• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      生物起搏中的病毒載體

      2018-03-21 08:32:00張健綜述黃從新審校
      心血管病學(xué)進(jìn)展 2018年1期
      關(guān)鍵詞:基因治療腺病毒宿主

      張健 綜述 黃從新 審校

      (武漢大學(xué)人民醫(yī)院心內(nèi)科 武漢大學(xué)心血管病研究所 心血管病湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 武漢 430060)

      心臟生物起搏是指通過利用基因過表達(dá)、基因抑制、干細(xì)胞基因修飾等相關(guān)技術(shù)對機(jī)體受損的自律性節(jié)律點(diǎn)或傳導(dǎo)系統(tǒng)進(jìn)行修復(fù),從而構(gòu)建一個(gè)“生物起搏器”,使心臟的起搏和傳導(dǎo)功能得以恢復(fù),從心臟的生理功能和人體適應(yīng)性的角度,避免了傳統(tǒng)電子起搏器的缺陷和嚴(yán)重并發(fā)癥,是更理想的治療方式[1]?;蛑委熓菢?gòu)建“生物起搏器”的有效方法,即將目的基因?qū)胧軗p的自律性節(jié)律點(diǎn)或傳導(dǎo)系統(tǒng)的靶細(xì)胞中,通過導(dǎo)入目的基因表達(dá)相應(yīng)蛋白質(zhì)或抑制體內(nèi)某基因的表達(dá),從而達(dá)到恢復(fù)心臟起搏或傳導(dǎo)功能的目的[2]。而通過病毒載體進(jìn)行有效的基因轉(zhuǎn)染是基因治療的先決條件。良好的病毒載體系統(tǒng)必須具備三要素[3]:安全性(病毒基因組的拆分與去除)、轉(zhuǎn)導(dǎo)高效性和相對特異性(受體-配體介導(dǎo)的主動(dòng)轉(zhuǎn)染)、基因組類型與宿主依賴性(不同病毒的感染表達(dá)特性與應(yīng)用)。雖然現(xiàn)今所用的病毒載體有不錯(cuò)的效果,但均存在一定的局限性,現(xiàn)就當(dāng)前生物起搏研究所涉及的病毒載體做一綜述。

      1 生物起搏中常用病毒載體的結(jié)構(gòu)特性

      病毒宿主范圍廣,可以高效轉(zhuǎn)染分裂細(xì)胞與非分裂細(xì)胞,幾乎適用于所有細(xì)胞系、原代細(xì)胞和部分組織,因此作為基因治療的有利工具,廣泛應(yīng)用于實(shí)驗(yàn)研究和臨床治療;但病毒是病原體,在利用病毒時(shí),通常去除其中多個(gè)和病毒活性相關(guān)的序列結(jié)構(gòu),再引入實(shí)驗(yàn)所需要的目的基因的序列和表達(dá)結(jié)構(gòu),而制備出具有感染力的病毒,通過感染細(xì)胞或活體組織,實(shí)現(xiàn)目的基因在細(xì)胞或活體組織中表達(dá)。目前生物起搏中常用的病毒是慢病毒、腺病毒和腺相關(guān)病毒(adeno-associated virus,AAV )(見表1)。

      1.1 慢病毒

      表1 不同病毒載體的主要特性

      慢病毒屬于逆轉(zhuǎn)錄病毒屬,由兩條相同的正鏈RNA組成的有包膜的球形病毒,通過DNA中間體復(fù)制,并與宿主細(xì)胞的染色體隨機(jī)整合?,F(xiàn)應(yīng)用最廣泛的慢病毒載體是以人類免疫缺陷Ⅰ型病毒為基礎(chǔ)發(fā)展起來的。其主要優(yōu)勢如下[4-5]:(1)慢病毒載體系統(tǒng)宿主范圍廣,能夠有效感染分裂細(xì)胞和非分裂細(xì)胞;(2)慢病毒載體能承載不超過4 kb的外源片段,滴度隨插入片段長度增加而降低;(3)慢病毒能隨機(jī)整合至宿主染色體上并對轉(zhuǎn)錄沉默作用有一定的抵抗力,形成穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞系,持續(xù)高水平表達(dá);(4)慢病毒載體中可以插入組織細(xì)胞特異性的啟動(dòng)子和增強(qiáng)子,提高轉(zhuǎn)入基因的轉(zhuǎn)錄靶向性,使慢病毒載體中的目的基因在特定的組織細(xì)胞中表達(dá)。主要的局限[6-7]:(1)在體水平表達(dá)較差、轉(zhuǎn)染動(dòng)物滴度低、效率低,滴度一般為108TU/mL;(2)中度免疫原性、細(xì)胞毒性大、有致瘤致突變的危險(xiǎn),生物安全性較低;(3)表達(dá)周期長,約需96 h表達(dá),作用起效緩慢。慢病毒載體的發(fā)展經(jīng)歷了4個(gè)階段,從第一代的兩質(zhì)粒系統(tǒng)到第四代的四質(zhì)粒系統(tǒng)[8],載體系統(tǒng)不斷完善,生物安全性不斷提高,使其實(shí)現(xiàn)在多種類型的細(xì)胞和動(dòng)物中特異而穩(wěn)定的基因表達(dá)和基因敲除都成為可能,并且繼續(xù)保留了自身失活的優(yōu)勢,在基因工程的研究中發(fā)揮著非常重要的作用。

      1.2 腺病毒

      腺病毒是直徑為65~80 nm的線性無包膜的雙鏈 DNA 病毒。其中纖維突起長度不同,血清型也各不相同。因此纖維突起具有血清特異性,且含有負(fù)責(zé)體外血細(xì)胞凝集的種屬特異性抗原決定位點(diǎn)[9]。腺病毒通過受體介導(dǎo)的內(nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),然后腺病毒基因組轉(zhuǎn)移至細(xì)胞核內(nèi),保持在染色體外,不整合進(jìn)入宿主細(xì)胞基因組中,經(jīng)過一系列剪切和轉(zhuǎn)錄過程,最終包裝成新的病毒顆粒[10]。腺病毒載體經(jīng)過第一代的復(fù)制區(qū)域缺失到第三代病毒基因的完全清除,不斷利用更強(qiáng)的啟動(dòng)子及調(diào)控序列來提高腺病毒攜帶的外源基因在細(xì)胞內(nèi)的表達(dá)水平[11]。目前,用于基因治療是以5型腺病毒為代表的腺病毒載體,主要具有以下優(yōu)勢[12-14]:(1)腺病毒載體轉(zhuǎn)基因效率高,體外實(shí)驗(yàn)通常接近100%的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率;(2)可高效轉(zhuǎn)染不同類型的人組織細(xì)胞,不受靶細(xì)胞是否為分裂細(xì)胞所限;(3)外源基因容量大(7~8 kb),滴度隨插入片段長度增加而降低;(4)通過細(xì)胞內(nèi)復(fù)制可達(dá)到較髙的滴度,在細(xì)胞培養(yǎng)物中重組病毒滴度可達(dá)1011TU/mL;(5)安全性高,無插入突變激活癌基因的危險(xiǎn);(6)腺病毒載體生產(chǎn)工藝簡便、制備純化相對容易。由于這些突出的優(yōu)勢,腺病毒載體在基因治療和臨床試驗(yàn)方面有了越來越多的應(yīng)用,成為繼逆轉(zhuǎn)錄病毒載體之后廣泛應(yīng)用的病毒載體;但在應(yīng)用過程中仍存在細(xì)胞難穩(wěn)定轉(zhuǎn)染、表達(dá)持續(xù)時(shí)間僅2~3周,動(dòng)物上表達(dá)效率低、免疫原性高、易引起炎癥反應(yīng)和系統(tǒng)毒性等局限[15]。近幾年,復(fù)制型、低抗原性和靶向腺病毒載體的出現(xiàn),預(yù)示著隨著對腺病毒的深入研究,對于腺病毒的應(yīng)用會(huì)更加安全有效,在基因治療中發(fā)揮更加重要的作用。

      1.3 AAV

      AAV是基因組為4.7 kb的線狀單鏈無包膜DNA病毒,直徑為20~26 nm,屬于微小病毒科的依賴性病毒類,完整的感染周期需要腺病毒或者皰疹病毒參與,因此名為AAV。因此潛在的AAV基因組主要保持靜止?fàn)顟B(tài),直到有利的輔助條件才進(jìn)行基因組切除和復(fù)制,從而實(shí)現(xiàn)病毒基因組表達(dá)。重組腺相關(guān)病毒載體(recombinant adeno-associated virus,rAAV) 源于非致病的野生型AAV,包括代替rep和cap基因的目的基因、啟動(dòng)子和多聚腺苷酸化序列。rAAV載體傾向于定點(diǎn)整合至宿主基因組,即核糖體DNA序列和回文序列,有利于維持治療基因在分裂細(xì)胞的長期表達(dá),并且減少了其他病毒隨機(jī)整合可能導(dǎo)致插入突變的風(fēng)險(xiǎn)[16]。AAV主要優(yōu)勢如下[17-18]:(1)安全性最高(RK1級別),目前無報(bào)道其參與任何疾病的發(fā)生;(2)感染宿主范圍廣,感染分裂細(xì)胞與非分裂細(xì)胞;(3)相對特異性高,不同血清型可靶向不同器官;(4)免疫原性和宿主炎癥反應(yīng)極低;(5)表達(dá)時(shí)程長(可穩(wěn)定表達(dá)半年以上);(6)超高的在體感染效率,滴度可達(dá)1012vg/mL;(7)具有較好的熱穩(wěn)定性和抗酸堿性;但也存在一定的局限[19-20]:(1)片段容量?。赫麄€(gè)AAV基因組4 kb,引入啟動(dòng)子、熒光基團(tuán)等固定元件后,外源插入片段在2 kb以內(nèi);(2)瞬時(shí)表達(dá)量較低,感染后需要較長時(shí)間才能達(dá)到表達(dá)高峰;(3)低水平表達(dá),細(xì)胞水平需要表達(dá)7 d左右,動(dòng)物水平需要表達(dá)2周左右;(4)感染體外細(xì)胞能力不強(qiáng),細(xì)胞水平轉(zhuǎn)染效率不高;(5)人類接觸多種AAV血清型,體內(nèi)中和抗體不斷上升。從以上看,AAV作為基因治療的基因遞送載體在基礎(chǔ)試驗(yàn)和臨床研究方面都具有非常廣闊的前景。

      2 生物起搏中病毒載體的應(yīng)用選擇

      目前生物起搏尚處于基礎(chǔ)研究階段,以病毒為載體進(jìn)行基因治療,從病毒載體的制備和選擇,到表達(dá)時(shí)間的不斷延長,均取得了不錯(cuò)的進(jìn)展,但隨之而來的致心律失常性、細(xì)胞毒性和致瘤性等安全問題也亟待解決。在基礎(chǔ)基因治療可細(xì)分為“體內(nèi)” 基因傳遞與“體外”基因傳遞兩種形式。

      2.1 生物起搏的體外實(shí)驗(yàn)

      體外實(shí)驗(yàn)是指在體外使用從其通常的生物學(xué)環(huán)境中分離的生物體組分進(jìn)行研究,包括細(xì)胞試驗(yàn)、體外器官試驗(yàn)等,離開了體內(nèi)的內(nèi)環(huán)境調(diào)控,影響因素比較單一,且可人為控制,可實(shí)現(xiàn)物種特異性,可進(jìn)行更簡單、更方便和更詳細(xì)的分析。生物起搏中的體外實(shí)驗(yàn)主要是細(xì)胞實(shí)驗(yàn),將外源基因?qū)氚屑?xì)胞,研究基因的表達(dá)調(diào)控、突變分析和蛋白質(zhì)生產(chǎn)。細(xì)胞轉(zhuǎn)染技術(shù)常規(guī)上可分為瞬時(shí)轉(zhuǎn)染和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染兩大類。

      瞬時(shí)轉(zhuǎn)染,即外源基因進(jìn)入靶細(xì)胞后,存在于游離的載體上,不整合在細(xì)胞的染色體上。典型代表就是腺病毒載體,因其體外轉(zhuǎn)染效率高、外源容量大、無插入突變危險(xiǎn)等上述優(yōu)點(diǎn),因而是目前在國內(nèi)外生物起搏研究中應(yīng)用最多的病毒載體,常作為攜帶目的基因的載體介導(dǎo)目的基因轉(zhuǎn)染至靶細(xì)胞,從而誘導(dǎo)靶細(xì)胞向起搏細(xì)胞分化。例如將攜帶Tbx18的重組腺病毒載體轉(zhuǎn)染脂肪干細(xì)胞,與新生大鼠心室心肌細(xì)胞共同培養(yǎng),竇房結(jié)特異基因HCN4表達(dá)明顯高于對照組,并可檢測到超極化激活的內(nèi)向離子電流(If)[21]。近年來研究者致力于胚胎發(fā)育通路的再激活,誘導(dǎo)出生后的心肌細(xì)胞向起搏樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化,即心肌重編程,一旦心肌細(xì)胞重編程,將不再需要誘導(dǎo)基因的持續(xù)表達(dá)[22]。竇房結(jié)的發(fā)育機(jī)制十分復(fù)雜,是Tbx3、Tbx5、Tbx18、Shox2、Isl1等多種基因的多重調(diào)控和相互作用的結(jié)果。因此聯(lián)合不同基因共表達(dá),模擬竇房結(jié)發(fā)育過程,或許能從根本上實(shí)現(xiàn)形態(tài)和功能起搏。已有研究證明聯(lián)合基因轉(zhuǎn)染能提高重編程效率,3個(gè)轉(zhuǎn)錄因子即可誘導(dǎo)心肌重編程[23]。而腺病毒的外源片段容量較大,可以容納較多基因片段,為實(shí)現(xiàn)心肌重編程提供了前提條件。

      穩(wěn)定轉(zhuǎn)染即目的基因整合至宿主細(xì)胞的染色體上,生物起搏中的典型代表為慢病毒。例如,Zhou等[24]將攜帶HCN2的慢病毒轉(zhuǎn)染至兔骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,與新生兔心室肌細(xì)胞共同培養(yǎng)后,HCN2轉(zhuǎn)染的骨髓干細(xì)胞的兔心肌細(xì)胞的平均搏動(dòng)頻率為(149±14)次/min,明顯高于對照組(87±11)次/min,并且可記錄到明顯的If電流。Feng等[25]將攜帶Shox2的慢病毒載體轉(zhuǎn)染犬骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞并與新生大鼠心肌細(xì)胞共同培養(yǎng),與對照組相比心肌細(xì)胞搏動(dòng)頻率明顯增加,發(fā)現(xiàn)Tbx3、HCN4和Cx45表達(dá)上調(diào),而Nkx2.3和Cx43表達(dá)下調(diào),結(jié)果表明,Shox2的過表達(dá)可以調(diào)節(jié)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞在起搏器樣細(xì)胞中的分化。慢病毒載體可實(shí)現(xiàn)目的基因在細(xì)胞中的高水平表達(dá),為生物起搏的前期篩選提供了有利的工具。

      2.2 生物起搏的體內(nèi)實(shí)驗(yàn)

      體內(nèi)實(shí)驗(yàn)是指在生物(微生物、動(dòng)物、人類)中進(jìn)行的研究,能夠真實(shí)反映受內(nèi)環(huán)境(主要是神經(jīng)系統(tǒng)、內(nèi)分泌系統(tǒng)和免疫系統(tǒng)等的復(fù)雜網(wǎng)絡(luò))調(diào)控下干預(yù)措施的作用,是走向臨床必經(jīng)的階段。生物起搏的體內(nèi)實(shí)驗(yàn)主要是動(dòng)物實(shí)驗(yàn),目前有效的體內(nèi)基因遞送方式包括心肌局部注射、心外膜下注射和心包腔注射。

      前期研究者試圖通過腺病毒介導(dǎo)的離子通道基因的表達(dá)來誘導(dǎo)異位自律性。最常用的是心肌直接局部注射病毒載體,主要位點(diǎn)是左束支和希氏束,例如Boink等[26]將攜帶HCN2+AC1的腺病毒植入房室傳導(dǎo)阻滯狗的左束支,在7 d內(nèi),犬的心率達(dá)到了(129±28.9)次/min,表明HCN2+AC1過表達(dá)比HCN2單基因表達(dá)具有更高效的生物起搏和更高的自主調(diào)節(jié)靈敏度。Cingolani等[27]將攜帶Kir2.1AAA+HCN2基因的腺病毒載體混合物通過導(dǎo)管注入三度房室傳導(dǎo)阻滯豬的希氏束,轉(zhuǎn)染基因的豬在14 d內(nèi)心率(93.5±7)次/min明顯高于安裝電子起搏器豬的心率(59.4±4)次/min,注射部位有明顯的自發(fā)起搏活動(dòng);但轉(zhuǎn)基因表達(dá)易直接局限在注射位點(diǎn)周圍,轉(zhuǎn)染效率不佳。而心包腔注射,可以實(shí)現(xiàn)100%跨壁基因轉(zhuǎn)染心房,可以考慮應(yīng)用于生物起搏[28]。同時(shí)也發(fā)現(xiàn)了腺病毒作為載體攜帶基因構(gòu)建生物起搏點(diǎn)有顯著的局限性,即相對短暫的起搏活性和較高的免疫原性。因?yàn)橄俨《静⒉幌衿渌《疽粯诱系剿拗骷?xì)胞的基因中,而是作為DNA游離體外存在于細(xì)胞核中,所以其介導(dǎo)的基因不能穩(wěn)定表達(dá),并且腺病毒一般于第2~3天開始表達(dá),第6~7天穩(wěn)定表達(dá),最長持續(xù)28 d,可見腺病毒誘導(dǎo)的基因表達(dá)呈現(xiàn)短暫、瞬時(shí)、高效的特點(diǎn),隨著時(shí)間的流逝目的基因漸漸的丟失,這使得起搏功能并不能長期穩(wěn)定地維持。

      慢病毒載體與宿主細(xì)胞染色體隨機(jī)整合并能實(shí)現(xiàn)穩(wěn)定遺傳,因此能實(shí)現(xiàn)心肌細(xì)胞在體內(nèi)和體外的長期基因轉(zhuǎn)染和表達(dá),使構(gòu)建穩(wěn)定的生物起搏點(diǎn)成為了可能。例如,Lu等[29]將HCN4修飾的骨髓干細(xì)胞通過慢病毒載體注射三度房室傳導(dǎo)阻滯狗的希氏束,結(jié)果發(fā)現(xiàn)體內(nèi)表達(dá)功能性HCN4通道至少可以維持6周,產(chǎn)生生物起搏器活動(dòng),導(dǎo)致起始于注射部位的休息和運(yùn)動(dòng)心率明顯高于對照組犬。然而慢病毒載體投入臨床使用,由于存在啟動(dòng)子插入激活癌基因或?qū)е乱职┗虻氖Щ睿渍T發(fā)腫瘤的可能性,因此其生物安全性仍存在很大的問題。但心臟組織主要由非分裂細(xì)胞組成,基因治療不需要轉(zhuǎn)染細(xì)胞的細(xì)胞分裂,治療基因不參與細(xì)胞增殖,插入突變基因也從未證實(shí)在HIV陽性患者出現(xiàn),所以,這種情況下,腫瘤形成的風(fēng)險(xiǎn)較低,慢病毒因此普遍認(rèn)為是一個(gè)安全載體[30]。研究者應(yīng)不斷改進(jìn)慢病毒載體系統(tǒng),提高其生物安全性,進(jìn)一步提高其病毒滴度,構(gòu)建一個(gè)長期穩(wěn)定的生物起搏點(diǎn)。

      AAV是迄今為止最安全、 最良好、 最有前景的基因治療工具。迄今為止,已有超過150種突變體,13種人類和非人類血清型,可以特異性靶向不同的組織或器官[31]。在眾多血清型中,只有AAV-DJ比較適宜感染細(xì)胞,其余血清型表達(dá)效率較弱,但動(dòng)物在體感染表達(dá)效率高,因此多用于動(dòng)物實(shí)驗(yàn)。對心肌組織親和力較強(qiáng)的有AAV1、AAV6、AAV7、AAV8和AAV9五種血清型[32]。其中,AAV9在心臟可實(shí)現(xiàn)高效穩(wěn)定的基因轉(zhuǎn)移且足夠安全不影響心臟其他正常功能,表明AAV9可能是實(shí)現(xiàn)心臟基因轉(zhuǎn)移載體的理想選擇[33]。Chan等[34]提議用rAAV9實(shí)現(xiàn)hHCN1ΔΔΔ(S3-S4連接被刪除,表達(dá)If電流生物學(xué)活性)在病態(tài)竇房結(jié)綜合征和完全性心臟傳導(dǎo)阻滯的豬模型中過表達(dá),使心肌細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)楦]房結(jié)樣細(xì)胞,增加起搏頻率。由于其片段容量小、體外感染效率低等局限,迄今為止,在生物起搏中的應(yīng)用仍較少。但AAV作為基因載體有著非常明顯的優(yōu)勢,隨著對其結(jié)構(gòu)和生物特性的研究深入,AAV載體系統(tǒng)的不斷完善,將在生物起搏的研究中發(fā)揮非常重要的作用。

      綜上所述,理想的病毒載體應(yīng)是高滴度,具有優(yōu)先的預(yù)先形成的免疫力,并能逃避宿主免疫反應(yīng),以預(yù)防與劑量相關(guān)的不良反應(yīng)。除上述載體系統(tǒng)外,在基因的遞送過程中,還有逆轉(zhuǎn)錄病毒、泡沫病毒等病毒載體和非病毒載體。另外,隨著干細(xì)胞的研究發(fā)現(xiàn),有學(xué)者聯(lián)合應(yīng)用基因生物起搏和細(xì)胞生物起搏技術(shù),最終得到了高水平的類似If的電流,產(chǎn)生自發(fā)搏動(dòng)心律[35-36]。研究者可根據(jù)不同的實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮蜅l件選擇不同的載體,然而到現(xiàn)在為止,只有一個(gè)基因載體應(yīng)用于臨床,表明在基因治療中系統(tǒng)的靶向定位比預(yù)想中更復(fù)雜。日后關(guān)于生物起搏中病毒載體的研究,主要解決其免疫原性、細(xì)胞毒性和穩(wěn)定性等問題,隨著研究的深入和技術(shù)與方法的不斷完善,生物起搏有著非常廣闊的應(yīng)用前景,將成為人們治療緩慢性心律失常的新技術(shù),造福于人類。

      [1] Boink GJ,Christoffels VM,Robinson RB,et al.The past,present,and future of pacemaker therapies[J].Trends Cardiovasc Med,2015,25(8):661-673.

      [2] Li RA.Gene-and cell-based bio-artificial pacemaker: what basic and translational lessons have we learned?[J].Gene Ther,2012,19(6):588-595.

      [3] Chira S,Jackson CS,Oprea I,et al.Progresses towards safe and efficient gene therapy vectors[J].Oncotarget,2015,6(31):30675-30703.

      [4] Ronen K,Negre O,Roth S,et al.Distribution of lentiviral vector integration sites in mice following therapeutic gene transfer to treat beta-thalassemia[J].Mol Ther,2011,19(7):1273-1286.

      [5] Ambrosi A,Glad IK,Pellin D,et al.Estimated comparative integration hotspots identify different behaviors of retroviral gene transfer vectors[J].PLoS Comput Biol,2011,7(12):e1002292.

      [6] Wang Z,Tang Z,Zheng Y,et al.Development of a nonintegrating Rev-dependent lentiviral vector carrying diphtheria toxin A chain and human TRAF6 to target HIV reservoirs[J].Gene Ther,2010,17(9):1063-1076.

      [7] Torres R,Garcia A,Jimenez M,et al.An integration-defective lentivirus-based resource for site-specific targeting of an edited safe-harbour locus in the human genome[J].Gene Ther,2014,21(4):343-352.

      [8] Groth AC,Liu M,Wang H,et al.Identification and characterization of enhancer-blocking insulators to reduce retroviral vector genotoxicity[J].PLoS One,2013,8(10):e76528.

      [9] Miravet S,Ontiveros M,Piedra J,et al.Construction,production,and purification of recombinant adenovirus vectors[J].Methods Mol Biol,2014,1089:159-173.

      [10] Alba R,Baker AH,Nicklin SA.Vector systems for prenatal gene therapy: principles of adenovirus design and production[J].Methods Mol Biol,2012,891(891):55-84.

      [11] Dormond E,Perrier M,Kamen A.From the first to the third generation adenoviral vector: what parameters are governing the production yield?[J].Biotechnol Adv,2009,27(2):133-144.

      [12] Raus S,Coin S,Monsurro V.Adenovirus as a new agent for multiple myeloma therapies: opportunities and restrictions[J].Korean J Hematol,2011,46(4):229-238.

      [13] Huang GH,Xu WB.Recent advance in new types of human adenovirus[J].Bing Du Xue Bao,2013,29(3):342-348.

      [14] Ehrke-Schulz E,Zhang W,Schiwon M,et al.Cloning and large-scale production of high-capacity adenoviral vectors based on the human adenovirus type 5[J].J Vis Exp,2016,107:e52894.

      [15] Thaci B,Ulasov IV,Wainwright DA,et al.The challenge for gene therapy: innate immune response to adenoviruses[J].Oncotarget,2011,2(3):113-121.

      [16] Qu W,Wang M,Wu Y,et al.Scalable downstream strategies for purification of recombinant adeno-associated virus vectors in light of the properties[J].Curr Pharm Biotechnol,2015,16(8):684-695

      [17] Mingozzi F,High KA.Therapeutic in vivo gene transfer for genetic disease using AAV: progress and challenges[J].Nat Rev Genet,2011,12(5):341-355.

      [18] Drouin LM,Agbandje-McKenna M.Adeno-associated virus structural biology as a tool in vector development[J].Future Virol,2013,8(12):1183-1199.

      [19] Salganik M,Hirsch ML,Samulski RJ.Adeno-associated virus as a mammalian DNA vector[J].Microbiol Spectr,2015,3(4):1128-1136.

      [20] Hastie E,Samulski RJ.Adeno-associated virus at 50: a golden anniversary of discovery,research,and gene therapy success—a personal perspective[J].Hum Gene Ther,2015,26(5):257-265.

      [21] Yang M,Zhang GG,Wang T,et al.TBX18 gene induces adipose-derived stem cells to differentiate into pacemaker-like cells in the myocardial microenvironment[J].Int J Mol Med,2016,38(5):1403-1410.

      [22] Talkhabi M,Razavi SM,Salari A.Global transcriptomic analysis of induced cardiomyocytes predicts novel regulators for direct cardiac reprogramming[J].J Cell Commun Signal,2017,11(2):193-204.

      [23] Addis RC,Ifkovits JL,Pinto F,et al.Optimization of direct fibroblast reprogramming to cardiomyocytes using calcium activity as a functional measure of success[J].J Mol Cell Cardiol,2013,60 (1):97-106.

      [24] Zhou YF,Yang XJ,Li HX,et al.Mesenchymal stem cells transfected with HCN2 genes by LentiV can be modified to be cardiac pacemaker cells[J].Med Hypotheses,2007,69(5):1093-1097.

      [25] Feng Y,Yang P,Luo S,et al.Shox2 influences mesenchymal stem cell fate in a co-culture model in vitro[J].Mol Med Rep,2016,14(1):637-642.

      [26] Boink GJ,Nearing BD,Shlapakova IN,et al.Ca(2+)-stimulated adenylyl cyclase AC1 generates efficient biological pacing as single gene therapy and in combination with HCN2[J].Circulation,2012,126(5):528-536.

      [27] Cingolani E,Yee K,Shehata M,et al.Biological pacemaker created by percutaneous gene delivery via venous catheters in a porcine model of complete heart block[J].Heart Rhythm,2012,9(8):1310-1318

      [28] Blazquez R,Sanchez-Margallo FM,Crisostomo V,et al.Intrapericardial delivery of cardiosphere-derived cells: an immunological study in a clinically relevant large animal model[J].PLoS One,2016,11(2):e149001.

      [29] Lu W,Yaoming N,Boli R,et al.mHCN4 genetically modified canine mesenchymal stem cells provide biological pacemaking function in complete dogs with atrioventricular block[J].Pacing Clin Electrophysiol,2013,36(9):1138-1149.

      [30] Schlimgen R,Howard J,Wooley D,et al.Risks associated with lentiviral vector exposures and prevention strategies[J].J Occup Environ Med,2016,58(12):1159-1166.

      [31] Huang LY,Halder S,Agbandje-McKenna M.Parvovirus glycan interactions[J].Curr Opin Virol,2014,7:108-118.

      [32] Yang L,Jiang J,Drouin LM,et al.A myocardium tropic adeno-associated virus (AAV) evolved by DNA shuffling and in vivo selection[J].Proc Natl Acad Sci USA,2009,106(10):3946-3951.

      [33] Fang H,Lai NC,Gao MH,et al.Comparison of adeno-associated virus serotypes and delivery methods for cardiac gene transfer[J].Hum Gene Ther Methods,2012,23(4):234-241.

      [34] Chan PK,Li RA.Gene delivery for the generation of bioartificial pacemaker[J].Methods Mol Biol,2017,1521:293.

      [35] Bruzauskaite I,Bironaite D,Bagdonas E,et al.Relevance of HCN2-expressing human mesenchymal stem cells for the generation of biological pacemakers[J].Stem Cell Res Ther,2016,7(1):67.

      [36] Saito Y,Nakamura K,Yoshida M,et al.Enhancement of spontaneous activity by HCN4 overexpression in mouse embryonic stem cell-derived cardiomyocytes - a possible biological pacemaker[J].PLoS One,2015,10(9):e138193.

      猜你喜歡
      基因治療腺病毒宿主
      人腺病毒感染的病原學(xué)研究現(xiàn)狀
      傳染病信息(2022年3期)2022-07-15 08:22:14
      病原體與自然宿主和人的生態(tài)關(guān)系
      科學(xué)(2020年3期)2020-11-26 08:18:22
      龜鱉類不可能是新冠病毒的中間宿主
      某部腺病毒感染疫情調(diào)查分析
      洪專:中國基因治療領(lǐng)域的引路人
      基因治療在醫(yī)學(xué)中的應(yīng)用?
      豬乙型腦炎PrM-E重組腺病毒的構(gòu)建及免疫原性
      封閉端粒酶活性基因治療對瘢痕疙瘩成纖維細(xì)胞的影響
      表現(xiàn)為扁平苔蘚樣的慢性移植物抗宿主病一例
      載EPO腺病毒的PLGA納米纖維支架在體內(nèi)促進(jìn)骨缺損修復(fù)作用
      彝良县| 梧州市| 洮南市| 临沭县| 霍城县| 澜沧| 洪洞县| 宁陵县| 察隅县| 精河县| 芮城县| 鄂托克前旗| 茂名市| 成都市| 民勤县| 特克斯县| 长治县| 义乌市| 阜新市| 尚义县| 新蔡县| 衡山县| 宜丰县| 永安市| 白山市| 湘西| 延川县| 绥阳县| 界首市| 浮山县| 红安县| 娄烦县| 永昌县| 鸡西市| 九龙县| 龙门县| 昌宁县| 弋阳县| 长乐市| 湖北省| 长阳|