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      響應(yīng)面法優(yōu)化鹿銜草多糖提取工藝及抗氧化活性研究

      2017-08-13 19:39:08桑朦
      健康前沿 2017年2期
      關(guān)鍵詞:響應(yīng)面法多糖抗氧化

      桑朦

      摘要:目的:應(yīng)用Box-Behnken效應(yīng)面法優(yōu)化鹿銜草多糖提取工藝,并研究其抗氧化活性。方法:在單因素實驗基礎(chǔ)上,以多糖提取率(Y)為評價指標,加水量(X1)、浸提時間(X2)和提取溫度(X3)為考察對象,利用星點設(shè)計效應(yīng)面法優(yōu)化鹿蹄草多糖提取工藝,觀察其對二苯基苦基苯肼自由基(·DPPH)的清除作用。結(jié)果:優(yōu)化后的最佳工藝為加水量24.9倍,提取時間146.5min,提取溫度100°C,最佳提取工藝下鹿銜草多糖提取率達3.57%±1.56%,5 mg/mL的濃度就對DPPH的抑制達到80%以上。結(jié)論:Box-Behnken效應(yīng)面法優(yōu)化鹿銜草多糖提取工藝方法可行,鹿銜草多糖有一定的抗氧化活性。

      關(guān)鍵詞:多糖;鹿銜草;響應(yīng)面法;抗氧化

      鹿銜草又名鹿蹄草,鹿壽草,是鹿蹄草科(Pyrolaceae)鹿蹄草屬(Pyrola)植物鹿蹄草(Pyrola calliantha H. Andres)或普通鹿蹄草(Pyrola decorate H. Andres)的干燥全草[1]。具有祛風(fēng)濕,強筋骨,止血,止咳。臨床上常用于風(fēng)濕痹痛,腎虛腰痛,腰膝無力,月經(jīng)過多,久咳勞嗽?,F(xiàn)代藥理研究表明鹿銜草含黃酮類[2-3]、酚苷類[4]、醌類[5]、萜類[6]、多糖[7-9]等化學(xué)成分,具有抗菌、抗炎、對心血管系統(tǒng)作用、抗氧化[10-11]、抗腫瘤等多種藥理作用[12]。目前關(guān)于鹿銜草黃酮和多酚的抗氧化研究報道較多,隨著對多糖類成分抗氧化的研究日益增多,也有部分關(guān)于多糖提取的研究報道,但對鹿銜草抗氧化的研究還比較少,因而研究其提取工藝和抗氧化活性更加重要。

      星點設(shè)計(central composite design,CCD)是常用的一種由于提取工藝優(yōu)化的設(shè)計方法,在中藥提取工藝研究中廣泛使用[13]。之前已有應(yīng)用正交設(shè)計研究水提取、堿水提取和酶法提取結(jié)合醇沉法制備鹿銜草多糖的工藝研究[7-8],因此我們選用水作為提取溶劑,在單因素實驗基礎(chǔ)上,采用星點設(shè)計法安排提取實驗,結(jié)合響應(yīng)面法優(yōu)化鹿銜草多糖提取工藝并對其抗氧化活性進行研究,以期為鹿銜草的開發(fā)應(yīng)用提供依據(jù)和參考。

      1 材料與儀器

      鹿銜草藥材(購于陜西太白縣)。D-無水葡萄糖對照品(中國食品藥品檢定研究所),濃硫酸、苯酚、乙醇等均為分析純;實驗用水為純化水。

      Autoscience AS 5150A超聲波清洗器(天津奧特賽恩斯儀器有限公司),電熱式恒溫水浴鍋(江蘇金壇宏凱儀器廠),RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器(上海亞榮生化儀器廠),TU-1901雙光束紫外可見分光光度計(北京普析通用儀器有限責(zé)任公司),LXJ-Ⅱ離心沉淀機(上海醫(yī)用分析儀器廠),ME104電子天平(梅特勒-托利多)。

      2 方法與結(jié)果

      2.1 鹿銜草多糖的含量測定

      2.1.1 供試品溶液的制備

      稱取鹿銜草藥材約500g,置于圓底燒瓶中,加入5倍量石油醚(沸程30~60 °C),于40°C水浴回流浸提2h,過濾,殘渣揮干石油醚;加10倍藥材量80%乙醇于80°C水浴回流2h,過濾,殘渣用10倍量80%乙醇洗滌2次,過濾,殘渣揮干乙醇,置于60°C恒溫干燥箱中干燥24h,備用。稱取干燥后鹿銜草殘渣約10g,精密稱定,加水于一定溫度下回流提取一定時間,過濾,濾液置于250 mL 量瓶中,用水定容,即得。

      2.1.2 線性關(guān)系考察

      精密稱取105°C干燥至恒重的無水葡萄糖對照品30mg,置于100 mL容量瓶中,加水溶解并稀釋至刻度,得對照品儲備液。分別精密移取該儲備液0,0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6 mL 置于10 mL 具塞試管中,各加水至2. 0ml,搖勻,在冰水浴中緩緩滴加0. 2 % 蒽酮-硫酸溶液至刻度,混勻,放冷后置水浴中保溫1 0分鐘,取出,立即置冰水浴中冷卻10分鐘,取出,以相應(yīng)試劑為空白。照紫外-可見分光光度法,在582nm波長處測定吸光度A,以A為縱坐標,對照品質(zhì)量濃度為橫坐標,得回歸方程A= 27.429C+0.132(R2 = 0. 9974),表明葡萄糖質(zhì)量濃度在3~18 mg·L-1 與A呈良好線性關(guān)系。

      2.2 多糖提取率的測定

      采用蒽酮-硫酸法測定。精密移取供試品溶液1.0 mL置于10 mL 具塞試管中,按2.1.2項下自“加水至2.0mL”起,依次顯色,測定A,計算多糖提取率。

      多糖提取率(%)=多糖質(zhì)量/藥材質(zhì)量×100%

      2.3 單因素試驗考察

      2.3.1加水量

      精密稱取2.1.1項下干燥的鹿銜草藥材殘渣約10g,共5份,分別加入5,10,15,20,25倍量水,于80°C水浴浸提120min,提取1次,趁熱過濾,濾液置于250 mL 量瓶中,用水定容,測定A,計算多糖提取率分別為1.21%,1.46%,1.97%,2.12%,2.14%,加水量在1∶20的時候多糖提取率已經(jīng)趨于飽和。

      2.3.2提取時間

      精密稱取2.1.1 項下干燥的鹿銜草藥材殘渣5份,每份約10 g,分別加200mL水于80°C水浴浸提60,90,120,150,180min,提取1次,按2.3.1項下自“趁熱過濾”起開始操作,結(jié)果多糖提取率分別為1.04%,1.47%,2.12%,2.43%,2.38%,可能是因為多糖經(jīng)長時間加熱后發(fā)生部分水解,而使其含量降低[14],故選取浸提時間150min。

      2.3.3提取溫度

      精密稱取2.1.1項下干燥的鹿銜草藥材殘渣5份,每份約10 g,分別加200mL水于60,70,80,90,100°C水浴浸提150min,提取1次,按2.3.1項下自“趁熱過濾”起開始操作,結(jié)果多糖提取率分別為1.36%,1.75%,2.43%,2.76%,2.82%,提取溫度越高,多糖得率越高。

      2.3.4提取次數(shù)

      精密稱取2.1.1項下干燥的鹿銜草藥材殘渣4份,每份約10 g,加200 mL水于100°C分別提取1,2,3,4次,每次150min,按2.3.1項下自“趁熱過濾”起開始操作,結(jié)果多糖提取率分別為2.82%,3.47%,3.63%,3.69%,第2次提取完成后基本多糖提取完全。

      2.4 Box-Behnken效應(yīng)面法優(yōu)選

      在單因素試驗基礎(chǔ)上,由于提取次數(shù)為非連續(xù)變量,不能進行回歸處理[15],固定提取2次,分析因素表見表1,Box-Behnken效應(yīng)面法設(shè)計方案及實驗結(jié)果見表2。選取加水量、提取時間、提取溫度為自變量,鹿銜草多糖提取率為因變量,每個因素設(shè)計3個水平,分別用代碼-1,0,1,表示。

      將表2 中數(shù)據(jù)運用Design-Expert 8.05b 軟件進行響應(yīng)面分析,以多糖提取率(Y)為響應(yīng)值分別對各因素進行多元線性回歸二項式方程擬合,擬合模型為Y=3.31+0.1X1+0.3X2+0.07X3-0.02X1X2-0.07X1X3-0.05X2X3-0.045X12-0.095X22-0.21X32(R2=0.9888;RAdj2=0.9744),對模型采用F檢驗進行方差分析及模型系數(shù)顯著性檢查,結(jié)果見表3。

      由表3可知,溫度對鹿銜草多糖得率影響最大(P<0.0001),其次是加水量和提取時間。二項式模型P<0.0001,達極顯著水平,說明該方程與實際情況擬合良好,模型的殘差可能是隨機誤差產(chǎn)生,可用此模型和方程來分析預(yù)測最佳提取工藝條件,多糖提取率與任意2個因素的三維效應(yīng)面曲線見圖6。以鹿銜草多糖提取率最大值為目標,根據(jù)“Design Expert 8.05b”實驗設(shè)計軟件得最佳鹿銜草多糖提取工藝參數(shù)為:加水量24.9倍,提取時間146.5min,提取溫度100°C,提取數(shù)2次,鹿銜草多糖提取率預(yù)測最大值3.55%。

      2.5 提取工藝參數(shù)驗證

      按照星點設(shè)計優(yōu)化后的工藝參數(shù)提取3批鹿銜草多糖,多糖提取率結(jié)果見表4,平均提取率為13.74%±0.29%(n=3),驗證實驗值與模型預(yù)測值偏差為0.02%,可知,實驗觀察值和模型預(yù)測值比較接近,說明模型預(yù)測性良好。

      2.6 鹿銜草多糖抗氧化研究

      2.6.1 鹿銜草多糖對DPPH 自由基清除作用

      按照文獻[16] 的方法測定鹿銜草多糖對DPPH 自由基清除作用,配置濃度為1.0×10-4 mol/L 的DPPH 乙醇溶液,取2 mL的DPPH 乙醇溶液和2 mL鹿銜草多糖溶液,置于具塞試管中,室溫30 min,以蒸餾水為空白調(diào)零于517 nm 測定其吸光度為Ai;測定2 mL 濃度為1.0×10-4 mol/L的DPPH 溶液與2 mL 蒸餾水混合液的吸光度為A0;測定2 mL 多糖樣品溶液與2 mL 無水乙醇混合液的吸光度為Aj。按照下列公式計算清除率,根據(jù)不同濃度多糖溶液對DPPH 自由基的清除率作圖。以Vc作為陽性對照。

      DPPH 自由基抑制率=[1-(Ai-Aj)/A0]×100%

      2.6.2鹿銜草多糖抗氧化結(jié)果

      鹿銜草多糖對DPPH 自由基有較為明顯的清除作用,并隨著多糖濃度的增加作用增強,且濃度達到5mg/mL時清除率達到80%以上。

      3 討論

      結(jié)果表明,通過Box-Behnken效應(yīng)面法優(yōu)化得到的鹿銜草多糖提取方法穩(wěn)定可行。溫度和加水量對多糖提取率有極顯著影響。其原因為高溫會增加藥物成分的運動交換,液料比的增加有利于多糖的溶解及擴散,但過高的液料比不利于后期提取溶液的濃縮。

      本試驗通過用Box-Behnken效應(yīng)面法研究了加水量、提取時間、提取溫度對鹿銜草多糖提取率相互作用的數(shù)學(xué)模型,并預(yù)測最佳提取工藝:鹿銜草加24.9倍水在100℃提取2次,每次146.5min,以此工藝條件得多糖提取率為3.57%,與預(yù)測值相符,說明了用響應(yīng)面分析法來設(shè)計最佳提取工藝合理可行。

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