宋潔,洪海
(1第三軍醫(yī)大學(xué)西南醫(yī)院預(yù)防保健科,重慶 400038;2北京鄭常莊離職干部休養(yǎng)所衛(wèi)生所,北京 100141)
細(xì)菌生物膜是指細(xì)菌在細(xì)胞外多聚物包裹中形成的具有立體結(jié)構(gòu)的細(xì)胞群落,生物膜內(nèi)的細(xì)菌可在信號(hào)分子的調(diào)控下分工協(xié)作,使生物膜內(nèi)的細(xì)菌具有與高等細(xì)胞相似的功能[1,2]。細(xì)菌形成生物膜后可使其抗藥性成百上千倍增高,且在多糖等保護(hù)下可逃避免疫系統(tǒng)的攻擊,導(dǎo)致感染治療的失敗,這已成為抗感染領(lǐng)域的難題,臨床上85%的感染都和細(xì)菌生物膜相關(guān)[3]。
pH是肺部?jī)?nèi)環(huán)境的一個(gè)重要影響因素,人體氣道表面液體和肺泡液體pH值為6.6~6.9[4]。在疾病過(guò)程中,由于肺組織感染及呼吸性酸堿中毒等疾病的影響,患者呼吸道內(nèi)的pH值可隨病情有所改變,從而影響細(xì)菌的清除和抗菌藥物的活性[4,5]。研究發(fā)現(xiàn),肺部感染時(shí)由于細(xì)菌代謝等因素,感染局部組織呈酸性。肺炎克雷伯菌是呼吸道感染的常見(jiàn)病原菌,我們對(duì)pH值酸性條件下肺炎克雷伯菌的抗藥性及生物膜形成能力的變化進(jìn)行研究,以期為臨床醫(yī)師提供用藥指導(dǎo)。
12株肺炎克雷伯菌(K1-K12)均分離自第三軍醫(yī)大學(xué)西南醫(yī)院預(yù)防保健科呼吸科住院患者的痰液標(biāo)本。
抗菌藥物左氧氟沙星、慶大霉素和頭孢他啶購(gòu)自中國(guó)食品藥品檢定研究院。結(jié)晶紫購(gòu)自Sigma公司,冰醋酸購(gòu)自重慶川東化工有限公司。血瓊脂平板購(gòu)自重慶龐通醫(yī)療器械有限公司,MH和LB培養(yǎng)基購(gòu)自北京陸橋生物技術(shù)有限公司,96孔板購(gòu)自美國(guó)康寧公司,酶標(biāo)儀購(gòu)自美國(guó)MD公司。
1.3.1 不同pH值條件下最低抑菌濃度的測(cè)定 采用微量肉湯稀釋法測(cè)定不同pH值環(huán)境下抗菌藥物對(duì)細(xì)菌的最低抑菌濃度(minimal inhibitory concentration,MIC)。肺炎克雷伯菌劃線接種于血瓊脂平板上,37℃培養(yǎng)過(guò)夜。挑取細(xì)菌單菌落接種于10 ml MH培養(yǎng)基中,37℃、200轉(zhuǎn)/ min培養(yǎng)18 h。用無(wú)菌生理鹽水稀釋校正菌液至0.5麥?zhǔn)蠁挝?約108 CFU/ml),然后分別用不同pH值(5.5、6.5和7.5)的MH培養(yǎng)基稀釋1000倍。抗菌藥物分別用pH值為5.5、6.5和7.5的MH培養(yǎng)基進(jìn)行倍比稀釋。然后在96孔板中每孔加入100 μl菌液和100 μl不同濃度的抗菌藥物溶液,使藥物終濃度分別為256和0.125 μg/ml。37℃孵育18 h后判斷結(jié)果,以能完全抑制細(xì)菌生長(zhǎng)的最低藥物濃度為MIC。
1.3.2 不同pH值對(duì)黏附能力的影響 黏附能力檢測(cè)采用菌落計(jì)數(shù)法[6]。將肺炎克雷伯菌過(guò)夜培養(yǎng)物用無(wú)菌生理鹽水稀釋至0.5麥?zhǔn)蠁挝唬儆貌煌琾H值(5.5、6.5和7.5)的LB培養(yǎng)基稀釋100倍。在CLSM培養(yǎng)皿中加入2 ml稀釋菌液。37℃孵育4 h后,用無(wú)菌的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)輕柔沖洗2次,去除浮游菌。然后在培養(yǎng)皿中加入PBS超聲10 min使黏附的細(xì)胞脫落。最后將細(xì)胞懸浮液稀釋至適當(dāng)倍數(shù)后,取100 μl菌液涂布于LB固體培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng) 24 h 后計(jì)數(shù)。每個(gè)樣本設(shè)置3個(gè)平行組,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.3.3 不同pH值對(duì)生物膜形成能力的影響 生物膜形成能力檢測(cè)采用96孔板結(jié)晶紫染色法[7]。將肺炎克雷伯菌過(guò)夜培養(yǎng)物用無(wú)菌生理鹽水稀釋至0.5 麥?zhǔn)蠁挝?,再用不同pH值(5.5、6.5和7.5)的LB培養(yǎng)基稀釋100倍。然后每孔分別加入200 μl菌液,37℃孵育24 h。小心去除浮游菌,PBS輕柔沖洗兩次,倒置風(fēng)干固定。然后加入1%結(jié)晶紫溶液染色10 min,用流水沖洗3次,再次倒置風(fēng)干。最后每孔加入100 μl 30 %冰醋酸溶液,用酶標(biāo)儀在590 nm處測(cè)定吸光度值。每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
頭孢他啶對(duì)12株肺炎克雷伯菌的MIC值隨著pH值升高而逐漸增加;隨著pH值升高,左氧氟沙星對(duì)肺炎克雷伯菌的MIC值降低;慶大霉素對(duì)肺炎克雷伯菌的MIC值與pH變化沒(méi)有明顯相關(guān)性(表1)。
隨著pH值升高,肺炎克雷伯菌黏附能力增強(qiáng)。兩獨(dú)立樣本比較結(jié)果顯示,與pH 5.5相比,pH 6.5條件下有6株菌黏附細(xì)胞數(shù)顯著增加(P<0.05),而pH 7.5條件下所有(12株)菌株黏附細(xì)胞數(shù)均顯著增加(P<0.05)。多獨(dú)立樣本比較結(jié)果顯示,pH 6.5組肺炎克雷伯菌黏附能力與pH 5.5組細(xì)菌黏附能力沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),且pH 7.5組細(xì)菌黏附能力與pH 5.5組差異亦無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05;表2)。
隨著pH值升高,肺炎克雷伯菌生物膜形成能力均有不同程度的增強(qiáng)。兩獨(dú)立樣本比較結(jié)果顯示,與pH 5.5相比,pH 6.5條件下有8株細(xì)菌的生物膜形成能力顯著增高(P<0.05),而pH 7.5條件下所有(12株)細(xì)菌的生物膜形成能力均顯著增高(P<0.05)。多獨(dú)立樣本比較結(jié)果顯示,與pH 5.5組相比,pH 6.5組和pH 7.5組肺炎克雷伯菌生物膜形成能力均顯著增高(P<0.01;圖1)。
表1 不同pH值條件下抗菌藥物對(duì)肺炎克雷伯菌的MICTable 1 MIC for antimicrobial agents to Klebsiella pneumonia in different pH conditions (μg/ml)
MIC: minimal inhibitory concentration
Strain pH5.5pH6.5pH7.5K12.29±0.132.61±0.11?2.91±0.15??K22.80±0.153.06±0.143.31±0.15?K31.75±0.071.87±0.071.99±0.11?K41.13±0.081.19±0.101.44±0.09?K51.64±0.081.97±0.08??2.18±0.12??K61.46±0.121.71±0.08?1.90±0.14?K72.13±0.072.31±0.092.58±0.13??K83.68±0.123.81±0.094.18±0.17?K91.96±0.112.22±0.10?2.47±0.11??K102.66±0.113.05±0.08??3.29±0.13??K111.81±0.092.04±0.08?2.25±0.09??K122.22±0.072.40±0.102.57±0.14?
Compared with pH 5.5,*P<0.05,**P<0.01
圖1 不同pH值對(duì)肺炎克雷伯菌生物膜形成能力的影響Figure 1 Effect of different pH values on the biofilm formation of Klebsiella pneumonia isolates Compared with pH 5.5, *P<0.05, **P<0.01
肺炎克雷伯菌屬于革蘭氏陰性菌,是人類(lèi)呼吸道的常寄居,在機(jī)體免疫力低下的患者中可引起呼吸道部位的感染[8],是典型的條件致病菌。隨著臨床上廣譜抗菌藥物的大量應(yīng)用,由該菌引起的醫(yī)院感染和耐藥率呈上升趨勢(shì)[8,9],特別是肺炎克雷伯菌多重耐藥和生物膜的產(chǎn)生給臨床抗感染治療帶來(lái)了巨大困難。本研究對(duì)不同pH值條件下3種抗菌藥物對(duì)肺炎克雷伯菌MIC的影響進(jìn)行了研究,結(jié)果顯示,酸性pH條件下,頭孢他啶可以降低肺炎克雷伯菌的MIC值,而左氧氟沙星則增加細(xì)菌的MIC值。有研究表明堿性條件下喹諾酮類(lèi)藥物可以降低奇異變形桿菌的MIC值[10],提示在相同pH條件下喹諾酮類(lèi)藥物對(duì)不同細(xì)菌都具有類(lèi)似的作用效果。
細(xì)菌生物膜的形成包括初始黏附和生物膜的形成,其中黏附是評(píng)價(jià)細(xì)菌生物膜形成能力的重要指標(biāo)[11,12]。在體外,細(xì)菌生物膜的產(chǎn)生依賴(lài)于各種物理和化學(xué)因素,例如培養(yǎng)基的組成、溫度、pH、氧等[13-15]。本研究考察了不同pH值對(duì)肺炎克雷伯菌黏附性和生物膜形成能力的影響,結(jié)果顯示,隨著pH值增加,肺炎克雷伯菌黏附細(xì)胞數(shù)和生物膜形成能力均有不同程度的增加。本研究結(jié)果顯示,pH 6.5組和pH 7.5組肺炎克雷伯菌生物膜形成能力與pH 5.5組間差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),而這兩組細(xì)菌黏附性與pH 5.5組間差異沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,這可能與本研究細(xì)菌樣本量少有關(guān)。關(guān)于銅綠假單胞菌和嗜麥芽窄食單胞菌,也有培養(yǎng)基pH與生物膜產(chǎn)生能力之間成正比關(guān)系的類(lèi)似報(bào)道[13,14]。研究表明,堿性環(huán)境下細(xì)菌生物膜形成能力大于酸性的原因在于產(chǎn)生了較高的藻酸鹽,因?yàn)樵趬A性pH條件下細(xì)菌細(xì)胞壁外膜孔蛋白的擴(kuò)大促進(jìn)碳的累積,進(jìn)而使得藻酸鹽的合成增加[16]。
綜上所述,本研究結(jié)果表明,不同pH環(huán)境可以改變肺炎克雷伯菌的藥物敏感性和生物膜形成能力,β-內(nèi)酰胺類(lèi)抗菌藥物頭孢他啶在酸性pH條件下具有較好的抗菌活性。提示臨床醫(yī)師應(yīng)根據(jù)患者內(nèi)部環(huán)境pH的變化選擇抗菌藥物。本研究局限性在于只選擇了β-內(nèi)酰胺類(lèi)、氨基糖苷類(lèi)和喹諾酮類(lèi)中的一種藥物進(jìn)行研究,對(duì)于這3類(lèi)中的其他抗菌藥物是否具有相同作用效果以及其他類(lèi)別抗生素的作用均有待于進(jìn)一步研究。
【參考文獻(xiàn)】
[1] H?iby N. A short history of microbial biofilms and biofilm infec-tions[J]. APMIS, 2017, 125(4): 272-275. DOI: 10.1111/apm.12686.
[2] 方向群. 細(xì)菌生物被膜相關(guān)感染的致病機(jī)制及藥物治療[J]. 中華老年多器官疾病雜志, 2007, 6(5): 299-301. DOI: 10.3969/j.issn.1671-5403.2007.05.003.
Fang XQ. Pathogenesis and drug therapy of bacterial biofilm associated infection[J]. Chin J Mult Organ Dis Elderly, 2007, 6(5): 299-301. DOI: 10.3969/j.issn.1671-5403.2007.05.003.
[3] Vo GD, Brindle E, Heys J. An experimentally validated immersed boundary model of fluid-biofilm interaction[J]. Water Sci Technol, 2010, 61(12): 3033-3040. DOI: 10.2166/wst.2010.213.
[4] Ng AW, Bidani A, Heming TA. Innate host defense of the lung: effects of lung-lining fluid pH[J]. Lung, 2004, 182(5): 297-317. DOI: 10.1007/s00408-004-2511-6.
[5] Percival SL, McCarty S, Hunt JA,etal. The effects of pH on wound healing, biofilms, and antimicrobial efficacy[J]. Wound Repair Regen, 2014, 22(2): 174-186. DOI: 10.1111/wrr.12125.
[6] 歐倩怡, 何召云, 夏培元, 等. 亞抑菌濃度頭孢他啶對(duì)臨床尿管分離大腸埃希菌生物膜的作用[J]. 第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào), 2015, 37(2): 111-115. DOI: 10.16016/j.1000-5404.201409097.
Ou QY, He ZY, Xia PY,etal. Effect of sub-minimal inhibitory concentration of ceftazidime on biofilm formation ofEscherichiacoliisolated from urethral catheters[J]. J Third Mil Med Univ, 2015, 37(2): 111-115. DOI: 10.16016/j.1000-5404.201409097.
[7] 孫鳳軍, 陳盛, 枉前, 等. 亞抑菌濃度莫匹羅星對(duì)燒傷創(chuàng)面分離銅綠假單胞菌生物膜的影響[J]. 中國(guó)藥房, 2015, 26(14): 1939-1941. DOI: 10.6039/j.issn.1001-0408.2015.14.21.
Sun FJ, Chen S, Wang Q,etal. Effect of sub-minimal inhibitory concentration mupirocin on biofilm ofPseudomonasaeruginosaisolated from burn wounds[J]. China Pharm, 2015, 26(14): 1939-1941. DOI: 10.6039/j.issn.1001-0408.2015.14.21.
[8] 許毛宇, 吳勝軍. 2010-2014年杭州邵逸夫醫(yī)院臨床分離肺炎克雷伯菌的藥敏分析[J]. 中華全科醫(yī)學(xué), 2017, 15(2): 304-307. DOI: 10.16766/j.cnki.issn.1674-4152.2017.02.037.
Xu MY, Wu SJ. Susceptibility ofKlebsiellapneumoniaeclinical strains isolated from 2010 to 2014 in Sir Run Run Shaw Hospital of Hangzhou[J]. Chin J Gen Pract, 2017, 15(2): 304-307. DOI: 10.16766/j.cnki.issn.1674-4152.2017.02.037.
[9] 王靖, 楊?lèi)?ài)芝, 趙應(yīng)蘭, 等. 2012-2014年某醫(yī)院肺炎克雷伯菌耐藥監(jiān)測(cè)分析[J]. 中國(guó)消毒學(xué)雜志, 2017, 34(1): 90-92. DOI: 10.11726/j.issn.1001-7658.2017.01.034.
Wang J, Yang AZ, Zhao YL,etal. Surveillance of drug resistance ofKlebsiellapneumoniaein a hospital from 2012 to 2014[J]. Chin J Disinfect, 2017, 34(1): 90-92. DOI: 10.11726/j.issn.1001-7658.2017.01.034.
[10] Irwin NJ, McCoy CP, Carson L. Effect of pH on theinvitrosusceptibility of planktonic and biofilm-grownProteusmirabilisto the quinolone antimicrobials[J]. J Appl Microbiol, 2013, 115(2): 382-389. DOI: 10.1111/jam.12241.
[11] de Andrade JP, de Macêdo Farias L, Ferreira JF,etal. Sub-inhibitory concentration of piperacillin-tazbactam may be related to virulence properties of filamentousEscherichiacoli[J]. Curr Microbiol, 2016, 72(1): 19-28. DOI: 10.1007/s00284-015-0912-9.
[12] Buzón-Durán L, Alonso-Calleja C, Riesco-Peláez F,etal. Effect of sub-inhibitory concentrations of biocides on the architecture and viability of MRSA biofilm[J]. Food Microbiol, 2017, 65: 294-301. DOI: 10.1016/j.fm.2017.01.003.
[13] Harjai K, Khandwahaa RK, Mittal R,etal. Effect of pH on production of virulence factors by biofilm cells ofPseudomonasaeruginosa[J]. Folia Microbiol (Praha), 2005, 50(2): 99-102. DOI: 10.1007/BF02931455.
[14] Di Bonaventura G, Stepanovi'c S, Picciani C,etal. Effect of environmental factors on biofilm formation by clinicalStenotrophomonasmaltophiliaisolates[J]. Folia Microbiol (Praha), 2007, 52(1): 86-90.
[15] Hostacká A, Ciznár I. Biofilms formation and response to oxidative stress inPseudomonasaeruginosaandVibriocholeraenon-O1 depending on culture media[J]. Epidemiol Mikrobiol Imunol, 2007, 56(4): 186-190.
[16] Heyde M, Portalier R. Regulation of major outer membrane porin proteins ofEscherichiacoliK 12 by pH[J]. Mol Gen Genet, 1987, 208(3): 511-517. DOI:10.1007/BF00328148.