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      甘肅省蘋果炭疽病病原鑒定及ITS序列分析

      2017-07-21 13:39:37馬永強
      江蘇農(nóng)業(yè)科學 2017年10期
      關(guān)鍵詞:炭疽病分生孢子病原

      馬永強

      摘要:果實炭疽病是蘋果生產(chǎn)中常見的重要病害之一。通過形態(tài)特征結(jié)合病原菌的內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(internal transcribed spacer sequence,簡稱ITS)區(qū)域比對分析,確定引起甘肅蘋果果實炭疽病的病原為膠孢刺盤孢(Colletotrichum gloeosporioides)。

      關(guān)鍵詞:甘肅??;蘋果炭疽?。荒z孢刺盤孢(Colletotrichum gloeosporioides);ITS序列分析

      中圖分類號: S436.611.1+2文獻標志碼: A

      文章編號:1002-1302(2017)10-0089-02

      果實炭疽病是蘋果生產(chǎn)中普遍發(fā)生的重要病害,包括果實上的苦腐病(bitter rot of apple)和葉片上的葉枯病(glomerella leaf spot)[1]。典型的蘋果炭疽病病菌通常僅危害果實,引起果實表面形成圓形病斑,后期產(chǎn)生呈同心輪紋狀排列的小粒點,病部橫切剖面呈圓錐形,果肉變褐腐爛,具苦味[2]。蘋果炭疽病在世界上所有氣候溫暖濕潤、適宜種植蘋果的國家和地區(qū)都有發(fā)生,如美國、澳大利亞、英國、法國、德國、丹麥、保加利亞、荷蘭、俄羅斯、巴西、墨西哥、日本、韓國等[3]。蘋果果實炭疽病通常在果實近成熟時開始發(fā)病,采收后貯藏期間繼續(xù)發(fā)展,造成采前大量落果和采后貯藏中發(fā)生果腐,病果率達30%左右,嚴重可達50%~60%,我國每年因炭疽病造成的果品采后損失為20%~30%,采后果實腐爛已是生產(chǎn)中的突出問題[4]。2013年筆者調(diào)查了甘肅省蘋果主產(chǎn)區(qū)果實炭疽病的發(fā)病率,通常在0.8%~13.6%,屬輕、中度發(fā)生。通過采樣和室內(nèi)分離鑒定,旨在明確病原菌的種類,為生產(chǎn)中科學制定防控策略提供依據(jù)。

      1材料與方法

      1.1病樣標本采集及病原菌分離

      2013年9月從甘肅省隴南市禮縣永平鄉(xiāng)、永興鄉(xiāng)、祁山鄉(xiāng)、天水麥積區(qū)伯陽鎮(zhèn)、清水縣永清鎮(zhèn)等蘋果主產(chǎn)區(qū)采集炭疽病標樣,蘋果品種為紅元帥。病原菌的分離采用常規(guī)組織分離法,對采集的標樣進行分離純培養(yǎng)后,將菌種保存在試管斜面上。[JP]

      1.2致病性測定

      致病性測定參照張榮等的方法[5]。選擇有代表性的菌株,將供試菌株移于PDA(potato dextrose agar)培養(yǎng)基斜面上培養(yǎng),7 d后用無菌水洗下分生孢子,配置成分生孢子懸浮液,濃度為1×105 個/mL。取健康的紅元帥蘋果,用自來水清洗表面,70%乙醇表面消毒,自然風干,將捆扎在一起的5根7號昆蟲針于乙醇燈上燒灼消毒,冷卻后,扎刺果實,形成深度2.5 cm 的傷口,用移液槍向傷口中注入20 μL孢子懸浮液,25 ℃恒溫箱內(nèi)保濕培養(yǎng)。對照用無菌水接種。每處理設(shè)3個重復。觀察病記錄接種結(jié)果。對接種發(fā)病的病斑再次進行組織分離。

      1.3病原菌形態(tài)鑒定

      選取具有代表性的菌株移植于PDA 平板上,置于25 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),觀察病原菌在PDA平板上的菌落特征、培養(yǎng)性狀,7~10 d后,挑取分生孢子團,進行鏡檢,觀察分生孢子的形態(tài)特征,并用顯微測微尺測量分生孢子大小。

      1.4病原菌ITS序列測定與分析

      病原菌的DNA提取和核糖體rDNA的內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)ITS區(qū)域的擴增與測序委托上?;瞪锛夹g(shù)有限公司完成。

      1.4.1DNA提取

      病原菌DNA提取采用White等的方法[6]。[JP]

      1.4.2核糖體rDNA ITS區(qū)域的擴增與測序

      擴增所用引物為ITS區(qū)通用引物ITS1-F(5′-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3′)和ITS4(5′- TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)[7]。PCR反應體系總體積為25.0 μL:10×PCR 緩沖液2.5 μL,MgCl2(25 mmol/L)2.0 μL,dNTP(2.5 mmol/L)2.0 μL,Taq DNA 聚合酶(5 U/μL)0.2 μL,引物(10 μmol/L)各1.0 μL,模板2.0 μL,超純水14.3 μL。PCR 反應程序:94 ℃預變性 3 min;94 ℃變性30 s,52 ℃復性30 s,72℃延伸30s,30個循環(huán);最后72℃延伸10 min,4℃保存。取 5 μL 反應產(chǎn)物于1%瓊脂糖凝膠電泳,在紫外投射儀下檢測PCR產(chǎn)物大小,DNA Marker DL 2000。用北京博大泰克生物工程有限公司的PCR產(chǎn)物純化試劑盒,擴增產(chǎn)物上樣ABI3730DNA 測序儀檢測,采用雙脫氧測序法,測序引物為ITS1-F /ITS4,進行雙向測序。

      1.4.3病原菌rDNA ITS 序列分析

      選擇具有代表性的菌株,將所測得到菌株ITS的序列加入到NCBI(美國國家生物技術(shù)信息中心)網(wǎng)站,利用“Nucleotide-nucleotide BLASTA”程序,與GenBank中海量的微生物序列進行比對,查找相似性較高的序列,并以FASTA的格式從GenBank下載。所有的序列用Clustal X(1.83)進行校排。校排結(jié)果用人工借助BioEdit 5.0.9.1進行修正。最后用序列分析軟件MEGA 510進行最大簡約法(maximum parsimony)分析,ITS序列構(gòu)建系統(tǒng)樹時重復1 000次得到最大簡約樹。

      2結(jié)果與分析

      2.1致病性測定

      將分離純化好的代表性菌株tj4927接種健康的紅元帥蘋果,3 d后,接種病菌的蘋果開始發(fā)病,10 d后,癥狀表現(xiàn)明顯,初發(fā)病時,果面上出現(xiàn)淺褐色、有清晰邊沿的針頭大的圓形小斑,以后逐漸擴大,病部色澤隨之加深,并向下凹陷,蘋果表面產(chǎn)生圓形的同心輪紋狀病斑,其上產(chǎn)生黑色顆粒(分生孢子盤)(圖1-A),切開后果實內(nèi)呈漏斗狀(圖1-B),發(fā)病癥狀與田間一致;對照蘋果果實未見發(fā)病。對接種發(fā)病的病斑再次進行病菌分離,結(jié)果表明,分離得到的病原菌與接種的病原菌培養(yǎng)性狀一致,說明分離得到的病原菌為蘋果炭疽病病原菌。

      2.2病原菌形態(tài)鑒定

      將菌株tj4927接種于PDA平板培養(yǎng)基上培養(yǎng)7 d 左右即長滿培養(yǎng)皿,邊緣整齊,淺灰色至鼠灰色,氣生菌絲絨狀,產(chǎn)生黑色的分生孢子堆,后期產(chǎn)生橘紅色分生孢子團(圖1-C);分生孢子單胞、無色、橢圓形或圓筒形,兩端鈍圓,大小(11~20) μm×(3.0~4.5) μm(圖1-D)。根據(jù)培養(yǎng)性狀及分生孢子形態(tài)特征,菌株tj4927鑒定為膠孢刺盤孢(Colletotrichum gloeosporioides)。

      2.3病原菌ITS序列分析

      以葡萄座腔菌(Botryosphaeria dothidea)種為外群,通過

      [FK(W17][TPMYQ1.tif][FK)]

      種間ITS序列構(gòu)建系統(tǒng)樹,如圖2所示。通過系統(tǒng)樹分析可知,4種不同種類炭疽菌與菌株tj4927、tj4953、tj4989、tj4967、tj4977、tj4963、tj4982和tj4979聚在同一分支上,且菌株tj4927、tj4953、tj4989、tj4967、tj4977、tj4963、tj4982和tj4979與已知菌AJ301919和AJ301988以100%的支持強度聚集在同一分支上,應為同一種,即膠孢刺盤孢(

      3討論

      王曉鳴等最早將我國蘋果炭疽病的病原鑒定為膠孢刺盤孢(Colletotrichum gloeosporioides)[8],此后一直認為我國蘋果炭疽病的病原為膠孢炭疽菌,生產(chǎn)中防治也是針對這一種病原菌進行。Sutton首次提出尖孢刺盤孢(Colletotrichum acutatum)是引起蘋果炭疽病的病原菌之一[9],此后美國、日本、挪威等國均有研究表明,蘋果炭疽病由C. gloeosporioides和C. acutatum 2種病原引起[10-13]。張榮等研究了陜、豫2省蘋果炭疽病病原菌后發(fā)現(xiàn),尖孢刺盤孢(C. acutatum)可引起蘋果果實炭疽病[5]。符丹丹通過蘋果炭疽病菌內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)序列(ITS)、肌動蛋白(ACT)、3-磷酸甘油醛脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,簡稱GAPDH)、幾丁質(zhì)酶(CHS-1)和β-微管蛋白2(TUB2)單基因及多基因聯(lián)合的系統(tǒng)發(fā)育分析方法對遼寧、山東、河南和陜西等省蘋果主產(chǎn)區(qū)蘋果炭疽病進行鑒定,確定我國蘋果炭疽病病原菌可分為7個分類單元,包括6個已知種、1個新種,其中引起果實苦腐病的病原菌有6個種,分別為異國刺盤孢(C. alienum)、果生刺盤孢(C. fructicola)、膠孢刺盤孢(C. gloeosporioides)、睡蓮刺盤孢(C. nymphaeae)、暹羅刺盤孢(C. siamense)和新種-東方刺盤孢(C. orientalis),蘋果炭疽葉枯病的病原分2個種,即隱秘刺盤孢(C. aenigma)和果生刺盤孢(C. Fructicola),說明蘋果炭疽病病原菌復雜多樣[1]。

      本研究通過形態(tài)特征結(jié)合病原菌的內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)ITS

      區(qū)域比對分析,確定引起甘肅省蘋果果實炭疽病的病原為膠孢刺盤孢(Colletotrichum gloeosporioides),有關(guān)甘肅省蘋果炭疽病病原菌的多樣性有待進一步研究。

      參考文獻:

      [1]符丹丹. 中國蘋果炭疽病病原菌的遺傳多樣性[D]. 楊凌:西北農(nóng)林科技大學,2014.

      [2]王薇,符丹丹,張榮,等. 蘋果炭疽葉枯病病原學研究[J]. 菌物學報,2015,34(1):13-25.

      [3]González E,Sutton T B. Population diversity within isolates of Colletotrichum spp. causing Glomerella leaf spot and bitter rot of apple in three orchards in north Carolina[J]. Plant Disease,2004,88(12):1335-1340.

      [4]吳芳芳,檀根甲,陳仁虎. 蘋果果實炭疽病的研究進展[J]. 安徽農(nóng)業(yè)大學學報,2002,29(1):29-33.

      [5]張榮,王素芳,崔靜秋,等. 陜、豫兩省蘋果炭疽病病原鑒定[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學,2009,42(9):3224-3229.

      [6]White T J,Bruns T,Lee S,et al. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics[M]. New York:Academic Press,1990:54-55.

      [7]Gardes M,Bruns T D. ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes-application to the identification of mycorrhizae and rusts[J]. Molecular Ecology,1993,2(2):113-118.

      [8]王曉鳴,李建義. 陜西省炭疽菌的研究[J]. 真菌學報,1987,6(4):211-218.[HJ1.7mm]

      [9]Sutton B C. The genus Glomerella and its anamorph Colletotrichum[M]. Wallingford:Comminwealth Agricultural Bureau International,1992:112-114.

      [10]Biggs A R. Effects of calcium salts on apple bitter rot caused by two Colletotrichum spp.[J]. Plant Disease,1999,83(11):1001-1005.

      [11]González E,Sutton T B,Correll J C. Clarification of the etiology of Glomerella leaf spot and bitter rot of apple caused by Colletotrichum spp. based on morphology and genetic,molecular,and pathogenicity tests[J]. Phytopathology,2006,96(9):982-992.

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      [FQ)]

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