數(shù)定為5.46[9]。
花生蛋白提取液濃度采用Bio-Rad公司的商業(yè)化定量試劑盒測定,原理為Bradford蛋白測定法。所有蛋白含量測定均重復(fù)三次。
2.3.3 SDS-PAGE
5次蛋白提取液進(jìn)行SDS-PAGE[10]實驗,根據(jù)蛋白電泳凝膠的圖像,對提取液進(jìn)行定性和定量分析。其中Ara h 3/4和Ara h 6的相對含量借助quantity one軟件計算。
2.3.4 不同品種花生的蛋白提取
選取21個花生品種(泉花726,沙坡,忻縣大花生,ICGV87281,8405-3,大倫花生1 ,桂花22,白馬紅,桂花26,西農(nóng)花,桂花H771,升平,7501-11,閩花6號,秧道紅,猛豆,昌花1號,邦機(jī)紅,魯花,0475,桂花30)進(jìn)行上述的脫脂、連續(xù)提取、蛋白含量的測定及SDS-PAGE實驗。
3.1 花生總蛋白的數(shù)量分析
通過凱氏定氮法測得2 g桂花26花生脫脂粉中含粗蛋白1 050.1±13.1 mg?;ㄉ撝劢?jīng)五次連續(xù)提取后,提取液濃度采用Bradford蛋白定量法測定,其測得的蛋白量(±標(biāo)準(zhǔn)差SD)分別是700.93±46.95 mg、198.09±23.46 mg、67.99±16.28 mg、24.35±9.00 mg、9.96±1.18 mg。五次提取液中可提取的蛋白量合計1 001.3 mg,略低于花生粗蛋白量。其中,第一次提取液中含有的蛋白量約占66.8%的粗蛋白,而第三次提取的蛋白量只占粗蛋白量的6.5%。因此,在以前的蛋白提取率研究中,經(jīng)第二次提取后剩余的殘渣中含有的蛋白量極少,一般都會被丟棄。
實驗結(jié)果如圖1所示,花生蛋白經(jīng)連續(xù)提取后,其提取率分別為66.8%、56.7%、45.0%、29.3%和17.0%,呈現(xiàn)良好的負(fù)線性關(guān)系(y=-12.694x+81.054,R2=0.994 3,其中x代表提取次數(shù),y代表蛋白提取率)。由此可見,在理論上,經(jīng)多次提取,花生蛋白是可以被完全提取的。同時,由圖1可知,蛋白提取量與提取次數(shù)的關(guān)系可用指數(shù)關(guān)系式y(tǒng)=1 792.5e-1.060 3x(R2=0.996 0,其中x代表提取次數(shù),y代表蛋白提取量)表示。隨著提取次數(shù)的增加,蛋白的提取量顯著降低。多次重復(fù)實驗結(jié)果顯示,這種規(guī)律可用指數(shù)方程的公式y(tǒng)=Aekx(A和k為常數(shù))表示。當(dāng)提取次數(shù)x從1次逐漸增加到5次時,蛋白提取量分別為Aek,Ae2k,Ae3k,Ae4k,Ae5k,這種數(shù)據(jù)變化趨勢可用數(shù)學(xué)中的等比數(shù)列通式an=a1qn-1表示,a1=Aek,q=ek, 當(dāng)x趨于無窮大時即提取無數(shù)次,可用等比數(shù)列求和公式Sn=a1/(1-q)計算出花生基質(zhì)中可提取的蛋白量為945.1 mg,約占粗蛋白量的90.0%,基于花生基質(zhì)中含有無法提取的結(jié)構(gòu)蛋白或者不溶性蛋白,此計算數(shù)據(jù)是合理的。
圖1 蛋白提取量與提取率在連續(xù)提取中的變化
3.2 花生蛋白Ara h 3/4和Ara h 6的含量分析
五次連續(xù)提取液經(jīng)測定濃度后,進(jìn)行SDS-PAGE實驗,如圖2所示。從圖2可知,每次提取液的蛋白譜圖的模式相似,即蛋白組分種類并沒有顯著差異。而利用quantity one軟件分析,可知過敏原Ara h 3/4和Ara h 6占每次提取液中的含量比存在一定的差異。在1-5次提取液中,Ara h 3/4的含量百分比分別為27.76±1.7%,31.95±1.85%,38.30±4.19%,38.83±5.74%,45.80±7.52%,隨著提取次數(shù)的增加,Ara h 3/4的含量比逐漸增加,呈現(xiàn)良好的正相關(guān)性y=4.295x+23.65(R2=0.959 9);而Ara h 6的含量百分比分別為6.90±0.68%,6.26±0.89%,6.92±0.99%,6.60±0.53%,6.79±0.95%,五次含量比的偏差在0.28,變化并不顯著。由此可見,提取次數(shù)不同,每次提取液中蛋白組分的含量比存在一定的差異。
由圖3可看出Ara h 3/4的提取量與提取次數(shù)呈現(xiàn)指數(shù)相關(guān)性,方程為y= 450.7e-0.940 7x,R2=0.995 5。由于總蛋白與過敏原蛋白Ara h 3/4、Ara h 6的提取過程是在同一條件下,因此,利用數(shù)學(xué)模型計算花生基質(zhì)中蛋白量的方法也適用于Ara h 3/4和Ara h 6。因此,通過指數(shù)方程y=Aekx與求和公式Sn=a1/(1-q),可計算出花生基質(zhì)中Ara h 3/4的含量約為286.0 mg,約占粗蛋白的27.2%。同時,Ara h 6的提取量與提取次數(shù)也呈現(xiàn)相似的指數(shù)相關(guān)性,方程為y=119.12e-1.0582 x(R2=0.993 9),利用數(shù)學(xué)模型計算出花生基質(zhì)中Ara h 6的含量約為63.0 mg,約占粗蛋白量的6.0%。
圖3 Ara h 3/4和Ara h 6在連續(xù)提取中提取量的變化
3.3 不同花生品種的蛋白含量分析
為了驗證蛋白提取量與提取次數(shù)之間的指數(shù)相關(guān)性的真實性,除了利用重復(fù)實驗驗證外,還探索了不同品種花生經(jīng)脫脂、連續(xù)提取后,蛋白提取量與提取次數(shù)的關(guān)系。
由表1可知,隨機(jī)選取的21份花生品種均存在此類規(guī)律,即蛋白提取量與提取次數(shù)的關(guān)系均可用指數(shù)方程式表示,相關(guān)性的變化幅度為0.92—0.99。方程式計算的蛋白量與粗蛋白量的比值變化幅度為89%—130%,對于大部分花生品種,該比值集中于100%—110%。由此可見,蛋白提取量與提取次數(shù)的指數(shù)相關(guān)性是普遍存在于不同花生品種之間的,這進(jìn)一步驗證了利用數(shù)學(xué)模型計算花生基質(zhì)中蛋白量的可行性。
同時,在所選取的22份花生品種中,利用此數(shù)學(xué)模型計算出的粗蛋白理論值有的高于實際測定值,有的低于實際測定值。造成此結(jié)果的影響因素可能包括:第一,本實驗是利用 數(shù)學(xué)模型中擬合的指數(shù)方程y=Aekx計算蛋白量,這要求方程式具有較高的相關(guān)系數(shù)R2,而受花生品種、實驗條件、實驗操作和工作量等影響,使得一部分花生品種對應(yīng)的方程式R2并不高,影響計算結(jié)果;第二,實驗中采用的提取方法較為溫和(提取溫度4 ℃,攪拌速度低),而無法在5次提取中獲得花生基質(zhì)中的全部蛋白;第三,Bradford定量法所致,該方法原理是利用考馬斯亮藍(lán)G-250所含的疏水基團(tuán)與蛋白質(zhì)的疏水基團(tuán)之間的親和結(jié)合作用,而不同品種花生蛋白提取液中蛋白種類和性質(zhì)不同,蛋白疏水性會有所差異。同時,曾有報道,Bradford定量法可能會低估大多數(shù)種類的蛋白含量[11];第五,凱氏定氮法所致,該方法測定的是有機(jī)氮含量,測得的花生粗蛋白量可能雜含一些含氮的非蛋白物質(zhì)(硝酸鹽、亞硝酸鹽、核苷酸、核酸和多糖等),甚至一些難溶或不溶蛋白,而本實驗中計算出的蛋白量為可溶性蛋白量。
表1 不同花生品種的蛋白提取量與提取次數(shù)的關(guān)系
品種擬合方程式相關(guān)性R2凱氏定氮測定量/mg5次提取總量/mg計算總量Sn/mgSn與凱氏定氮測定量比值/%泉花726y=1176.8e-0.8995x0.9923903.31797.31806.9389.33沙坡y=753.04e-0.7122x0.9969796.68715.77725.1491.02忻縣大花生y=883.08e-0.7963x0.9920796.39726.35725.4391.09ICGV87281y=675.5e-0.6273x0.9669845.46731.24774.1791.578405?3y=1166.5e-0.8297x0.9194867.80862.07804.5192.71大倫花生1y=541.04e-0.5363x0.9750793.60698.66762.3896.07桂花22y=1011.2e-0.7686x0.9961891.45864.76874.1898.06白馬紅y=1350.6e-1.1527x0.9954633.02654.68623.3698.48桂花26y=2125.9e-1.1606x0.9899972.49999.03969.9199.74西農(nóng)花y=924.18e-0.7002x0.9852908.20867.88911.28100.34桂花H771y=1410.2e-1.0358x0.9884751.71751.73775.96103.23升平y(tǒng)=1655.7e-1.0217x0.9963860.34929.27931.26108.247501?11y=1296e-0.8712x0.9916850.45941.60932.52109.65閩花6號y=1443.7e-0.9152x0.9772865.51946.85964.22111.40秧道紅y=1065.5e-0.7695x0.9684808.44854.91919.58113.75猛豆y=1261.1e-0.7913x0.9441902.501011.051045.46115.84昌花1號y=1298.9e-0.8754x0.9894794.59955.12927.90116.78邦機(jī)紅y=1404.7e-0.9416x0.9505747.34827.30898.10120.17魯花y=2024.2e-1.0483x0.9891892.131036.851092.51122.460475y=1681e-0.8756x0.9958961.221166.281200.44124.89桂花30y=1272.7e-0.6952x0.9548974.611206.181267.49130.05
本實驗采用5次連續(xù)提取和Bradford蛋白定量法探索蛋白提取量與提取次數(shù)的關(guān)系,結(jié)果發(fā)現(xiàn)可以用指數(shù)方程式y(tǒng)=Aekx表示此關(guān)系,結(jié)合指數(shù)極限求和公式Sn=a1/(1-q)建立了一個可以計算花生基質(zhì)中蛋白含量的數(shù)學(xué)模型。在研究中,分別用粗蛋白、兩個單種蛋白和22個花生品種進(jìn)行驗證,增加數(shù)學(xué)模型的可信度。
植物基質(zhì)中單種蛋白含量的測定在蛋白研究中起著至關(guān)重要的作用,在今后的實驗中,還可對除花生以外的植物進(jìn)行探究,以期獲得相應(yīng)的數(shù)學(xué)模型計算植物基質(zhì)中蛋白含量。
[1] 劉大川. 植物蛋白工藝學(xué)[J]. 北京:中國商業(yè)出版社, 1993.
[2] Bradford M M. Rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein utilizing principle of protein-dye binding[J]. Analytical Biochemistry, 1976,72:248-254.
[3] 李海玲,彭書明,李凜,等. 4種常用蛋白濃度測定方法的比較[J]. 中國生化藥物雜志, 2008,29(4):277-282.
[4] 邵景東,孫秀蘭,張銀志,等. 酶聯(lián)免疫吸附分析法檢測花生過敏原的研究[J]. 分析科學(xué)學(xué)報,2011,27(1):89-92.
[5] 楊偉強,李鵬,袁濤,等. 從花生蛋白粉中提取花生分離蛋白的條件優(yōu)化[J]. 中國油脂, 2009,34(1):34-37.
[6] Marsh Justin,Rigby Neil,Wellner Klaus,et al. Purification and characterisation of a panel of peanut allergens suitable for use in allergy diagnosis[J]. Molecular Nutritrion Food Research, 2008,52:S272-S285.
[7] Jin Tengchuan,Guo Feng,Wei Chen Yu,et al. Crystal structure of Ara h 3, a major allergen in peanut[J]. Molecular Immunology, 2009,46(8-9):1796-1804.
[8] Luo Chunping,Hu Chunqiu,Gao Jinyan,et al. A potential practical approach to reduce Ara h 6 allergenicity by gamma irradiation[J]. Food Chemistry, 2013,136(3-4):1141-1147.
[9] Misra J B. Variation in Nitrogen-to-Protein Conversion Factor for Peanut[J]. Peanut science, 2001,28(2):48-51.
[10] Laemmliu. Cleavage of structuralproteinsduring the assembly of the head of the bacteriophage T4[J]. Nature, 1970,227:680-685.
[11] Hildebrandt S,Steinhart H,Paschke A. Comparison of different extraction solutions for the analysis of allergens in hen's egg[J]. Food Chemistry, 2007,108(4):1088-1093.
Quantification of peanut protein by sequential extraction
ZHOU Ning-ling1,2,3, SHAO Jian-Jun1,2,CHEN Hong-bing3,WU Zhi-hua3,ZHOU Huang3,4
(1. Jingdezhen Market and Quality Supervision Administration, Jingdezhen 333000, China;2. Jingdezhen Institute for Food and Drug Control, Jingdezhen 333000, China;3. State Key Laboratoryof Food Science, Nanchang University, Nanchang 330047, China;4. Ji’an Vocational and Technical College, Ji’an 343000,China)
In order to establish a mathematical model for calculating the matrix peanut protein,a five-step sequential extraction method on defatted peanut flour (DPF) was put forward in the study. After each extraction, the extracted protein, peanut allergen Ara h 3/4 and Ara h 6 were quantified by Bradford and SDS-PAGE with the aim of analyzing the relationship between the extracted protein content and extraction times. The results showed that a geometric sequencean=a1qn-1was obtained. Using the mathematical summation formula, the protein content in peanut matrix could be calculated. So, the using of five-step sequential extraction method could provide a means to quantify certain protein in peanut matrix.
peanut protein; quantification; extraction; Ara h 3/4; Ara h 6
2016-03-29.
2016-10-10.
周寧菱(1989-),女,實驗員,碩士,E-mail:zhouningling@sina.cn.
2095-7386(2016)04-0017-05
10.3969/j.issn.2095-7386.2016.04.003
TS 201.2
A