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      基于PRiME HLB前處理技術(shù)的雞蛋中四環(huán)素類藥物的快速篩選方法研究

      2018-04-09 01:25:45吳劍平李丹妮
      中國獸藥雜志 2018年3期
      關(guān)鍵詞:金霉素多西土霉素

      張 婧 ,潘 娟,嚴(yán) 鳳,吳劍平,李丹妮

      (上海市獸藥飼料檢測所,上海 201103)

      四環(huán)素類抗生素(Tetracyclines,TCs) 是一種廣譜抗菌素,因其抗菌性好、價格低廉,這類藥物常被用于畜禽疾病的預(yù)防和治療。獸醫(yī)臨床上常用的主要有四環(huán)素(TC)、金霉素(CTC)、土霉素(OTC)、多西環(huán)素(DOTC)等[1-2]。目前我國僅批準(zhǔn)金霉素和土霉素可以作為飼料添加劑使用,而四環(huán)素和多西環(huán)素不允許作為飼料添加劑使用[3]。但是,一些養(yǎng)殖戶為了追求經(jīng)濟(jì)效益,長期違規(guī)或超標(biāo)使用此類抗生素,造成藥物殘留[4-5]。這不僅會影響獸藥的治病療效,也給食用者的身體健康帶來嚴(yán)重危害[6-7]。我國針對四環(huán)素、金霉素、土霉素三種四環(huán)素類藥物規(guī)定了在禽蛋中的最大殘留限量為200 μg/kg[8],針對多西環(huán)素規(guī)定了在產(chǎn)蛋雞上禁用,但是,目前我國并沒有發(fā)布雞蛋中四環(huán)素類藥物殘留檢測方法的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn),因此,制定相應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)尤為重要。目前國內(nèi)外有關(guān)檢測雞蛋中四環(huán)素類藥物殘留的方法大多集中為高效液相色譜法[9-10]。多數(shù)前處理方法較為繁瑣,耗時較長,無法適應(yīng)當(dāng)前快速篩選檢測的要求。由于國內(nèi)大部分檢測機(jī)構(gòu)還缺乏昂貴的串聯(lián)質(zhì)譜儀,因此,使得已有報道的HPLC-MS/MS檢測方法[11-12]的應(yīng)用在大多數(shù)基層實驗室內(nèi)難以推廣。本文結(jié)合PRiME HLB快速通過式的前處理方式,開發(fā)了雞蛋中4種四環(huán)素類藥物的高效液相快速篩選檢測的方法。該方法步驟簡單、檢測快速,能夠靈敏地篩選并檢測雞蛋中四環(huán)素類藥物殘留,以期為雞蛋中四環(huán)素類藥物的標(biāo)準(zhǔn)制修訂提供參考和依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1儀器與試劑Waters高效液相色譜儀(Waters e2695-2998,Empower 3工作軟件);PRiME HLB固相萃取柱(Waters Oasis,3cc/60mg);PL202-L感量為0.01 g電子天平、pH計(梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司);AB135-S感量為0.00001 g電子天平(梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司); 漩渦混合器(美國Talboys公司);TARGIN VX-Ш多管渦旋振蕩器(北京踏棉科技有限公司)。Allegra TMX-22R Centrifuge高速冷凍離心機(jī)(美國BECKMAN COULTER公司);N-EVAP112氮吹儀(美國Orangaomation公司);Milli-QA10 超純水機(jī)(美國Millipore);0.22 μm親水PTFE過濾膜(上海安譜科學(xué)儀器有限公司)。甲醇、乙腈(色譜純,美國Merck公司);乙二胺四乙酸鈉、磷酸氫二鈉、檸檬酸、鹽酸、氫氧化鈉(分析純,上海凌峰化學(xué)試劑有限公司);三氟乙酸(色譜純,99.5%,美國Tedia公司)。標(biāo)準(zhǔn)品鹽酸金霉素(純度94.1%)、鹽酸土霉素(純度88.8%)、鹽酸四環(huán)素(純度97.5%)、鹽酸多西環(huán)素(純度85.2%)均購自中國藥品生物制品檢定所。

      1.2藥品和試劑的配制標(biāo)準(zhǔn)儲備液的配制:分別精密稱取鹽酸金霉素、鹽酸土霉素、鹽酸四環(huán)素、鹽酸多西環(huán)素標(biāo)準(zhǔn)品,用甲醇定容至10 mL,配制成濃度為1 mg/mL的土霉素、四環(huán)素、金霉素和多西環(huán)素標(biāo)準(zhǔn)儲備液。

      混合標(biāo)準(zhǔn)工作液的配制:分別準(zhǔn)確量取金霉素、土霉素、四環(huán)素、多西環(huán)素標(biāo)準(zhǔn)儲備液各1 mL,于100 mL容量瓶中,用甲醇溶解并稀釋至刻度,配制成濃度為10 μg/mL的土霉素、四環(huán)素、金霉素和多西環(huán)素混合標(biāo)準(zhǔn)工作液。

      混合標(biāo)準(zhǔn)曲線的配制:精密量取混合標(biāo)準(zhǔn)工作液適量,用流動相稀釋,制得土霉素、四環(huán)素、金霉素和多西環(huán)素濃度為50、100、200、400、1000、2000、5000 ng/mL的系列混合標(biāo)準(zhǔn)工作液。

      Mcllvaine緩沖溶液(pH 4.0)的制備:取21.01 g檸檬酸用水定容至1000 mL,制成0.1 mol/mL檸檬酸溶液。取71.63 g磷酸氫二鈉定容至1000 mL制成0.2 mol/L磷酸氫二鈉溶液。將1000 mL 0.1 mol/L檸檬酸溶液和625 mL 0.2 mol/L磷酸氫二鈉溶液混勻,用鹽酸或氫氧化鈉溶液調(diào)pH至4.0,現(xiàn)配現(xiàn)用。

      Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液的制備:將乙二胺四乙酸鈉60.5 g加入至1625 mL Mcllvaine緩沖溶液(pH 4.0)中,超聲溶解,混勻?,F(xiàn)配現(xiàn)用。

      1.3色譜條件色譜柱:Agilent C18(250 mm×4.6 mm,粒徑5 μm),柱溫為30 ℃,進(jìn)樣量為50 μL,流速1 mL /min,檢測波長為350 nm,0.01 mol/L三氟乙酸溶液-乙腈(75:25,V/V)作為流動相。

      1.4樣品前處理取均質(zhì)雞蛋樣品2 g(精確到0.01 g)于50 mL離心管中,精密加入Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液3 mL,渦旋1 min,精密加入乙腈溶液7 mL,充分振蕩10 min,9000 r/min離心5 min。精密量取上清液4 mL過PRiME HLB固相萃取柱,收集濾液于40 ℃下氮氣吹干。用1 mL流動相復(fù)溶,過0.22 μm濾膜,高效液相色譜法測定。

      2 結(jié)果與分析

      2.1線性范圍四環(huán)素、金霉素、土霉素和多西環(huán)素的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液用流動相配制,各出峰時間如圖1所示,四種藥物的線性范圍為50~5000 ng/mL,線性回歸情況如表1。

      圖1 四環(huán)素類混合標(biāo)準(zhǔn)工作液色譜圖(400 ng/mL)Fig 1 Chromatogram of the mixed Tetracycline standards (400 ng/mL)

      表1 四環(huán)素類藥物的線性回歸情況Tab 1 Linear regression of tetracyclines

      2.2回收率與精密度實驗采用空白雞蛋,分別添加四環(huán)素、金霉素、土霉素、多西環(huán)素標(biāo)準(zhǔn)工作液,制成含4種四環(huán)素類藥物濃度為100、200、400 μg/kg的基質(zhì)加標(biāo)試樣,進(jìn)行回收率實驗??瞻纂u蛋基質(zhì)色譜圖如圖2所示。每個批次同一添加水平做6次平行實驗,重復(fù)3個批次,測定結(jié)果見表2。由實驗結(jié)果可知,雞蛋中四環(huán)素的回收率達(dá)59.4%~80.5%,金霉素的回收率達(dá)42.6%~63.3%,土霉素的回收率達(dá)37.1%~66.7%,多西環(huán)素的回收率達(dá)80.6%~94.6%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均<30%,表明該方法滿足快速篩選的分析要求[13]。

      2.3檢測限和定量限本方法以信噪比S/N≥3確定雞蛋中4種四環(huán)素類藥物的最低檢測限為50 μg/kg,以S/N≥10確定雞蛋中4種四環(huán)素類藥物的定量限為100 μg/kg。

      圖2 空白雞蛋基質(zhì)色譜圖Fig 2 Chromatogram of the blank matrix

      表2 雞蛋中添加四環(huán)素類藥物回收率實驗結(jié)果Tab 2 Tetracyclines results of recovery test in egg

      3 討論與小結(jié)

      3.1提取液的選擇根據(jù)四環(huán)素類藥物的理化特性和相關(guān)文獻(xiàn)報道[14],此類藥物大都含有堿性的氨基和酸性的酚羥基和烯醇基,為酸堿兩性化合物,在酸性溶液(pH<7)、中性或堿性溶液(pH>7)中易與金屬離子、蛋白質(zhì)絡(luò)合,一般在弱酸溶液中較穩(wěn)定。目前國內(nèi)外提取方法大多以弱酸性的含有金屬絡(luò)合劑的Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液(pH 4.0)提取禽蛋中四環(huán)素類藥物,提取效果滿意[11-12,14]。已有報道的提取液還有0.1%甲酸乙腈[15]、5%高氯酸溶液[16]的混合液等。通過比較發(fā)現(xiàn),Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液(pH4.0)作為提取劑時回收率最高,0.1%甲酸乙腈混合液提取時回收率結(jié)果較低。5%高氯酸溶液提取時回收率較高,同時因凈化效果好可直接取上清液上機(jī)檢測,因此提取過程耗時短,但是,高氯酸溶液的強(qiáng)腐蝕性易腐蝕色譜柱,不適合長期大量的實際檢測?;诖?,本實驗提取液選用Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液(pH 4.0)。此外,由于需要沉淀雞蛋中含量較高的蛋白質(zhì),并且PRiME HLB固相萃取柱要求備用液中含有高比例有機(jī)相,所以,提取液最終選擇Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液(pH 4.0)和乙腈溶液。

      本實驗還優(yōu)化了Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液(pH 4.0)和乙腈溶液的體積比(添加含量為500 μg/kg),分別為40∶60(V/V),30∶70(V/V),20∶80(V/V),10∶90(V/V)。實驗發(fā)現(xiàn),當(dāng)二者比例為30∶70(V/V)時,凈化效果最好,回收率最高(表3),并且含高比例有機(jī)相的備用液過柱速度及濃縮速度較快,因此,二者比例選為30∶70(V/V)。由于Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液和乙腈溶液直接混合后易變渾濁,因此,提取時先加入Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液3 mL渦旋1 min,再加入乙腈溶液7 mL振蕩。

      3.2凈化方法的選擇目前常用的凈化方法包括了固相萃取、QuEChERS等方法。由于PRiME HLB固相萃取和QuEChERS方法相比,傳統(tǒng)的C18粉和HLB固相萃取的凈化方法簡單且耗時短,可以滿足快速篩選檢測的要求。因此,本實驗比較了PRiME HLB固相萃取和QuEChERS兩種新一代的凈化方法。PRiME HLB固相萃取柱是基于HLB填料進(jìn)行的升級產(chǎn)品,屬于反相保留機(jī)理,對于脂肪、磷脂、色素具有很好的吸附作用,可以有效去除蛋白、鹽、磷脂等95%以上的基質(zhì)干擾物。它是簡單的通過式凈化處理,無需任何活化和平衡,使得樣品凈化過程簡單、快速、有效[17]。QuEChERS技術(shù)具備高通量、快速、成本低的特點,由于農(nóng)藥殘留檢測領(lǐng)域逐步被引入到獸藥殘留檢測領(lǐng)域[18-19]。結(jié)合雞蛋樣品中含水量較高的特點,QuEChERS方法是加入4 g Na2SO4和1 g NaCl作為除水劑,再加入提取液振蕩離心后取上清4 mL于40 ℃氮氣吹干,1 mL流動相復(fù)溶后上機(jī)測定。結(jié)果表明,PRiME HLB凈化方法的回收率比QuEChERS凈化后的回收率更高,因此,選用PRiME HLB作為凈化手段。

      表3 Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液與乙腈不同體積比的提取效率研究Tab 3 Research on different volume ratios of Na2EDTA-Mcllvaine and acetonitrile

      本實驗還比較了不同規(guī)格大小的PRiME HLB固相萃取柱的回收率,結(jié)果發(fā)現(xiàn),6cc/150mg和3cc/60mg的規(guī)格凈化后的回收率無明顯差異,因此,選用成本更低3cc/60mg的PRiME HLB固相萃取柱。

      3.3基質(zhì)效應(yīng)的考察為考察本方法受雞蛋基質(zhì)效應(yīng)的影響,實驗采用了提取后加入法,用流動相配制了濃度為200、400 ng/mL的標(biāo)準(zhǔn)品溶液,測得響應(yīng)值A(chǔ);同時將空白樣品經(jīng)實驗步驟1.4項處理后,加入混合標(biāo)準(zhǔn)工作液,配制成濃度為200、400 ng/mL的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液,并測得響應(yīng)值B。通過基質(zhì)效應(yīng)計算公式ME%=響應(yīng)值B/響應(yīng)值A(chǔ)×100%,得該方法中雞蛋基質(zhì)效應(yīng)為85%~107%,故認(rèn)為基質(zhì)效應(yīng)可忽略。

      本實驗采用Na2EDTA-Mcllvaine 緩沖液和乙腈溶液的提取方法,結(jié)合新一代的PRiME HLB固相萃取柱凈化方法,在確保目標(biāo)藥物篩選回收率的基礎(chǔ)上,建立了簡單、快速的雞蛋中四環(huán)素類藥物的液相篩選方法。該方法大大簡化了前處理步驟,縮短了前處理時間,提高了檢測效率,更廣泛地適用于大多數(shù)基層實驗室。

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