黃家駟+劉盾+陳玄陽(yáng)+王珊珊+陳燕+程爽
摘 要:該研究利用酪蛋白選擇性培養(yǎng)基從濃香型高溫酒曲中分離得到1株有明顯水解圈的蛋白酶產(chǎn)生菌LS-1,經(jīng)16SrDNA鑒定其為地衣芽孢桿菌;LS-1通過(guò)發(fā)酵培養(yǎng)提取出粗酶液,其酶活為180U/mL。
關(guān)鍵詞:酒曲;蛋白酶;篩選;鑒定
中圖分類號(hào) Q93-31 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號(hào) 1007-7731(2017)21-0029-03
Isolation and Identification of Protease-producing Srains from Luzhou-flavor Liquor Starter
Huang Jiasi1 et al.
(1School of Biological and Chemical Engineering,Nanyang Institute of Technology,Nanyang 473004,China)
Abstract:A protease-producing strain was isolated from Luzhou-flavor Liquor Starter with casein-selective medium,named LS-1. The 16SrDNA was amplified by PCR and the amplification products was subjected to sequencing and homology analysis. As a result,strain LS-1 was identified as Bacillus licheniformis. The protease activity in fermentation broth was 180U/mL.
Key words:Liquor Starter;Protease;Isolation;Identification
白酒是我國(guó)傳統(tǒng)的發(fā)酵食品,有著悠久的歷史,從古至今一直受到人們的喜歡。中國(guó)傳統(tǒng)白酒是以富含淀粉質(zhì)的糧谷類為原料,以中國(guó)酒曲為糖化發(fā)酵劑,采用固態(tài)、半固態(tài)或液態(tài)發(fā)酵,經(jīng)蒸餾、貯存和勾調(diào)而成的含酒精的飲料[1],被列為世界著名六大蒸餾酒之一。因釀造原料、酒曲種類和生產(chǎn)工藝以及自然環(huán)境等因素的不同,形成了特色、風(fēng)格不同的各種香型的白酒。釀造原料、酒曲種類和生產(chǎn)工藝以及自然環(huán)境等影響著白酒香型的形成。根據(jù)我國(guó)白酒的生產(chǎn)工藝可以看出,白酒釀造過(guò)程實(shí)質(zhì)上是相關(guān)微生物的代謝過(guò)程,其微生物主要來(lái)源于酒曲、窖泥和酒醅,參與酒精及香味物質(zhì)的形成,是影響典型香型形成的重要因素,釀酒微生物的種類、數(shù)量、分布及其消長(zhǎng)變化等對(duì)白酒發(fā)酵途徑及最終產(chǎn)物的生成均有著重大的影響[2]。白酒生產(chǎn)中釀酒微生物的研究水平直接影響白酒生產(chǎn)技術(shù)水平,進(jìn)而影響白酒的質(zhì)量、微生物群落結(jié)構(gòu),尤其是風(fēng)味微生物菌群結(jié)構(gòu),對(duì)于白酒的產(chǎn)量與質(zhì)量起著決定性的作用[3-4]。
酒曲是微生物的培養(yǎng)物,是白酒生產(chǎn)中的糖化劑、發(fā)酵劑、產(chǎn)香劑,有“酒之骨”之稱。釀酒的糖化過(guò)程,是酒曲中蛋白酶、α-淀粉酶、纖維素酶和果膠酶的協(xié)同作用的結(jié)果[5]。其中酒曲中的蛋白酶在釀酒過(guò)程中更是起到至關(guān)重要的作用。蛋白酶是分解蛋白質(zhì)肽鍵一類水解酶的總稱。它能有效水解原料中的蛋白質(zhì),破壞原料顆粒間質(zhì)細(xì)胞壁的結(jié)構(gòu),使原料中可利用的碳源增加;同時(shí)由于蛋白質(zhì)的水解作用,提高了發(fā)酵料中氨基態(tài)氮的含量,促進(jìn)酵母生長(zhǎng)繁殖,加快發(fā)酵速率[6]。在白酒生產(chǎn)過(guò)程中不能忽視蛋白酶,從酒曲中選育出高產(chǎn)蛋白酶應(yīng)用于釀酒工業(yè),將極大改善酒曲性能,提高酒的質(zhì)量和產(chǎn)率,縮短生產(chǎn)周期,降低生產(chǎn)成本。目前對(duì)于濃香型白酒釀酒微生物研究較多,主要集中在酒曲微生物產(chǎn)淀粉酶的菌株的研究,而對(duì)產(chǎn)蛋白酶菌株研究相對(duì)較少。為此,本文擬以河南本地濃香型白酒高溫酒曲為研究對(duì)象,對(duì)其中的可培養(yǎng)產(chǎn)蛋白酶微生物進(jìn)行分離鑒定和產(chǎn)酶特性研究,從微生物的角度進(jìn)一步理解白酒的發(fā)酵本質(zhì),以期從中獲得具有一定工業(yè)應(yīng)用潛力的產(chǎn)酶菌株,為白酒生產(chǎn)提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 酒曲 取自河南新境界酒業(yè)有限公司。
1.1.2 主要試劑與儀器 (1)試劑:酪蛋白、牛肉膏、瓊脂粉等均為生物純,北京奧博星;葡萄糖、Na2HPO4·7H2O、 KH2PO4等均為分析純,天津科密歐;L-酪氨酸,分析純,sigma進(jìn)口分裝;Folin-酚試劑:北京索萊寶;細(xì)菌DNA基因組提取試劑盒,北京天根;PCR及電泳所用試劑均購(gòu)自Takara。(2)儀器:上海精宏DNP-9052電熱恒溫培養(yǎng)箱;國(guó)華SHA-C水浴振蕩器;上海安亭飛鴿TGL-16G高速臺(tái)式離心機(jī);上海申安LDZX-50KBS高壓滅菌鍋;奧林巴斯CX23雙目光學(xué)顯微鏡;BioDrop超微量紫外可見(jiàn)分光光度計(jì);Biometra T-Profssional Standard PCR儀;北京六一DYY-7C電泳儀;北京六一DYCP-31DN瓊脂糖水平電泳槽;北京君意東方JY04S-3E凝膠成像分析儀;上海精科752N分光光度計(jì)。
1.1.3 培養(yǎng)基 (1)酪蛋白培養(yǎng)基[7]:Na2HPO4·7H2O 1.07g,KH2PO4 0.36g,酪蛋白4g,ZnCl2 0.014g,NaCl 1.2g,CaCl2 0.002g,MgSO4·7H2O 0.5g,F(xiàn)eSO4 0.02g,瓊脂20g,pH7.0,蒸餾水1000mL,121℃高壓滅菌。(2)種子培養(yǎng)基[8]:蛋白胨10g,酵母粉5g,NaCl 10g,pH7.0,蒸餾水1000mL,121℃高壓滅菌。(3)發(fā)酵培養(yǎng)基[8]:葡萄糖40g,蛋白胨20g,Na2HPO4 1.4g,CaCl2 0.6g,MgSO4 0.4g,pH7.0,蒸餾水1000mL,121℃高壓滅菌。(4)營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基:蛋白胨10g,牛肉浸膏3g,NaCl 5g,瓊脂20g,pH7.0,蒸餾水1000mL,121℃高壓滅菌。endprint
1.2 方法
1.2.1 樣品處理 (1)樣品稀釋液的制備:準(zhǔn)確稱取酒曲5g,研磨成粉,放入100mL的無(wú)菌生理鹽水并放有小玻璃珠的250mL三角瓶中,震蕩至酒曲分散均勻后,即成10-1稀釋液,將其進(jìn)行梯度稀釋,得到10-1~10-4稀釋度的稀釋液。(2)涂布平板法接種:用移液器依次吸取10-1~10-4樣品稀釋液200μL菌液至酪蛋白平板上,用涂布器將菌液在平板上涂布均勻。將涂抹好的平板平放于桌上20~30min后轉(zhuǎn)入37℃恒溫培養(yǎng)箱,倒置培養(yǎng)。
1.2.2 篩選及鑒定 37℃培養(yǎng)48h后,對(duì)各個(gè)稀釋度涂布平板進(jìn)行觀察,選擇有較大透明圈的菌落利用劃線分離法進(jìn)行二次純化;二次純化后挑取有透明圈的單菌落接種至營(yíng)養(yǎng)瓊脂斜面上保存;挑取單菌落進(jìn)行顯微鏡觀察,初步形態(tài)觀察后提取其基因組DNA進(jìn)行16SrDNA的擴(kuò)增,引物為27F:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′;1492R:5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′。將PCR產(chǎn)物送北京三博遠(yuǎn)志生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序完成后將序列利用NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)Blast數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行16SrDNA相似性比較分析。
1.2.3 酶活測(cè)定 (1)粗酶液液制備:挑取將保存至斜面上的純培養(yǎng)物接種至發(fā)酵培養(yǎng)基,37℃搖床培養(yǎng)48h后離心取上清進(jìn)行酶活測(cè)定。(2)酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線:L-酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)液:按表1配制,L-酪氨酸稀釋液應(yīng)在稀釋后立即進(jìn)行測(cè)定。
分別取上述溶液各1mL,各加碳酸鈉溶液5mL、Folin-酚試劑溶液1mL,振蕩均勻,于40℃水浴中顯色20min,取出,用分光光度計(jì)于680nm,10mm比色皿,不含酪氨酸的0管為空白,分別測(cè)其吸光度,以吸光度A為縱坐標(biāo),酪氨酸濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,利用回歸方程,計(jì)算當(dāng)吸光度為1時(shí)的酪氨酸量(μg),即為吸光常數(shù)K值,K值應(yīng)在95~100。
(3)酶活測(cè)定:采用Folin-酚法[9]對(duì)粗酶液進(jìn)行酶活測(cè)定。酶活力單位定義:40℃下,每分鐘水解酪蛋白底物產(chǎn)生1μg酪氨酸,定義為為一個(gè)蛋白酶活力單位。將2%酪蛋白溶液放入40℃恒溫水浴中,預(yù)熱5min;取1mL粗酶液加入2mL預(yù)熱好的酪蛋白溶液中混勻后放入40℃水浴中保溫10min后加入1mL10%三氯乙酸終止反應(yīng),取1mL上清液加入0.55mol/LNa2CO35mL,加入1mLFolin-酚試劑至40℃水浴顯色20min后于680nm下測(cè)定吸光值,以加水的反應(yīng)體系為空白。計(jì)算酶活:從標(biāo)準(zhǔn)去線上讀出最終稀釋液的酶活力,單位U/mL,原液的酶活力按照下式計(jì)算:蛋白酶的活力(U/mL)=A×K×4÷10×n。
式中:A:發(fā)酵原液的平行實(shí)驗(yàn)的OD值;K:吸光常數(shù);n:蛋白酶的液的稀釋倍數(shù);4:反應(yīng)試劑的總體積;10:反應(yīng)時(shí)間10min;所得結(jié)果表示至整數(shù)
2 結(jié)果與分析
2.1 菌株篩選及鑒定
2.1.1 菌落平板形態(tài) 在37℃培養(yǎng)48h后,在分離培養(yǎng)基上可以觀察到有部分菌株周圍產(chǎn)生肉眼可見(jiàn)水解圈,其中水解圈較大的菌落呈白色,扁平,干燥,周圍呈雪花狀,見(jiàn)圖1。將該菌株命名為L(zhǎng)S-1,對(duì)其進(jìn)行革蘭氏染色,鏡檢呈紫色,短桿狀。
2.1.2 PCR產(chǎn)物擴(kuò)增電泳分析 將菌株LS-1的16SrDNA產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠分析,條帶單一,約1.5kb(圖2)。
(泳道1為Maker:DL2000;泳道2為樣品)
2.1.3 16SrRNA序列分析及系統(tǒng)發(fā)育分析 LS-1 16SrRNA基因序列測(cè)序所獲得序列長(zhǎng)度為1438bp,將其與Genebank數(shù)據(jù)庫(kù)中的序列進(jìn)行同源性比對(duì),發(fā)現(xiàn)LS-1與芽孢桿菌屬的16SrRNA基因序列自然聚類,LS-1的16SrRNA基因序列與9條相似性較高的序列利用MEGA7.0構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)見(jiàn)圖3,從圖3中可看出,LS-1與Bacillus licheniformis strain AS-08E(GenBank:JN118574.1)聚為一群,相似性也最高,表明LS-1與Bacillus licheniformis strain AS-08E的親緣關(guān)系最近。
2.2 LS-1酶活測(cè)定 根據(jù)圖4可知,LS-1菌株粗酶液的酶活為180U/mL。與文獻(xiàn)中其它酒曲源的蛋白酶產(chǎn)生菌相比,LS-1的蛋白酶活力一般,可能是未對(duì)其產(chǎn)酶條件進(jìn)行進(jìn)一步的優(yōu)化研究。王麗等[10]從汾酒曲醅中篩選到一株高溫蛋白酶芽孢桿菌W20,其在55℃時(shí)最高酶活為708.33U/mL。王俊英等[11]從宋河酒曲中分離到一株產(chǎn)蛋白酶芽孢桿菌M4,其最適酶活力溫度為40℃,在此條件下酶活為366U/mL。
3 討論
酒曲中微生物種類豐富,本文僅從樣品中分離到一株產(chǎn)蛋白酶菌株LS-1,推測(cè)該菌株為酒曲中的優(yōu)勢(shì)菌,也可能是樣品處理過(guò)程中未進(jìn)行富集培養(yǎng)。目前已報(bào)道的高溫產(chǎn)蛋白酶菌種來(lái)源多為枯草芽孢桿菌、嗜熱芽孢桿菌和脂肪芽孢桿菌,分離生境比較豐富,多為溫泉、酒醅等環(huán)境。本文中篩選到的菌株LS-1為酒曲中篩選獲得,在今后工作中將對(duì)其發(fā)酵條件和酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行深入研究,以期為該蛋白酶在食品、釀酒工業(yè)中的應(yīng)用提供理論依據(jù)。
參考文獻(xiàn)
[1]余乾偉.傳統(tǒng)白酒釀造技術(shù)[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,2010.
[2]傅金泉.中國(guó)酒曲技術(shù)的發(fā)展與展望[J].釀酒,2002,29(2):7-9.
[3]徐穎宣,徐爾尼,馮乃憲,等.微生物混菌發(fā)酵應(yīng)用研究進(jìn)展[J].中國(guó)釀造,2008(9):1-4.
[4]范光先,王和玉,崔同弼,等.茅臺(tái)酒生產(chǎn)過(guò)程中的微生物研究進(jìn)展[J].釀酒科技,2006(10):75-77.
[5]喬宗偉,張文學(xué),張麗鶯,等.濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中酒醅的微生物區(qū)系分析[J].釀酒,2005,32(1):18-22.
[6]王鵬昊,關(guān)統(tǒng)偉,鄧奧宇,等.酒曲中高產(chǎn)蛋白酶和α-淀粉酶霉菌菌株的篩選與分子鑒定[J].釀酒科技,2016(6):61-71.
[7]于華,黃丹,陳卓,等.醬香型大曲中產(chǎn)蛋白酶放線菌的分離及產(chǎn)酶條件研究[J].中國(guó)釀造,2017,36(2):64-68.
[8]廉立慧,高麗君,王德才,等.高溫蛋白酶產(chǎn)生菌的篩選及其產(chǎn)酶條件和酶學(xué)性質(zhì)分析[J].生物技術(shù)通報(bào),2011(3):175-179.
[9]張彩瑩,肖連冬.生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2009:10-67.
(責(zé)編:張宏民)endprint