李貴節(jié),譚祥,翟雨淋,4,程玉嬌,王珺,王華*,RUSSELL LEE ROUSEFF ,3,吳厚玖
1(西南大學 柑桔研究所,重慶,400712) 2(重慶市功能性食品協(xié)同創(chuàng)新中心,重慶第二師范學院,重慶,400067) 3(西南大學食品科學學院,重慶,400715) 4(西南大學植物保護學院,重慶,400715)5(生物與化學工程學院,重慶第二師范學院,重慶,400067)
甜橙(CitrussinensisOsbeck)是全球消費量最大、栽培量最多的柑橘類群,因其特征性的酸甜口感和較高的營養(yǎng)價值深受人們的喜愛[1]。除了果實的加工性能、營養(yǎng)成分和口感風味等項目,其所含功能性物質也逐漸成為考察的備選項。
多甲氧基黃酮(polymethoxyflavones, PMFs)是柑橘果實中特有的類黃酮,其共性是多個羥基甲基化[2];該類物質比其他植物性黃酮有更高的生物利用度和生理作用,具有明確的抗癌活性和降血脂功能[3-5]。PMFs主要富集于果皮油胞層中,現已分離鑒別出數十種,常見有川陳皮素、橘皮素、甜橙黃酮、七甲氧基黃酮等[6]。甜橙含有豐富的多甲氧基黃酮資源,其果肉、果汁中的含量雖然與果皮相比甚微,然而不論是鮮食還是汁用,其日常消費量大且?guī)缀醢殡S一生,因此人們攝入的PMFs總量相當可觀。因此有必要對不同品種甜橙果汁中PMFs的種類和含量進行分析檢測,以了解其差異性。
對于PMFs的分析和檢測,傳統(tǒng)上是用高效液相色譜搭配二極管陣列檢測器(HPLC-DAD)[7-11]。該方法儀器設備簡單、具有一定的定性能力,但儀器檢測限較高,特別對于PMFs含量低、干擾物較復雜的橙汁來說,容易出現無法檢出的情況。近年來,越來越多的研究采用高效液相色譜串聯(lián)質譜(HPLC-MS/MS)法[12-15],串聯(lián)質譜的突出優(yōu)點在于靈敏度高、選擇性好、定性準確,對于復雜樣品色譜分離的要求大大降低。然而,HPLC-MS/MS價格昂貴、運行成本高、操作復雜、分析周期長,且不具備便攜性,無法進行現場快速分析。對于一個應用型分析檢測方法的開發(fā),這些因素需要充分考慮在內。
固相萃取(SPE)是廣泛應用在食品、生物、藥學、環(huán)境等眾多領域的樣品前處理技術,具有提取濃縮目標物質、去除干擾物質、溶劑用量少、操作簡單快速等優(yōu)良性能[16]。利用SPE對甜橙汁中的PMFs進行富集和濃縮,在DAD的基礎上再加入熒光檢測器(FLD),通過對各個PMF物質的紫外和熒光特征光譜的獲取,實現準確的定性分析,確定兩種檢測器定量分析的最佳條件,從而建立同時檢測汁用甜橙中9種多甲氧基黃酮物質的快速、經濟、實用的方法。
汁用甜橙:共計11個品系。早熟甜橙,包括早熟長葉橙、渝早橙、早金和哈姆林;中熟甜橙,包括中熟長葉橙、鵝蛋柑(錦橙26號)、銅水72-1和特羅維塔;晚熟甜橙,包括晚熟長葉橙,德爾塔夏橙和奧林達夏橙。樣品于2016年各自成熟期采自重慶市忠州區(qū)。固相萃取柱:HyperSep C18柱,德國Thermo-fisher Scientific公司;0.22 μm有機相微孔濾頭:上海安譜科學儀器有限公司;H3PO4、甲醇、乙腈、乙酸乙酯、四氫呋喃:色譜純,美國Sigma-Aldrich公司。標準對照品:異甜橙黃酮、甜橙黃酮、六甲氧基櫟草亭、四甲氧基異野黃岑素、川陳皮素、四甲氧基野黃岑素、七甲氧基黃酮、5-去甲基川陳皮素、橘皮素等9種:其詳細信息和結構簡式見表1和圖1。所有標準品經高效液相色譜串聯(lián)質譜(TSQ Quantum,德國Thermo Scientific公司)檢驗確認,為其標稱物質,達到標稱純度。
表1 多甲氧基黃酮標準物質信息
圖1 九種多甲氧基黃酮結構簡式Fig.1 Schematic structures of the nine polymethoxyflavones
Ultimate 3000高效液相色譜儀串聯(lián)二極管陣列檢測器及熒光檢測器(HPLC-DAD/FLD),德國Thermo Scientific公司;KQ5200DE超聲清洗器,江蘇昆山市超聲儀器有限公司;VacMaster負壓固相萃取系統(tǒng),瑞典Biotage公司; HN200多功能氮吹儀,濟南海能儀器股份有限公司;Milli-Q Reference超純水系統(tǒng),德國Merck-Millpore公司; MPZ9柑橘榨汁機,德國Braun公司。
1.3.1 標準對照品溶液的配制
準確稱取標準物質各5.00 mg,分別用甲醇溶解,并定容至5.00 mL,配成1.00 g/L的標準品儲備液備用。吸取各儲備液0.5 mL,混合并定容至5.00 mL,得到各物質質量濃度均為0.10 g/L的標準品混合溶液;逐級稀釋得到一系列質量濃度分別為100、25、10、2.5、1、0.25、0.1 mg/L的混合標準品溶液。
1.3.2 橙汁前處理
SPE柱用5 mL甲醇活化、5 mL超純水平衡備用。將甜橙洗凈晾干后切半,利用錐式榨汁機手動榨取新鮮橙汁,經8層紗布粗濾,取適量濾后橙汁緩慢通過活化的SPE柱,以使柱床充分吸附PMFs等物質,再依次通入超純水和清洗液(30%體積分數的乙腈水溶液)除去雜質;目標物質用5 mL乙酸乙酯洗脫,40°C經氮氣吹干后用1 mL甲醇溶解,過0.22 μm微孔濾膜,制得 PMFs樣品。
1.3.3 橙汁過柱體積-目標物質吸附總量曲線
將不同品種的橙汁等量均勻混合,以消除PMFs含量的種間差異。分別取5、10、15、20、25和30 mL混合橙汁過SPE柱,按前處理步驟制得不同濃度的PMFs樣品。繪制PMFs響應值-過柱體積曲線,選擇適宜的前處理體積。
1.3.4 色譜條件
色譜柱:Thermo Scientific Accucore C8(2.6 μm, 4.6 mm×50 mm);流動相:0.05% H3PO4溶液、甲醇和50%四氫呋喃溶液,流動相梯度見表2;檢測器設置:DAD波長掃描范圍為210~400 nm;FLD 激發(fā)波長掃描范圍為250~400 nm,發(fā)射波長掃描范圍為360~550 nm。其他設置:柱溫30°C,流速1 mL/min,進樣量5.0 μL 。
表2 HPLC流動相洗脫程序
1.3.5 樣品成分的定性和定量分析
以紫外吸收光譜掃描圖、熒光發(fā)射光譜掃描圖以及色譜峰保留時間三者結合進行化合物的定性判斷。采用外標法定量,檢測波長的選擇見下文。
利用DAD和FLD對9種多甲氧基黃酮進行掃描,得到各物質的紫外吸收、熒光激發(fā)和發(fā)射光譜。如圖2-A所示,9種PMFs的最大紫外吸收波長集中在320~345 nm;綜合考慮各物質的紫外響應值,選擇330 nm作為檢測波長。熒光激發(fā)光譜與紫外光譜較為相似,故本處略去,選擇340 nm為激發(fā)波長。圖2-B顯示該波長激發(fā)下,各物質的熒光發(fā)射光譜。由圖2-B可知,四甲氧基異野黃岑素(4)、5-去甲基川陳皮素(8)和橘皮素(9)未檢出熒光信號;異甜橙黃酮(1)和四甲氧基野黃岑素(6)為雙峰,分別在400 nm和500 nm附近,且熒光強度顯著低于其他物質;其他PMFs為單峰,最大響應值在450 nm附近。綜合考慮選擇450 nm和500 nm作為熒光檢測波長。
圖2 多甲氧基黃酮的紫外吸收光譜(A)和熒光發(fā)射光譜(B)Fig.2 UV absorbance spectra(A) and fluorescence emission spectra(B) of PMFs
PMFs高度甲基化,極性中弱,使用C8鍵合相保留效果較好。PMFs含有相同的母核結構,性質較為接近,為實現其快速分離,在保證高柱效的前提下,需合理增大流速,同時又要避免反壓超過HPLC的承壓范圍。綜合以上因素,最終選用表面多孔實心填料短柱(2.6 μm, 4.6 mm×50 mm,Thermo Scientific Accucore)。該色譜柱為反相柱,采用C8填料,適用于中等極性到弱極性物質的分離。其最大特點在于,填料為部分多孔結構,即包含一個φ1.6 μm的實心核和0.5 μm厚的多孔外殼。與全多孔填料相比,該結構使分子運動路徑更短,降低了被分離物質的軸向擴散,減小了色譜峰的展寬,從而獲得更高的柱效和分辨率,同時將柱壓維持在3×107Pa以下。
對于流動相,分別以水/甲醇(體積比50∶50)和水/乙腈(體積比60∶40)出發(fā)、對應的純有機溶劑為終點,設置初始斜線梯度,并在此基礎上分別對梯度進行調整。結果顯示,水/甲醇體系下,川陳皮素(5)和四甲氧基野黃岑素(6)無法分離;水/乙腈體系下,(5)、(6)的分離度有所改善(≈1.0),但5-去甲基川陳皮素(8)和橘皮素(9)無法分離。因此再引入第3種組分四氫呋喃(THF),經系列調整確定水/甲醇/THF梯度洗脫能有效分離化合物1~7,但8、9分離效果仍不理想。從結構分析,5-去甲基川陳皮素(8)具有游離酚羥基,故可通過降低流動相pH調整其保留性質。由于H3PO4在各波長下均無顯著紫外吸收,故采用色譜純的H3PO4降低流動相的pH值,在優(yōu)化的流動相組成和洗脫程序下(表2)。9種PMFs混標的紫外和熒光響應色譜圖如圖3所示。各物質峰型良好,在10 min內實現有效分離(分離度R>1.5);熒光信號以倒峰的形式呈現,以便更清晰的與紫外信號對應。
在1.3.4色譜條件下,測定逐級稀釋的混合標準溶液,以各物質響應的積分峰面積為縱坐標、質量濃度(mg/L)為橫坐標,繪制標準曲線。測定儀器信噪比(S/N),當標準溶液稀釋至信噪比3
圖3 多甲氧基黃酮混合標樣的高效液相色譜圖Fig.3 HPLC chromatogram of the mixed PMFs standard solution
表3紫外和熒光測定多甲氧基黃酮的線性關系、儀器檢出限和定量限
Table3Linearrelativity,LODandLOQofthePMFsbyUVandfluorescenceexamination
多甲氧基黃酮UV測定值FL測定值線性范圍/(mg·L-1)回歸方程R2檢出限/(mg·L-1)定量限/(mg·L-1)線性范圍/(mg·L-1)回歸方程R2檢出限/(mg·L-1)定量限/(mg·L-1)異甜橙黃酮2.00~1000Y=2.59X-2.15b0.99980.1100.36630~1000Y=0.0325X-0.730.99941.8306.100甜橙黃酮4.00~1000Y=3.33X+0.231.00000.1840.6121.50~500Y=2.54X+0.111.00000.0840.280六甲氧基櫟草亭1.50~500Y=1.57X+1.840.99990.0820.2721.50~500Y=0.478X+0.190.99950.0720.242四甲氧基異野黃岑素1.00~1000Y=2.87X+0.521.00000.0360.124-----川陳皮素1.50~1000Y=2.64X+4.410.99970.0600.2022.00~500Y=0.23X+0.490.99980.1020.338四甲氧基野黃岑素1.00~1000Y=5.19X+3.490.99960.0560.18810~1000Y=0.111X-1.440.99980.6042.014七甲氧基黃酮0.50~1000Y=5.29X+0.300.99990.0240.0785.00~500Y=0.21X-0.270.99960.2860.9545-去甲基川陳皮素1.00~500Y=2.41X+5.730.99990.0400.132-----橘皮素0.20~1000Y=6.88X+1.310.99980.0120.040-----
注:(1)異甜橙黃酮和四甲氧基野黃岑素的熒光信號在發(fā)射波長為500 nm處獲得,其他熒光響應均在450 nm處采集(表4、表5同);(2)回歸方程中Y為峰面積,X為物質濃度;-表示該物質沒有熒光響應。
影響SPE前處理效果的因素有:鍵合相、柱體積、柱床填量、清洗液、洗脫液及過柱量等。考慮PMFs的性質、方法對快速前處理的要求以及成本控制,選用SPE柱規(guī)格為:C18鍵合相、6 mL柱體積,500 mg柱床填量。清洗除雜分為兩步,先用超純水去除殘留橙汁的水溶性成分,如:糖類、有機酸、VC等;再用一定強度的溶劑去除吸附力較弱的干擾成分,如:黃酮苷、花色苷、類胡蘿卜素等。就第二步清洗液的組成,分別考察體積分數為20%、30%、40%的甲醇和乙腈溶液,發(fā)現30%乙腈溶液除雜效果明顯且對目標PMFs無洗脫作用。分別考察5 mL甲醇、乙腈、乙酸乙酯、三氯甲烷、異丙醇對PMFs的洗脫效率。結果表明,在1 mL/min流速下,5種溶劑均能將PMFs從SPE柱上完全洗脫;在2 mL/min流速下,甲醇洗脫不完全,其余4種溶劑能夠完全洗脫。綜合考慮毒性和揮發(fā)速率,選擇乙酸乙酯為洗脫劑。
對于橙汁的過柱量,在避免柱床對目標物質吸附飽和的前提下,應盡量提高過柱體積以獲得高濃度的最終樣品,從而降低檢測誤差。過柱體積-目標物質吸附總量曲線見圖4。其中PMFs吸附量由UV和FL響應分別表示,以橙汁所含總PMFs對應的峰面積為縱坐標單位。由圖4可知,0~20 mL內,吸附量與過柱體積成良好的線性相關;進一步增加過柱體積,線性關系被破壞,最終洗脫得到的PMFs趨于恒定,說明大于20 mL上樣使柱床吸附飽和,目標物質發(fā)生穿透現象而損失。考慮到加標回收實驗的需要,SPE吸附量應留有至少一半的余量,故確定橙汁的過柱體積為10 mL。
圖4 固相萃取處理橙汁體積與最終樣品中多甲氧基黃酮總響應值的關系Fig.4 Relationship between the processed volume of orange juice through SPE and the total response of PMFs in final HPLC samples注:■和●分別表示符合線性關系的紫外和熒光響應;□和○分別表示固相萃取柱吸附飽和時紫外和熒光響應。
混合橙汁經SPE前處理、HPLC-DAD/FLD法測定各PMF的本底含量。再分別以80%、100%、120%三個水平做加標回收實驗,每個水平做3次重復測定,驗證整套方法的重現性和精密度。結果如表4所示,各PMF回收率分別為UV: 96.4%~104.2%和FL: 94.2%~102.1%,相對標準偏差1.4%~5.9%和2.2%~7.6%。本方法準確度和精密性良好,UV和FL定量數據可相互驗證,具有較高可信度。
表4 甜橙混合果汁的多甲氧基黃酮回收率
續(xù)表4
化合物加入量/(mg·L-1)UV測定值FL測定值本底值/(mg·L-1)測定量/(mg·L-1)回收率/%RSD/%本底值/(mg·L-1)測定量/(mg·L-1)回收率/%RSD/%四甲氧基野黃岑素8.4010.5012.6010.5019.0420.8523.09101.798.699.92.64.33.310.5218.6820.8322.9397.198.298.55.16.44.9七甲氧基黃酮17.2521.5625.8721.5638.4542.9347.3397.999.199.62.53.12.621.1838.2941.9647.0299.296.499.93.72.22.85-去甲基川陳皮素3.093.864.633.866.847.628.5096.497.3100.21.41.52.63.636.547.528.3194.2100.9101.13.03.24.1橘皮素5.476.848.216.8412.2313.6715.0698.599.8100.12.12.52.46.9512.3913.6715.1099.598.399.37.04.23.0
用建立的SPE-HPLC-DAD/FLD法對11個常見汁用甜橙品系的果汁PMFs進行定性和定量測定。如圖5所示,經SPE前處理后,各樣品的UV和FL色譜峰型正常、分離度良好,雜質峰較少且集中在前3 min范圍內,對目標物質分析干擾小。在此基礎上,結合紫外光譜、熒光發(fā)射光譜和保留時間3種不同的手段定性,方法如下:各PMF標準物質的光譜信息互不相同,具有其特征性(圖2);據此建立PMFs的UV/FL光譜數據庫,將樣品中目標峰的光譜與庫中已知標準物質進行對比,再加上色譜峰保留時間的對應關系,從而準確判定該目標物質是否為已知PMF。
同時測定UV和FL響應值,采用外標法對樣品中的PMFs定量分析,根據SPE前處理的富集倍數,計算汁用甜橙果汁中各物質的含量,結果見表5。2種信號的定量結果吻合度良好,相對平均偏差為0.03%~5.42%。數據顯示,汁用甜橙果汁中總PMFs的平均含量為mg/L級;甜橙黃酮(2)是所有品系中含量最高的PMF,川陳皮素(5)含量次之,兩者之和占橙汁總PMFs含量的50%以上,為其主要成分。MOULY等[17]利用C18SPE前處理和HPLC-DAD法對市售60種橙汁進行了PMFs含量分析,其結果與本實驗數據處于同一數量級,但各PMF濃度均值普遍較低,且川陳皮素含量高于甜橙黃酮。這些差別也從側面反映出加工甜橙品種選擇對于橙汁品質的重要性。11個品系間比較,渝早橙PMFs總含量最高,為鵝蛋柑的10倍以上,加之其早熟的特性,具有進一步研究開發(fā)的潛力。
A-早熟品系;B-中熟品系;C-晚熟品系圖5 11種汁用甜橙果汁樣品中所含多甲氧基黃酮的高效液相色譜圖Fig.5 HPLC chromatograms of PMFs contained in eleven juice-producing sweet orange juice samples
建立了SPE-HPLC-DAD/FLD快速前處理甜橙汁及檢測其中9種多甲氧基黃酮成分的方法。前處理利用C18柱固相萃取,在去除雜質干擾的同時實現果汁樣品中微量PMFs的富集,間接提升了樣品檢測的靈敏度。以0.05%磷酸、甲醇、50%四氫呋喃為流動相,使用表面多孔實心填料C8柱進行反相HPLC梯度洗脫,9種PMFs在10 min內實現快速分離。DAD和FLD的同時使用,從光譜學角度為樣品中目標物質的定性提供了判斷依據。在UV吸收波長330 nm,FL激發(fā)波長340 nm、發(fā)射波長450和500 nm的條件下,同時對樣品PMFs定量分析,兩者結果一致性良好。該方法定量限達mg/L級加標回收率為96.4%~104.2%(UV)和94.2%~102.1%(FL),具有良好的精密度和重現性。對11個品系的汁用甜橙進行了分析,利用該方法能滿足常規(guī)HPLC對橙汁中微量PMFs的快速定量檢測要求。
表5 11種汁用甜橙原汁中多甲氧基黃酮含量
注:根據SPE富集倍數,原汁濃度由最終制備樣品的實測濃度換算而來,保留3位有效數字; ND為未檢出(低于檢測限), [1] 楊子玉, 唐頌, 任婧楠, 等. 不同品種柑橘汁胞的品質比較研究 [J]. 食品工業(yè)科技, 2015(13): 121-125. [2] LI Shi-ming, PAN MIN-HSING, LO CHIH-YU, et al. Chemistry and health effects of polymethoxyflavones and hydroxylated polymethoxyflavones[J]. Journal of Functional Foods, 2009, 1(1): 2-12. [3] MANTHEY J A, GUTHRIE N. Antiproliferative activities of citrus flavonoids against six human cancer cell lines[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2002, 50(21): 5 837-5 843. [4] 王巧玲, 賈紹華. 川陳皮素抗癌作用及機制的研究進展 [J]. 中草藥, 2009(s1): 40-42. [5] EVANS M, GUTHRIE N, SHARMA P. Bioavailability of Citrus Polymethoxylated Flavones and Their Biological Role in Metabolic Syndrome and Hyperlipidemia[M]. INTECH Open Access Publisher, 2012: 276-281. [6] 付陳梅, 吳桂蘋, 蘇學素, 等. 液相色譜法測定柑橘果實中類黃酮的方法研究[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2008, 34(2): 121-125. [7] 冉玥, 焦必寧, 趙其陽, 等. 超高效液相色譜法同時測定柑橘中 11 種類黃酮物質 [J]. 食品科學, 2013, 34(4): 168-172. [8] 章翀瑋, 魏東芝, 周文瑜, 等. 柑橘類黃酮成分的同步 HPLC 檢測 (英文) [J]. 中成藥, 2007, 29(1): 99-104. [9] MOULY P, GAYDOU E M, AUFFRAY A. Simultaneous separation of flavanone glycosides and polymethoxylated flavones in citrus juices using liquid chromatography [J]. J Chromatogr A, 1998, 800(2): 171-179. [10] OOGHE W C, OOGHE S J, DETAVERNIER C L M, et al. Characterization of orange juice (Citrussinensis) by polymethoxylated flavones [J]. J Agr Food Chem, 1994, 42(10): 2 191-2 195. [11] PUPIN A M, DENNIS M J, TOLEDO M C F. Polymethoxylated flavones in Brazilian orange juice [J]. Food Chem, 1998, 63(4): 513-518. [12] ZHANG Jia-yu, LU Jian-qiu, GAO Xiao-yan, et al. Characterization of thirty-nine polymethoxylated flavonoids (PMFs) in the branches of Murraya paniculata by HPLC-DAD-ESI-MS/MS [J]. Chin J Nat Med, 2014, 11(1): 63-70. [13] CHO H E, AHN S Y, KIM S C, et al. Determination of flavonoid glycosides, polymethoxyflavones, and coumarins in herbal drugs of citrus and poncirus fruits by high performance liquid chromatography-electrospray ionization/tandem mass spectrometry [J]. Anal Lett, 2014, 47(8): 1 299-1 323. [14] ZHANG Jia-yu, ZHANG Qian, ZHANG Hong-xia, et al. Characterization of polymethoxylated flavonoids (PMFs) in the peels of 'Shatangju' mandarin (CitrusreticulataBlanco) by online high-performance liquid chromatography coupled to photodiode array detection and electrospray tandem mass spectrometry [J]. J Agric Food Chem, 2012, 60(36): 9 023-9 034. [15] CHEN Hai-fang, ZHANG Wu-gang, YUAN Jin-bin, et al. Simultaneous quantification of polymethoxylated flavones and coumarins in Fructus aurantii and Fructus aurantii immaturus using HPLC-ESI-MS/MS [J]. J Pharmaceut Biomed, 2012(59): 90-95. [16] 黃明發(fā), 蘇學素, 焦必寧, 等. 柑橘多甲氧基黃酮的檢測及分離純化技術研究進展 [J]. 食品科學, 2009(1): 275-281. [17] MOULY P P, GAYDOU E M, ARZOUYAN C. Separation and quantitation of orange juices using liquid chromatography of polymethoxylated flavones [J]. Analusis, 1999, 27(3): 284-288.