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      脂肪間充質干細胞對T細胞的免疫調節(jié)作用及其應用

      2018-02-12 07:48:54李春華江霞許兆軍寧波市第二醫(yī)院重癥醫(yī)學科浙江寧波315010
      系統(tǒng)醫(yī)學 2018年1期
      關鍵詞:免疫調節(jié)充質亞群

      李春華,江霞,許兆軍寧波市第二醫(yī)院重癥醫(yī)學科,浙江寧波 315010

      間充質干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是一組多能間充質基質細胞,國際細胞治療協(xié)會間充質和組織干細胞分會對MSC的定義包括:標準培養(yǎng)條件下貼壁生長;高表達CD105、CD73和CD90,不表達CD45、CD34、CD14 或 CD11b、CD79α 或 CD19 和HLA-DR;體外標準培養(yǎng),能在不同分化條件下分化成骨、脂肪和軟骨等組織細胞[1]。MSCs來源廣泛,可從骨髓、血液、脂肪組織和臍帶等多種組織中分離獲得,其中從脂肪組織中分離獲得的脂肪間充質干細胞(adipose-derived mesenchymal stem cells,ADSCs)具有多向分化潛能、免疫調控能力和自主更新能力,其生物學特性與骨髓間充質干細胞相似[2-3]。

      1 ADSCs的生物學特性

      ADSCs具有脂肪組織來源廣泛易獲取、取材過程創(chuàng)傷小、含量豐富且提取率高、不受倫理限制等諸多優(yōu)勢,使其成為再生醫(yī)學領域中重要的種子細胞[2]。脂肪組織中多能干細胞的含量豐富,與骨髓分離相比,脂肪組織分離可獲得更多的干細胞[1]。每克脂肪組織可以分離獲得約 5×103~2×105個 ADSCs,不同患者的脂肪組織獲得的ADSCs的數(shù)目也不盡相同[1]。ADSCs的免疫表型與其他組織來源的MSCs相似,也表達MSCs特異性表面抗原如 CD90、CD105、CD73,而不表達造血干細胞表面抗原如CD45、CD34和人類白細胞DR 抗原(HLA-DR)[2]。 ADSCs來源于中胚層,擁有多向分化能力,因而能在一定條件下分化成骨、脂肪、軟骨、心肌、肌及其他中胚層等組織細胞[4]。ADSCs的增殖、分化能力不隨供者年齡的增長而出現(xiàn)明顯下降趨勢,并且多次傳代后仍具有穩(wěn)定的增殖能力,其增殖能力比BMSCs更強[5]。不同組織的脂肪提取培養(yǎng)的MSCs的分化潛能有所不同,分化機制亦不相同[6]。此外,ADSCs分泌的吲哚胺-2,3-雙加氧酶(IDO)活性水平明顯高于BMSCs,也因此具有更強的免疫調節(jié)能力[7]。

      2 ADSCs對T細胞的免疫調節(jié)作用

      T細胞是淋巴細胞的主要組分,主要來源于骨髓中的多能干細胞,這些干細胞遷移到胸腺內,再由胸腺激素誘導,隨后分化、成熟,最后成為有免疫活性的T細胞。

      ADSCs因不表達或極低表達關鍵的免疫相關分子如DR白細胞抗原而具有很強的免疫調控作用。主要組織相容性復合物 (major histocompatibility complex,MHC)-II類分子主要存在于外源性抗原中,是介導同種異體免疫排斥反應的主要分子之一。ADSCs表面不表達MHC-II類分子,因而具有較低的免疫原性,也因此具有免疫耐受的特點。ADSCs的低免疫原性與其直接抑制T細胞及其分泌細胞因子形成的免疫抑制微環(huán)境有關[7-8]。

      2.1 ADSCs對活化T細胞的免疫調節(jié)作用

      炎癥條件下,ADSCs抑制活化T細胞的增殖過程即為ADSCs對活化T細胞的負性免疫調節(jié)。共培養(yǎng)ADSCs與T細胞,發(fā)現(xiàn)隨著二者共培養(yǎng)比例的增加,ADSCs對活化T細胞增殖的抑制率也顯著升高,并呈劑量依賴關系。此外,王平等在干擾素(IFN)-γ增強ADSCs對淋巴細胞的免疫調節(jié)作用的研究中發(fā)現(xiàn),與未刺激組相比,IFN-γ預刺激ADSCs可顯著增強其對T細胞的負性免疫調節(jié),也呈劑量依賴關系。該研究發(fā)現(xiàn),IFN-γ刺激后的ADSCs內IDO mRNA的表達水平也顯著升高[9]。

      IDO是一種含亞鐵血紅素的單體酶,也是體內色氨酸代謝產(chǎn)生犬尿氨酸途徑的關鍵限速酶。目前認為,ADSCs分泌IDO參與免疫調節(jié)過程的分子機制是IDO能通過色氨酸耗竭或者下游色氨酸代謝產(chǎn)物介導對T細胞增殖的直接抑制作用[7]。IDO增加能使活化T細胞的增殖能力受到明顯抑制,采用IDO阻斷劑1-MT可降低其對活化T細胞增殖的抑制能力,表明IDO在ADSCs介導的對活化T細胞的負性免疫調節(jié)過程中起重要作用。研究發(fā)現(xiàn),IFN-γ預刺激組中CD4+CD25+Treg的比例較未刺激組高,表明ADSCs能夠誘導活化T細胞,并使其向CD4+CD25+Treg亞群轉化,而IFN-γ預處理能夠增強ADSCs的這種能力[10]。

      2.2 ADSCs對輔助性T細胞的免疫調節(jié)作用

      CD4+T細胞也參與機體的免疫應答過程,并且其能參與輔助機體B細胞分泌抗體、維持機體免疫耐受過程,還能調節(jié)機體抵抗病原體等。輔助性T細胞如Th1、Th2及Th17等亞群是由初始CD4+T細胞活化之后分化而來。已有研究表明,ADSCs具有調節(jié)Th1[3,11]、Th2[11]及 Th17[12]輔助性 T 細胞的作用。

      2.2.1 對Th1細胞的作用 初始CD4+T細胞經(jīng)IL-12刺激后可分化成Th1細胞,該類細胞是較早被發(fā)現(xiàn)的CD4+T細胞中的其中一個亞群。Th1細胞能幫助機體防御病毒、細胞內細菌及真菌感染,其主要分泌 IFN-γ、IL-2、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)等促炎細胞因子。這些細胞因子可通過激活巨噬細胞、自然殺傷細胞及CD8+T細胞,通過調節(jié)細胞免疫反應,增強免疫細胞對細胞內病原體的殺傷能力,引起遲發(fā)型超敏反應,導致組織損傷[13-14]。ADSCs能夠抑制Th1細胞增殖,也能抑制其相關細胞因子分泌,并且在該過程中,ADSCs可以對其進行直接抑制,也能對其進行間接抑制。就直接抑制而言,ADSCs可通過分泌IDO,抑制與Th1細胞極化密切相關的因子,如特異性轉錄因子T-bet、信號轉導與轉錄激活因子1和4等的表達,最終使初始CD4+T細胞分化成Th1細胞亞群的這一過程受到抑制。就間接抑制而言,研究表明,ADSCs能夠通過促進樹突狀細胞免疫耐受、誘導CD4+CD25+Foxp3+Treg細胞產(chǎn)生等過程,達到抑制Th1細胞免疫應答的目的[13,15,16]。

      2.2.2 對Th2細胞的作用 Th2細胞是較早被發(fā)現(xiàn)的CD4+T細胞中的另一個亞群,IL-4能夠驅使并誘導初始CD4+T細胞分化成該細胞亞群。Th2細胞主要分泌IL-4、IL-5和IL-13等細胞因子,其主要目的是清除細胞外病原體。Th2細胞能通過誘導機體產(chǎn)生和分泌特異性抗體,同時使嗜酸性粒細胞聚集到炎癥區(qū)域,并協(xié)助激活B細胞參與體液免疫的調節(jié)過程。Th2細胞在介導某些疾病的炎癥反應過程中,可通過募集大量的嗜酸性粒細胞,導致炎癥的發(fā)生,進而產(chǎn)生疾病[16-17]。對小鼠過敏性鼻炎的研究發(fā)現(xiàn),就對變應原的免疫應答方面,ADSCs可以把Th2細胞轉變?yōu)門h1細胞,從而使小鼠過敏性鼻炎的臨床癥狀得到有效改善[18]。

      然而,在以Th1和Th17細胞為主要炎性因子的疾病,如多發(fā)性硬化及慢性血小板減少等疾病過程中,ADSCs能抑制Th1、Th17而增強Th2等細胞亞群的免疫應答,從而使前兩者主導炎癥反應更改為由Th2細胞亞群主導,以達治療目的。但ADSCs的作用機制尚缺少更加有力的證據(jù),目前的研究認為存在直接接觸和旁分泌作用[19-20]。

      2.2.3 對Th17細胞的作用 Th17細胞是一類新型的CD4+T細胞亞群,其分化機制和功能特征與Th1及Th2細胞不一樣。Th17細胞能夠分泌一些細胞因子,主要有 IL-6、IL-17A、IL-17F、IL-21 等。 IL-6 與轉化生長因子 (TGF)-β 或聯(lián)合IL-1、IL-21和IL-23等,共同誘導初始CD4+T細胞,使其進一步分化為Th17細胞,以促進機體對胞外病原體的免疫應答。Th17細胞特異性轉錄因子維甲酸相關孤兒受體(ROR)γt和RORα是調控Th17細胞亞群分化過程中的關鍵轉錄因子[21],其中RORα主要起協(xié)同RORγt的作用,在誘導促炎細胞因子TNF-α、IL-1β等、基質金屬蛋白酶、CXC趨化因子的表達中起重要作用。此外,Th17細胞亞群的這兩種關鍵轉錄因子對中性粒細胞的增殖、成熟和趨化等過程很重要[22-23]。已有研究結果表明,ADSCs可以抑制Th17細胞亞群的免疫應答,這其中涉及了不同的機制[24-25]。大量研究認為,ADSCs誘導免疫耐受是通過對CD4+CD25+Foxp3+Treg細胞的擴增實現(xiàn)的,已達到間接抑制Th17細胞免疫應答的目的。但一些研究表明,ADSCs在抑制初始CD4+T細胞分化成Th17細胞的過程中,可以通過直接作用于一些信號轉導通路達到抑制目的,并且這些通路與IL-23受體相關[20-22]。此外,也有一些研究表明,在體外條件下,ADSCs可被IL-1β激活,導致Th1的表達受到抑制,從而使Th17細胞亞群數(shù)量增多。由此可見,ADSCs的周圍環(huán)境可影響其免疫調節(jié)作用[26]。另外,也有研究表明,ADSCs能抑制Th17細胞特異性轉錄因子RORγt的表達和Th17細胞亞群功能,并誘導Treg細胞特異性轉錄因子Foxp3的表達等機制,但該機制是否存在,尚待研究[27]。

      2.3 對調節(jié)性T細胞的免疫調節(jié)作用

      調節(jié)性T細胞 (Regulatory T cell,Treg)細胞是CD4+T細胞的一個亞群,總量約占T細胞的5%。TGF-β可以刺激初始CD4+T細胞,并誘導其生成Treg細胞。Treg細胞在機體中起負性免疫調節(jié)作用,對輔助性T細胞的亞群起抑制作用。Treg細胞也能抑制其他的免疫反應,以及炎癥反應的激活等過程[28]。有研究表明,骨髓間充質干細胞能夠分泌免疫抑制因子TGF-β,也能使CD4+CD25+T細胞表達增加,更能抑制IFN-γ和IL-4等促炎因子的分泌[29]。ADSCs可促進Treg細胞的擴增和活化,從而發(fā)揮負性免疫調節(jié)作用。ADSCs的這一作用已在移植物抗宿主病、類風濕性關節(jié)炎等多種疾病模型中得以證實[30]。目前的研究認為,在調節(jié)Treg細胞擴增過程中,ADSCs分泌的可溶性細胞因子如IDO、白血病抑制因子(LIF)等也起一定作用[31]。此外,體內炎癥反應過程中,Treg細胞可以被ADSCs誘導產(chǎn)生,并且產(chǎn)生的Treg細胞能促進CD4+T細胞分化成促炎表型。以上表明,在炎癥條件下,Treg細胞可以轉化成Th17細胞亞群[21,32]。然而,目前尚無文獻報道,仍需進一步的研究。

      3 ADSCs的應用

      ADSCs已被廣泛地用于動物模型、軟組織修復、同種異體移植及其他臨床研究中[33-34]。肖二彬等人[35]在小鼠變應性鼻炎的研究中發(fā)現(xiàn),高劑量ADSCs組與卵清蛋白/卵清蛋白組比,血清和脾臟IL-4、IL-6表達顯著降低,而IL-10與IFN-γ表達明顯升高;低劑量ADSCs組與卵清蛋白/卵清蛋白組比,血清和脾臟IL-6表達顯著降低,IL-10表達明顯升高,而IL-4與IFN-γ表達無顯著性變化。經(jīng)ADSCs移植治療后,發(fā)現(xiàn)小鼠血清中IL-4與IL-6水平降低,IFN-γ水平升高,表明ADSCs可通過調節(jié)Th1/Th2的免疫失衡及Treg細胞缺陷使小鼠變應性鼻炎的T細胞免疫狀態(tài)得到改善。該研究也發(fā)現(xiàn),高、低劑量ADSCs均能使IL-10表達升高,但高低劑量之間存在差異,表明IL-10調節(jié)Treg細胞的免疫缺陷具有劑量依賴性[36]。

      王椋等人[37]在體外共培養(yǎng)ADSCs與再生障礙性貧血患者T淋巴細胞7 d發(fā)現(xiàn),與再生障礙性貧血T淋巴細胞組相比,Th1 類細胞因子(IFN-γ、IL-2)及其特異性轉錄因子T-bet表達降低,Th2類細胞因子(IL-4、IL-10)及其特異性轉錄因子GATA-3表達升高,提示人類ADSCs在體外可能通過調節(jié)T-bet和GATA-3[21]的表達抑制輔助性T細胞分化成Th1細胞,進而對再生障礙性貧血患者T淋巴細胞進行免疫調節(jié)。

      此外,ADSCs也能治療腫瘤相關疾病,如孔志華等人[38]發(fā)現(xiàn)ADSCs可以影響輻射誘發(fā)的小鼠胸腺瘤的免疫功能。由于機體各功能細胞對放射線的敏感不同,造成功能細胞亞群在輻射后重新分布,從而導致輻射后機體免疫抑制的發(fā)生。研究表明,CD8+T細胞的放射敏感性較CD4+T細胞高,但由于CD8+T細胞增殖較快,因而CD4+T細胞在輻射后明顯降低,而CD8+T細胞的升高,造成免疫功能紊亂。該研究發(fā)現(xiàn),注射ADSCs的照射組小鼠的胸腺淋巴細胞轉化率和胸腺指數(shù)與單純照射組相比顯著升高,且CD4+T細胞的含量也明顯增加,而CD8+T細胞則明顯降低,CD4+/CD8+T細胞比值顯著升高。CD4+/CD8+比值降低與病變程度密切相關,通常提示機體識別和殺傷突變細胞的能力較之前下降,進而促進腫瘤的生長和轉移[39]。以上表明,ADSCs可能通過調節(jié)小鼠胸腺內細胞含量的變化,保護小鼠胸腺細胞的免疫功能。

      4 ADSCs面臨的挑戰(zhàn)與展望

      干細胞應用到臨床治療過程需要同時滿足:取材簡單、培養(yǎng)方便,并能在體外進行大量增殖;不受倫理限制;臨床安全性高,同時具備較低的致瘤風險;大樣本、多中心,并且經(jīng)臨床隨機對照實驗證實其療效真實可靠。盡管關于ADSCs的研究已經(jīng)從基礎研究轉向臨床研究,但目前為止,ADSCs遠不能達到規(guī)?;糜谂R床治療疾病。盡管ADSCs具有取材方便、不受倫理限制、體外能夠穩(wěn)定增殖分化等優(yōu)點,但其仍不同于普通的臨床藥物。此外,不同的研究單位的制備方法及質量控制方面也有所不同。因此,建立ADSCs標準化的培養(yǎng)體系、質量控制體系及特異性分子標記物勢在必行。與此同時,ADSCs移植的最佳劑量、移植途徑及給藥時間等方面也需要嚴格的控制和規(guī)范,以達到高效安全的應用到臨床治療中。

      ADSCs由于具有多向分化潛能、來源廣泛、取材過程痛苦小并能在體外穩(wěn)定增殖等特點使其在骨骼肌肉系統(tǒng)疾病、自身免疫性疾病、移植物抗宿主病等[3]多種疾病的治療方面具有廣闊的臨床應用前景。盡管ADSCs在基礎研究方面已經(jīng)進行了大量的動物實驗,但距其真正運用到臨床治療疾病仍有很大一段距離,還需要大量更為深入的研究進行支持。

      [1]Baer PC,Geiger H.Adipose-derived mesenchymal stromal/stem cells:tissue localization,characterization,and heterogeneity[J].Stem Cells Int,2012,2012:812693.

      [2]Bourin P,Bunnell BA,Casteilla L,et al.Stromal cells from the adipose tissue-derived stromal vascular fraction and culture expanded adipose tissue-derived stromal/stem cells:a joint statement of the International Federation for Adipose Therapeutics and Science(IFATS)and the International Society for Cellular Therapy(ISCT)[J].Cytothercvpy,2013,15(6):641-648.

      [3]Bassi EJ,Moraes-Vieira PM,Moreira-Sa CS,et al.Immune regulatory properties of allogeneic adipose-derived mesenchymal stem cells in the treatment of experimental autoimmune diabetes[J].Diabetes,2012,61(10):2534-2545.

      [4]Jung S,Kleineidam B,Kleinheinz J.Regenerative potential of human adipose-derived stromal cells of various origins[J].J Craniomaxillofac Surg,2015,43(10):2144-2151.

      [5]Beane OS,Fonseca VC,Cooper LL,et al.Impact of aging on the regenerative properties of bone marrow-,muscle-,and adipose-derived mesenchymal stem/stromal cells[J].PLoS One,2014,9(12):e115963.

      [6]Jin HJ,Bae YK,Kim M,et al.Comparative analysis of human mesenchymal stem cells from bone marrow,adipose tissue,and umbilical cord blood as sources of cell therapy[J].Int J Mol Sci,2013,14(9):17986-18001.

      [7]Rubtsov Y,Goryunov Capital KAC,Romanov Capital A C,et al.Molecular Mechanisms of Immunomodulation Properties of Mesenchymal Stromal Cells:A New Insight into the Role of ICAM-1 [J].Stem Cells Int,2017,2017:6516854.

      [8]Jiang L F,Chen O,Chu T G,et al.T Lymphocyte Subsets and Cytokines in Rats Transplanted with Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells and Acellular Nerve for Repairing the Nerve Defects[J].J Korean Neurosurg Soc,2015,58(2):101-106.

      [9]王平,顧昕,張娜,等.干擾素γ增強脂肪間充質干細胞對淋巴細胞的免疫調節(jié)作用[J].天津醫(yī)藥,2016(6):683-686.

      [10]Chinnadurai R,Copland IB,Patel SR,et al.IDO-independent suppression of T cell effector function by IFN-gamma-licensed human mesenchymal stromal cells[J].J Immunol,2014,192(4):1491-1501.

      [11]王椋,徐敏,張慕華,等.人脂肪間充質干細胞與再生障礙性貧血患者T淋巴細胞的體外共培養(yǎng)[J].中國組織工程研究,2014(10):1603-1608.

      [12]賴寬,曾凡欽,郭慶,等.異基因脂肪干細胞對系統(tǒng)性紅斑狼瘡患者Th17淋巴細胞亞群的調節(jié)[J].廣東醫(yī)學,2010,31(12):1525-1528.

      [13]Peng W,Gao T,Yang ZL,et al.Adipose-derived stem cells induced dendritic cells undergo tolerance and inhibit Th1 polarization[J].Cell Immunol,2012,278(1-2):152-157.

      [14]Chakir H,Wang H,Lefebvre D E,et al.T-bet/GATA-3 ratio as a measure of the Th1/Th2 cytokine profile in mixed cell populations:predominant role of GATA-3[J].J ImmunolMethods,2003,278(1-2):157-169.

      [15]Gonzalez-Rey E,Anderson P,Gonzalez MA,et al.Human adult stem cells derived from adipose tissue protect against experimental colitis and sepsis[J].Gut,2009,58(7):929-939.

      [16]Hermann-Kleiter N,Baier G.NFAT pulls the strings during CD4+T helper cell effector functions[J].Blood,2010,115(15):2989-2997.

      [17]Coffman R L.Immunology.The origin of TH2 responses[J].Science,2010,328(5982):1116-1117.

      [18]Cho KS,Park HK,Park HY,et al.IFATS collection:Immunomodulatory effects of adipose tissue-derived stem cells in an allergic rhinitis mouse model[J].Stem Cells,2009,27(1):259-265.

      [19]Xiao J,Zhang C,Zhang Y,et al.Transplantation of adi-pose-derived mesenchymal stem cells into a murine model of passive chronic immune thrombocytopenia[J].Transfusion,2012,52(12):2551-2558.

      [20]蔡盈盈,杜昌升.多發(fā)性硬化疾病及模型小鼠中疾病相關細胞因子和轉錄因子研究進展[J].中國細胞生物學學報,2012(8):826-836.

      [21]Afzali B,Mitchell P,Lechler RI,et al.Translational mini-review series on Th17 cells:induction of interleukin-17 production by regulatory T cells[J].Clin Exp Immunol,2010,159(2):120-130.

      [22]Yang J,Sundrud MS,Skepner J,et al.Targeting Th17 cells in autoimmune diseases[J].Trends Pharmacol Sci,2014,35(10):493-500.

      [23]Castro G,Liu X,Ngo K,et al.RORgammat and RORalpha signature genes in human Th17 cells[J].PLoS One,2017,12(8):e181868.

      [24]Zhou Y,Yuan J,Zhou B,et al.The therapeutic efficacy of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells on experimental autoimmune hearing loss in mice[J].Immunology,2011,133(1):133-140.

      [25]Zhou B,Yuan J,Zhou Y,et al.Administering human adipose-derived mesenchymal stem cells to prevent and treat experimental arthritis[J].Clin Immunol,2011,141(3):328-337.

      [26]Darlington PJ,Boivin MN,Renoux C,et al.Reciprocal Th1 and Th17 regulation by mesenchymal stem cells:Implication for multiple sclerosis[J].Ann Neurol,2010,68(4):540-545.

      [27]Ghannam S,Pene J,Moquet-Torcy G,et al.Mesenchymal stem cells inhibit human Th17 cell differentiation and function and induce a T regulatory cell phenotype[J].J Immunol,2010,185(1):302-312.

      [28]Stubbe T,Ebner F,Richter D,et al.Regulatory T cells accumulate and proliferate in the ischemic hemisphere for up to 30 days after MCAO[J].J Cereb Blood Flow Metab,2013,33(1):37-47.

      [29]付裕,滕銀燕,徐朝偉,等.骨髓間充質干細胞對實驗性自身免疫性重癥肌無力大鼠的治療作用[J].中國現(xiàn)代神經(jīng)疾病雜志,2012(2):161-165.

      [30]Gonzalez MA,Gonzalez-Rey E,Rico L,et al.Treatment of experimental arthritis by inducing immune tolerance with human adipose-derived mesenchymal stem cells[J].Arthritis Rheum,2009,60(4):1006-1019.

      [31]Najar M,Raicevic G,Boufker HI,et al.Adipose-tissuederived and Wharton's jelly-derived mesenchymal stromal cells suppress lymphocyte responses by secreting leukemia inhibitory factor[J].Tissue Eng Part A,2010,16(11):3537-3546.

      [32]MJ C,CC B,SS K,et al.Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells induce explosive T-cell proliferation[J].stem cells Development,2010,19(12):1843-1853.

      [33]Xia X,Chiu P,Lam PK,et al.Secretome from hypoxiaconditioned adipose-derived mesenchymal stem cells promotes the healing of gastric mucosal injury in a rodent model[J].Biochim Biophys Acta,2017,1864(1):178-188.

      [34]Calderon D,Planat-Benard V,Bellamy V,et al.Immune response to human embryonic stem cell-derived cardiac progenitors and adipose-derived stromal cells[J].J Cell Mol Med,2012,16(7):1544-1552.

      [35]肖二彬,趙寶建,張馳.脂肪間充質干細胞可調節(jié)變應性鼻炎T細胞的免疫狀態(tài)[J].中國組織工程研究,2016(10):1373-1381.

      [36]李冠雪.脂肪來源間充質干細胞(ADSC)調控變應性鼻炎模型鼠T細胞免疫狀態(tài)的研究[D].廣州:南方醫(yī)科大學,2013.

      [37]王椋,徐敏,張慕華,等.人脂肪間充質干細胞與再生障礙性貧血患者T淋巴細胞的體外共培養(yǎng)[J].中國組織工程研究,2014(10):1603-1608.

      [38]孔志華,李應續(xù),熊志,等.ADSCs對輻射誘發(fā)C57小鼠胸腺瘤免疫功能的影響及其機制[J].海南醫(yī)學院學報,2015(6):731-734.

      [39]Shah W,Yan X,Jing L,et al.A reversed CD4/CD8 ratio of tumor-infiltrating lymphocytes and a high percentage of CD4(+)FOXP3(+)regulatory T cells are significantly associated with clinical outcome in squamous cell carcinoma of the cervix[J].Cell Mol Immunol,2011,8(1):59-66.

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