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      淫羊藿苷對前列腺癌細胞株活力、遷移與侵襲的作用*

      2017-06-24 12:25:42張溫花張文超于遠東
      中國病理生理雜志 2017年6期
      關(guān)鍵詞:藿苷小室細胞株

      張溫花, 張文超, 于遠東

      (1山東大學(xué)齊魯醫(yī)院泌尿外科, 山東 濟南 250012; 2德州市人民醫(yī)院泌尿外科, 山東 德州 253014; 3河南省直第三人民醫(yī)院泌尿外科, 河南 鄭州 450006)

      淫羊藿苷對前列腺癌細胞株活力、遷移與侵襲的作用*

      張溫花1, 張文超2▲, 于遠東3△

      (1山東大學(xué)齊魯醫(yī)院泌尿外科, 山東 濟南 250012;2德州市人民醫(yī)院泌尿外科, 山東 德州 253014;3河南省直第三人民醫(yī)院泌尿外科, 河南 鄭州 450006)

      目的: 探討淫羊藿苷對前列腺癌細胞株Du145與PC3的存活、遷移與侵襲能力的影響,并初步研究其機制。方法:CCK-8法檢測不同濃度淫羊藿苷(0、5、10、20、40和80 μmol/L)對Du145細胞與PC3細胞活力的影響;Transwell小室實驗檢測細胞的遷移和侵襲能力;Western blot檢測Notch-1、MMP-2、MMP-9和Hes-1蛋白水平。結(jié)果:MTT法檢測結(jié)果顯示淫羊藿苷呈濃度依賴性抑制Du145與PC3細胞的活力,當濃度到達40 μmol/L時,抑制作用達到最大;經(jīng)淫羊藿苷干預(yù)后,Du145和PC3細胞遷移和侵襲能力顯著下降,Notch-1、MMP-2、MMP-9和Hes-1蛋白表達水平顯著下降。結(jié)論:淫羊藿苷具有抑制前列腺癌細胞株Du145與PC3生長、遷移和侵襲的作用,其作用機制可能與淫羊藿苷抑制Notch-1、MMP-2、MMP-9和Hes-1蛋白的表達有關(guān)。

      淫羊藿苷; 前列腺癌細胞; 細胞活力; 細胞遷移; 細胞侵襲

      前列腺癌是男性常見的泌尿系統(tǒng)惡性腫瘤,其發(fā)病率在歐美國家高居第一位,死亡率位于第二位[1],我國的發(fā)病率雖低于發(fā)達國家,但隨著生活水平日益提高與環(huán)境變化,發(fā)病率逐年升高[2]。目前,前列腺癌的發(fā)病機制尚未清晰。多數(shù)患者在就診時,已發(fā)生遠處轉(zhuǎn)移,錯過了最佳的手術(shù)機會。為了更有效地治療前列腺癌,學(xué)者們不停致力于研究其發(fā)生的分子機制,以期實現(xiàn)前列腺癌的早期診斷與治療。

      現(xiàn)代藥理學(xué)研究表明淫羊藿苷(icariin,ICA)是小檗科重要植物淫羊藿的主要活性成分,具有抗衰老、提高免疫力與抑制腫瘤等藥理作用。研究發(fā)現(xiàn)淫羊藿苷能夠拮抗雷公藤多苷導(dǎo)致的睪丸病理損傷,促使精原細胞增殖與分化,生精小管壁變厚,促進精子的形成[3]。國內(nèi)學(xué)者將淫羊藿苷加入含肝素的mTBM液中,進行金霉素?zé)晒馊旧ńY(jié)合體外受精實驗,發(fā)現(xiàn)淫羊藿苷明顯促進新鮮豬精子的體外獲能效果[4]。腫瘤細胞的黏附、遷移和侵襲能力是腫瘤浸潤與發(fā)生遠處轉(zhuǎn)移的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。張京偉等[5]發(fā)現(xiàn)淫羊藿苷對人胃癌細胞株SGC-7901的黏附、遷移和侵襲能力具有抑制作用。目前尚未有文獻報道淫羊藿苷對前列腺癌細胞的影響。

      材 料 和 方 法

      1 實驗材料與試劑

      前列腺癌細胞株Du145與PC3購自上海邦景實業(yè)有限公司;RPMI-1640培養(yǎng)基購自HyClone;胎牛血清購自上海研卉生物科技有限公司;淫羊藿苷購自中國藥品生物制品鑒定所,用二甲基亞砜(終濃度<0.01%)溶解成相應(yīng)濃度;MTT試劑購自Sigma;Transwell小室購自Corning;抗Notch-1、基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP)-2、MMP-9、Hes-1和GAPDH抗體購自Santa Cruz。

      2 實驗方法

      2.1 細胞培養(yǎng) 將前列腺癌細胞株Du145與PC3加入含10%胎牛血清、1%青霉素/鏈霉素溶液的RPMI-1640培養(yǎng)基,置于37 ℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞融合至80%~90%時,用0.25%胰酶消化3 min,進行傳代。

      2.2 MTT法檢測細胞存活率 待Du145細胞與PC3細胞的密度達到約80%~90%左右時進行傳代,取對數(shù)生長期細胞,制成單細胞懸液,調(diào)整細胞濃度為1.5×107/L,每孔100 μL接種于96孔板中,設(shè)3個復(fù)孔。細胞貼壁后,加入淫羊藿苷使最終濃度為0、5、10、20、40與80 μmol/L,分別培養(yǎng)12 h、24 h和48 h,每孔加入MTT試劑20 μL,37 ℃繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸去孔內(nèi)液體,每孔加入DMSO 150 μL,搖床上低速振蕩10 min,于490 nm波長處測定吸光度(A)值,計算細胞存活率。

      2.3 實驗分組 實驗共分為3組,空白對照(control)組,不加任何處理;溶劑對照組(vehicle組),加入相應(yīng)體積溶劑;ICA組,給予40 μmol/L淫羊藿苷處理48 h。

      2.4 Transwell小室遷移實驗 取生長良好的對數(shù)生長期的細胞,0.25%胰蛋白酶消化,離心后棄上清,調(diào)整細胞密度為2×108/L,往上室加入200 μL細胞懸液,下室加入500 μL含有10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基;將Transwell小室置于37 ℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中孵育24 h,取出上室,用棉簽擦去上室細胞,用4%多聚甲醛固定下室面的細胞15 min;PBS洗滌3次,0.1%結(jié)晶紫染色3 min,蒸餾水漂洗,吹干,置于顯微鏡下觀察,計數(shù)。

      2.5 Transwell小室侵襲實驗 實驗前用50 mg/L Matrigel 1∶8稀釋液包被Transwell小室底部膜的上室面,4 ℃風(fēng)干,后述步驟與2.4一樣。

      2.6 Western blot檢測蛋白表達 收集細胞,用RIPA細胞裂解液進行裂解,提取總蛋白,測定蛋白含量,調(diào)整蛋白濃度。取適量裂解產(chǎn)物,上樣后用10%聚丙烯酰胺進行電泳分離,電轉(zhuǎn)至硝酸纖維素膜上,加入5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,加入 I 抗(Notch-1、MMP-2與MMP-9: 1∶1 000; Hes-1和GAPDH: 1∶500)室溫孵育1 h,洗膜,加入相應(yīng) II 抗(1∶1 000)室溫孵育1 h,化學(xué)發(fā)光法顯色,成像掃描分析系統(tǒng)測定蛋白條帶的積分光密度。

      3 統(tǒng)計學(xué)處理

      所有數(shù)據(jù)采用統(tǒng)計學(xué)軟件SPSS 15.0進行分析處理。計量資料采用均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,多組間均數(shù)采用單因素方差分析,各組均數(shù)間兩兩比較采用Bonferroni校正的t檢驗,以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1 不同濃度淫羊藿苷對Du145細胞與PC3細胞活力的影響

      與0 μmol/L組相比,其它各組的Du145細胞與PC3細胞的活力受到抑制,隨著淫羊藿苷濃度的升高,Du145細胞與PC3細胞的活力受到抑制的程度越來越顯著,呈劑量依賴性,如圖1所示,當淫羊藿苷濃度為40 μmol/L時,細胞培養(yǎng)48 h后,細胞活力與80 μmol/L組的差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性,故后續(xù)實驗采用40 μmol/L培養(yǎng)細胞48 h。

      2 淫羊藿苷對Du145與PC3細胞遷移能力的影響

      Transwell遷移實驗結(jié)果顯示,給予40 μmol/L淫羊藿苷處理48 h后,Du145與PC3細胞遷移數(shù)明顯小于空白對照組;空白對照組與溶劑對照組間的差異沒有統(tǒng)計學(xué)顯著性,見圖2。

      3 淫羊藿苷對Du145細胞與PC3細胞侵襲能力的影響

      Transwell侵襲實驗結(jié)果顯示,給予40 μmol/L淫羊藿苷處理48 h后,Du145與PC3細胞侵襲數(shù)明顯小于空白對照組;空白對照組與溶劑對照組間的差異沒有統(tǒng)計學(xué)顯著性,見圖3。

      Figure 1.The effects of icariin (ICA) on the viability of the prostate cancer lines Du145 and PC3. Mean±SD.n=3.

      圖1 淫羊藿苷對Du145細胞和PC3細胞相對存活率的影響

      4 Notch-1、MMP-2、MMP-9和Hes-1的蛋白表達水平變化

      Western blot實驗結(jié)果顯示,給予40 μmol/L淫羊藿苷處理48 h后,Du145細胞與PC3細胞中Notch-1、MMP-2、MMP-9和Hes-1的蛋白表達水平顯著低于空白對照組,空白對照組與溶劑對照組間的差異沒有統(tǒng)計學(xué)顯著性,見圖4。

      討 論

      本實驗研究發(fā)現(xiàn)淫羊藿苷呈濃度依賴性抑制前列腺癌Du145細胞的活力,當淫羊藿苷濃度為40 μmol/L時,細胞的存活率僅為(39.54±3.29)%,提示淫羊藿苷對前列腺癌細胞具有明顯的抑制作用。

      Notch受體是一組高度保守的跨膜蛋白,與細胞的增殖、分化及凋亡具有密切關(guān)系。研究表明MMPs與Notch-1通路的信號有關(guān),MMPs是一類鋅依賴性的蛋白水解酶,與腫瘤遷移轉(zhuǎn)移及血管重塑密切相關(guān)[6],MMP-2與MMP-9是MMPs家族中的一員[7-8]。

      Figure 2.The effects of icariin (ICA) on the migration ability of the prostate cancer cell lines Du145 and PC3. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsICA group.

      圖2 淫羊藿苷對前列腺癌DU145細胞和PC3細胞遷移能力的影響

      Figure 3.The effects of icariin (ICA) on the invasion ability of the prostate cancer cell lines Du145 and PC3. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsICA group.

      圖3 淫羊藿苷對前列腺癌DU145細胞和PC3細胞侵襲能力的影響

      Figure 4.The protein expression of Notch-1, MMP-2, MMP-9 and Hes-1 in the Du145 cells and PC3 cells. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsICA group.

      圖4 Du145細胞和PC3細胞中Notch-1、MMP-2、MMP-9和Hes-1蛋白表達水平的變化

      MMP-2通過水解細胞外基質(zhì)成分促使腫瘤細胞突破限制,向周圍組織侵襲[9]。研究發(fā)現(xiàn)在宮頸癌、腎細胞癌和食管鱗癌等腫瘤中MMP-9的表達升高,其通過降解細胞外機制促進腫瘤細胞的侵襲轉(zhuǎn)移過程[10]。另有研究表明,淫羊藿苷可以通過選擇性誘導(dǎo)細胞周期阻滯對前列腺癌PC3細胞的增殖具有抑制作用[11]。腫瘤的局部轉(zhuǎn)移是癌癥致死率高的重要原因之一,基底膜與細胞外基質(zhì)的完整性喪失與腫瘤的轉(zhuǎn)移關(guān)系密切。Hes-1作為Notch-1通路下游的靶基因,在Notch-1通路中起重要作用。本實驗研究發(fā)現(xiàn)給予淫羊藿苷干預(yù)后,前列腺癌細胞Du145的遷移與侵襲能力下降,可能與Notch-1、MMP-2、MMP-9和Hes-1的蛋白表達水平下調(diào)有關(guān),推測淫羊藿苷可能通過抑制Notch-1通路,從而對前列腺癌細胞的生長、遷移與侵襲中發(fā)揮調(diào)控作用。

      綜上所述,淫羊藿苷對前列腺癌細胞的活力、遷移與侵襲具有明顯的抑制作用,臨床上可用于前列腺癌患者的輔助治療。本研究為淫羊藿苷在臨床上的應(yīng)用提供了實驗基礎(chǔ)。

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      (責(zé)任編輯: 林白霜, 羅 森)

      Effects of icariin on viability, migration and invasion of prostate cancer cells

      ZHANG Wen-hua1, ZHANG Wen-chao2, YU Yuan-dong3

      (1DepartmentsofUrology,QiluHospitalofShandongUniversity,Jinan250012,China;2DepartmentsofUrology,DezhouPeople’sHospital,Dezhou253014,China;3DepartmentsofUrology,theThirdPeople’sHospitalofHenanProvince,Zhengzhou450006,China.E-mail:yuyinhua81@126.com)

      AIM: To investigate the effects of icariin on the viability, migration and invasion of the prostate cancer lines Du145 and PC3. METHODS: Du145 cells and PC3 cells were treated with icariin at different concentrations (0, 5, 10, 20, 40 or 80 μmol/L), and the cell viability was measured by CCK-8 assay. The cell migration and invasion abilities were detected by Transwell assay. The protein expression of Notch-1, matrix metalloproteinase (MMP)-2, MMP-9 and hairy/enhancer of split-1 (Hes-1) was determined by Western blot. RESULTS: The results of MTT assay revealed that icariin inhibited the viabilitiy of Du145 cells and PC3 cells in a dose-dependent manner. The maximal effect was at dose of 40 μmol/L. Icariin treatment significantly decreased the abilities of migration and invasion of Du145 cells and PC-3 cells. Moreover, the protein expression of Notch-1, MMP-2, MMP-9 and Hes-1 was dramatically reduced after icariin treatment. CONCLUSION: Icariin inhibits prostate cancer cell viability, migration and invasion by decreasing the protein expression of Notch-1, MMP-2, MMP-9 and Hes-1.

      Icariin; Prostate cancer cell; Cell viability; Cell migration; Cell invasion

      1000- 4718(2017)06- 1017- 04

      2016- 10- 18

      2017- 02- 28

      國家自然科學(xué)基金資助項目(No. 81172435)

      R737.15; R730.23

      A

      10.3969/j.issn.1000- 4718.2017.06.010

      雜志網(wǎng)址: http://www.cjpp.net

      △通訊作者 Tel: 0371-65228506; E-mail: yuyinhua81@126.com

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