Muhammad Naeem Asghar
摘要 [目的]研究細(xì)莖石斛多糖的最佳提取條件及其抗氧化活性。[方法]通過(guò)單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面分析,研究細(xì)莖石斛多糖(DMP)的最佳提取條件。通過(guò)體外試驗(yàn)評(píng)價(jià)細(xì)莖石斛多糖的體外抗氧化活性。[結(jié)果]在料液比為1∶53,時(shí)間為3 h,溫度為83 ℃的提取條件下,DMP最高產(chǎn)量可達(dá)185 mg/g。體外抗氧化活性研究結(jié)果表明,DMP對(duì)超氧陰離子自由基、ABTS自由基、羥基自由基具有明顯的清除作用,其中對(duì)ABTS自由基清除能力與維生素C相當(dāng);DMP對(duì)DPPH自由基的清除能力和還原能力效果比較適中。[結(jié)論]該研究揭示細(xì)莖石斛多糖可以作為一種天然抗氧化劑,為基于多糖的藥物及保健食品的開(kāi)發(fā)提供新思路。
關(guān)鍵詞 細(xì)莖石斛;多醣;最佳提取條件;抗氧化活性
中圖分類號(hào) S-3 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號(hào) 0517-6611(2018)20-0001-05
Abstract [Objective] The research aimed to study the optimal extraction conditions and antioxidant activity of polysaccharide from Dendrobium monliforme.[Method] Through singlefactor tests and response surface analysis, the optimal conditions for extraction of polysaccharide from Dendrobium monliforme were studied. The antioxidant activity of polysaccharide from Dendrobium monliforme was evaluated in vitro.[Result]The maximum yield obtained 185 mg/g at solidliquid ratio 1∶53, time 3 hours and temperature 83 ℃.The results of in vitro antioxidant activity showed that DMP had obvious scavenging effects of superoxide anion radical, ABTS radical, hydroxyl radical,while moderate scavenging effects of DPPH radical. In addition, ABTS radical scavenging activity of DMP was as stronger as vitamin C. [Conclusion]This polysaccharide could be developed as a new source of natural antioxidants, polysaccharide-based drugs or food ingredients with specific health improving functions.
Key words Dendrobium moniliforme;Polysaccharide;Optimal extraction conditions;Antioxidant activity
細(xì)莖石斛[Dendrobium moniliforme (L.) Sw.]為蘭科石斛屬(Dendrobium)多年生草本植物,其莖是藥用石斛的重要來(lái)源,具有滋陰養(yǎng)胃、益氣潤(rùn)肺、潤(rùn)陰生津、清腦明目、益壽延年等功效,對(duì)咽喉疾病、腸胃疾病、白內(nèi)障、心血管疾病、糖尿病和抑制腫瘤生長(zhǎng)具有顯著療效[1]。石斛的藥用成分主要是多糖,在石斛多糖的作用下,能夠顯著提高人體內(nèi)超氧化歧化酶(SOD)含量,降低過(guò)氧化脂質(zhì)(LPO)對(duì)人體的作用,清除體內(nèi)自由基[2-3]。而且,石斛多糖還有抗激素、抗前列腺、抗腫瘤等功能活性[4-6]。但是,目前尚缺少有關(guān)細(xì)莖石斛多糖的最佳提取條件和體外抗氧化活性方面的研究。筆者基于Box-Behnken設(shè)計(jì),采用響應(yīng)面法(RSM)優(yōu)化細(xì)莖石斛的水溶性多糖的提取條件,并研究多糖的抗氧化活性,以期為其應(yīng)用開(kāi)發(fā)提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 材料 細(xì)莖石斛原材料采集于安徽省。
1.2 方法
1.2.1 單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)。
通過(guò)單因素試驗(yàn)分析提取溫度、提取時(shí)間和料液比對(duì)DMP產(chǎn)率的影響。在優(yōu)化試驗(yàn)因素期間,改變其中一個(gè)因素,而其他因素在每個(gè)試驗(yàn)中保持不變。試驗(yàn)設(shè)計(jì)5個(gè)料液比1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60,選擇5個(gè)提取時(shí)間分別為0.5、1.0、2.0、3.0、4.0 h,提取溫度分別設(shè)計(jì)在20、40、60、80、100 ℃。
1.2.2 Box-Behnken設(shè)計(jì)。
根據(jù)單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì),確定提取變量的范圍。根據(jù)Box-Behnken設(shè)計(jì),將它們作為提取多糖的因子,并進(jìn)行了17次隨機(jī)試驗(yàn)以確定最佳水平。設(shè)計(jì)的5個(gè)重復(fù)用于估計(jì)誤差平方和。所有試驗(yàn)進(jìn)行3次,提取糖的平均含量作為響應(yīng)。通過(guò)初步的單因素試驗(yàn)確定變量的水平。表1中顯示了變量的實(shí)際值和編碼值,選擇用于試驗(yàn)的3個(gè)因素X1、X2和X3,分別表示高、中、低值,編碼分別為+1、0和-1。
響應(yīng)曲面曲線可以預(yù)測(cè)變量的最佳水平,實(shí)現(xiàn)多糖的最大產(chǎn)量?;貧w模型的重要性通過(guò)每個(gè)反應(yīng)的方差分析(ANOVA)來(lái)檢驗(yàn)。R2、調(diào)整R2、 預(yù)測(cè)R2顯示擬合指數(shù)的質(zhì)量,通過(guò)P值發(fā)現(xiàn)模型中的重要變量。另外,比較每個(gè)自變量的實(shí)驗(yàn)值和預(yù)測(cè)值(表2)。
1.2.3 細(xì)莖石斛多糖的提取。根據(jù)提取參數(shù)將干燥的細(xì)莖石斛粉末用蒸餾水提取3次,3次提取物合并,將合并的提取物過(guò)濾,收集上清液,以10 000 r/min離心10 min,并將濾液通過(guò)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器濃縮。將該物質(zhì)冷卻至室溫,并以1∶4(V/V)的比例緩慢加入95%乙醇,同時(shí)迅速攪拌,于室溫放置過(guò)夜[7]。乙醇沉淀后,通過(guò)Sevag的方法進(jìn)行脫蛋白[8]。然后,將提取物以8 000 r/min離心10 min后,并用冷凍干燥機(jī)進(jìn)行干燥,最終得到細(xì)莖石斛粗多糖(DMP),用于測(cè)定抗氧化活性的研究。
1.2.4 體外抗氧化活性測(cè)定。
1.2.4.1 DPPH自由基清除活性測(cè)定。根據(jù)Gao等[9]方法稍作修改,測(cè)定DMP對(duì)DPPH自由基的清除活性。2 mL不同濃度的多糖樣品(0.5、 1.0、 2.0、4.0和8.0 mg/mL)和2 mL的DPPH-乙醇溶液(0.16 mmol/L)混勻后在25 ℃下溫育15 min,然后在525 nm處測(cè)量吸光度。使用相同濃度抗壞血酸(VC)代替樣品作為陽(yáng)性對(duì)照。通過(guò)以下公式計(jì)算樣品的DPPH自由基清除活性。
1.2.4.2 超氧自由基清除活性測(cè)定。
DMP對(duì)超氧自由基的清除活性是根據(jù)He等[10]的方法并稍作修改。取pH 8.2的Tris-HCl緩沖液4.5 mL,在25 ℃水浴中預(yù)熱20 min。1 mL不同濃度的多糖溶液(0.5、 1.0、 2.0、4.0 和8.0 mg/mL)中依次加入0.4 mL (25 mmol/L)的焦性沒(méi)食子酸,并劇烈混合,在25 ℃反應(yīng)5 min,并用1 mL(8 mol/L)鹽酸終止反應(yīng),測(cè)定吸光度為A1。使用相同的測(cè)定程序,其中蒸餾水代替多糖和焦性沒(méi)食子酸測(cè)定吸光度為A2,焦性沒(méi)食子酸代替多糖測(cè)定吸光度為A3,蒸餾水代替焦性沒(méi)食子酸測(cè)定吸光度為A4。在325 nm處測(cè)量吸光度,通過(guò)以下公式以樣品的清除率評(píng)估樣品的清除超氧化物自由基活性。
超氧陰離子自由基清除率=[A3(A1A4)-A2]×100%
1.2.4.3 ABTS自由基清除試驗(yàn)。ABTS+試驗(yàn)溶液的配制是將5.0 mL (7 mmol/L) ABTS+和 2.88 μL (2.45 mmol/L)過(guò)硫酸鉀的混合而成,并在室溫下溫育16 h。在使用時(shí),ABTS+溶液用去離子水稀釋后,在 734 nm處測(cè)得吸光度為0.70±0.02可用。將0.1 mL不同的濃度(0.5、 1.0、 2.0、4.0 和8.0 mg/mL)的多糖樣品加入到1 mL的ABTS+溶液中并混合均勻。將樣品溶液在室溫下放置6 min進(jìn)行反應(yīng), 使用抗壞血酸(VC)作為陽(yáng)性對(duì)照,立即在734 nm處測(cè)量吸光度。在空白對(duì)照中, 樣品用蒸餾水代替。ABTS+清除率通過(guò)以下公式計(jì)算。
1.2.4.4 羥基自由基清除試驗(yàn)。
根據(jù)He等[10]的方法測(cè)量羥基自由基的清除活性。1 mL不同濃度的多糖樣品溶液(0.5、 1.0、 2.0、4.0 和8.0 mg/mL)、 l mL(9 mmol/ L)硫酸亞鐵和1 mL(9 mmol/ L)水楊酸乙醇溶液,于37 ℃混合反應(yīng)30 min。用蒸餾水作為參考,在510 nm處測(cè)量吸光度。考慮到多糖本身的吸光度,將用8.8 mmol/L H2O2替代多糖測(cè)定吸光度。通過(guò)下面公式評(píng)估樣品的抗氧化活性。
2 結(jié)果與分析
2.1 單因素分析
2.1.1 料液比對(duì)細(xì)莖石斛多糖提取率的影響。
從圖1可看出,在固定的提取時(shí)間3 h 和溫度80 ℃時(shí),隨著料液比從1∶20增加至1∶50,提取產(chǎn)率逐漸增加,當(dāng)料液比為1∶50提取率達(dá)到最高值。料液比超過(guò)1∶50時(shí),提取率會(huì)顯著降低。原因可能是水與原料的較大比例意味著內(nèi)部植物細(xì)胞與外部溶劑之間的濃度差異較大,從而使材料中進(jìn)入更多的多糖分子[11]??梢?jiàn)高比率可以反過(guò)來(lái)降低提取率。因此,該試驗(yàn)中1∶50被認(rèn)為是水與原料的最佳比例。
2.1.2 提取時(shí)間對(duì)DMP提取率的影響。
在水與原料的比例為1∶50,提取溫度為80 ℃時(shí),對(duì)不同提取時(shí)間對(duì)提取率的影響進(jìn)行考察。從圖2可以看出,在最初的3 h期間,提取產(chǎn)率顯著增加,然而隨著時(shí)間進(jìn)一步增加,產(chǎn)率會(huì)降低。這可能是由于加熱效應(yīng)和過(guò)度較長(zhǎng)的提取時(shí)間,使多糖的結(jié)構(gòu)遭到破壞和分解[12]。提取率在3 h前與提取時(shí)間成正比,3 h后沒(méi)有顯著增加。因此,最佳提取時(shí)間設(shè)定為3 h。
2.1.3 提取溫度對(duì)DMP提取率的影響。
提取溫度對(duì)DMP提取率的影響見(jiàn)圖3, 而提取時(shí)間和料液比分別固定為3 h和1∶50。當(dāng)提取溫度從20 ℃升高到80 ℃時(shí),提取率迅速增加,隨著溫度的進(jìn)一步升高,提取率有所下降。這種趨勢(shì)可能是由于高溫提高了多糖的擴(kuò)散系數(shù),提高了多糖在提取溶劑中的溶解度,導(dǎo)致多糖物質(zhì)從物料中流出到提取液中[13]。然而,較高的溫度可能會(huì)促進(jìn)多糖化合物的降解反應(yīng)。因此,該試驗(yàn)選擇的最佳提取溫度為80 ℃。
2.2 Box-Behnken分析
2.2.1 DMP提取條件的優(yōu)化。
經(jīng)計(jì)算,所得模型中的F值
為13.47,這意味著該模型是顯著的。相對(duì)于純粹的誤差,失擬值0.23并不顯著。檢測(cè)方程回歸系數(shù)的顯著性結(jié)果表明,多糖產(chǎn)量受線性項(xiàng)X1、X2、X3、X2X3、X22、X32影響顯著。P值是顯著的,因?yàn)樗鼈兊陀陬A(yù)期的 R2(0.799 6)與調(diào)整R2(0.875 2)合理,所以該模型可用。
通過(guò)使用Design Expert軟件繪制響應(yīng)曲面來(lái)研究2個(gè)參數(shù)之間的相互作用并確定最大DMP產(chǎn)量的最佳條件。3D響應(yīng)面和2D輪廓圖如圖4和圖5所示。每幅圖顯示了2個(gè)變量對(duì)DMP產(chǎn)量的影響,而另一個(gè)固定在0水平。輪廓圖的不同形狀表示變量之間的不同相互作用。
響應(yīng)曲面曲線(圖4~5)反映了變量與DMP多糖產(chǎn)量之間的定量關(guān)系。隨著料液比、提取時(shí)間和提取溫度的升高,
多糖產(chǎn)量逐漸增加。當(dāng)料液比增加時(shí),可以將多糖產(chǎn)量從120 mg/g提高至183 mg/g。隨著料液比增加,較高的溫度也可以增加多糖的產(chǎn)量。但料液比超過(guò)1∶50或提取時(shí)間超過(guò)3 h或提取溫度超過(guò)80 ℃時(shí),多糖產(chǎn)量將下降,并分別在響應(yīng)面上得到峰值。在一定范圍內(nèi),較長(zhǎng)的提取時(shí)間和較高的溫度將顯著提高多糖產(chǎn)量。
2.2.2 驗(yàn)證預(yù)測(cè)模型。
從回歸方程得到DMP最大產(chǎn)量的最佳提取條件為料液比1∶53、提取時(shí)間3 h、提取溫度83 ℃。在最佳提取條件下,試驗(yàn)DMP產(chǎn)量為185 mg/g,與預(yù)測(cè)值相符,表明響應(yīng)模型可用于優(yōu)化DMP提取過(guò)程。因此,可以確定DMP多糖的最佳提取條件是料液比1∶53、提取時(shí)間3 h、提取溫度83 ℃,多糖產(chǎn)量可以達(dá)185 mg/g。
2.3 多糖的抗氧化活性
2.3.1 DPPH自由基清除活性。
DPPH是具有質(zhì)子自由基的重要化合物,一旦接觸質(zhì)子自由基清除劑會(huì)使其含量極大減少。目前,許多研究表明,從植物中分離出的多糖能夠清除自由基,因此可以歸類為天然抗氧化劑[14-16]。從圖6可看出,0.5、1.0、2.0、4.0 和 8.0 mg/mL的DMP對(duì)DPPH自由基清除能力分別為2.35%、8.79%、18.99%、33.28%和49.29%。在相同濃度0.5、1.0、2.0、4.0和8.0 mg/mL下,VC的清除活性分別為88.00%、91.52%、91.99%、92.60%和92.40%,可見(jiàn)當(dāng)VC濃度增加到8.0 mg/mL其清除率有所降低。細(xì)莖石斛多糖溶液以劑量依賴的方式對(duì)DPPH自由基產(chǎn)生清除作用,但在相同濃度下其作用稍低于VC。因此,DPPH清除率隨著DMP濃度的增加而增加,進(jìn)一步揭示DMP可以提供氫原子并對(duì)DPPH自由基發(fā)揮強(qiáng)有力的清除活性。
2.3.2 超氧自由基清除活性。
超氧化物自由基是具有高毒性的活性氧物質(zhì),可以轉(zhuǎn)化為有害的物質(zhì),如過(guò)氧化氫、羥基自由基和破壞性生物分子,導(dǎo)致慢性疾病。過(guò)氧化物陰離子自由基由酶系統(tǒng)產(chǎn)生,如過(guò)氧化物酶、NADPH氧化酶和黃嘌呤氧化酶[17-18]。盡管超氧陰離子在大多數(shù)生物體中是由線粒體電子系統(tǒng)產(chǎn)生的自由基。它可以很容易地與其他分子反應(yīng)并形成更強(qiáng)的活性氧和次生自由基,如羥基自由基、過(guò)氧化氫和單線態(tài)氧,然后可能導(dǎo)致各種疾病如炎癥、癌癥和神經(jīng)變性。因此,超氧陰離子自由基的清除對(duì)抗氧化非常重要。最近研究證實(shí),特定的天然多糖表現(xiàn)出顯著的清除超氧陰離子自由基的活性[19]。
從圖7可看出,DMP以劑量依賴性方式對(duì)超氧陰離子自由基發(fā)揮明顯的清除活性,特別是當(dāng)DMP的濃度為4.0和8.0 mg/mL時(shí),其清除率分別為41.21%和65.60%。而較低濃度(0.5~2.0 mg/mL)的DMP溶液顯示出較低的清除活性。表明DMP可清除超氧化物陰離子自由基,特別是在高濃度時(shí)。
2.3.3 ABTS自由基清除試驗(yàn)。
ABTS分析經(jīng)常用于評(píng)估單種化合物和各種植物的復(fù)雜混合物的總抗氧化能力[20-22]。為了研究DMP的抗氧化能力,對(duì)ABTS自由基清除活性進(jìn)行測(cè)定。ABTS可以被氧化劑氧化產(chǎn)生亞穩(wěn)態(tài)自由基陽(yáng)離子的過(guò)氧化物酶底物,作為反映提取多糖的抗氧化活性的指標(biāo)[23]。在該測(cè)定中,在過(guò)硫酸鉀存在下的ABTS被轉(zhuǎn)化為自由基陽(yáng)離子(在734 nm處具有吸光度)。當(dāng)與抗氧化劑反應(yīng)時(shí),藍(lán)色ABTS自由基陽(yáng)離子變?yōu)闊o(wú)色。因此,抗氧化能力越高,在734 nm處吸光度越小[22]。
從圖8可看出,DMP多糖樣品對(duì)ABTS自由基的清除活性隨著濃度的升高而增加。不同濃度的DMP多糖(0.5、1.0、2.0、4.0和8.0 mg/mL)和VC的清除能力分別為5.05%、23.77%、48.73%、73.35%、95.62%和99.16%、98.99%、99.16%、99.32%、100.00%。當(dāng)濃度為8.0 mg/mL時(shí),DMP多糖表現(xiàn)出與VC幾乎相同的清除活性,僅比VC低4.38%。表明DMP對(duì)ABTS自由基具有很強(qiáng)的清除能力,可以作為潛在的抗氧化劑進(jìn)行探索。
2.3.4 羥基自由基清除活性。
羥基自由基(·OH)被認(rèn)為是一種強(qiáng)大的氧化劑,可嚴(yán)重?fù)p害生物分子[24]?!H是最具反應(yīng)活性和有害的活性氧物質(zhì)之一,可以輕易地攻擊脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和DNA,導(dǎo)致細(xì)胞死亡和組織損傷。因此,去除羥基對(duì)保護(hù)生命系統(tǒng)非常重要[25]。
從圖9可看出,DMP樣品對(duì)·OH的清除效果呈劑量依賴性,0.5、1.0、2.0、4.0和8.0 mg/mL的DMP樣品對(duì)·OH的清除率分別達(dá)到45.35%、56.46%、70.16%、77.18%和80.29%;DMP對(duì)·OH的清除作用非常接近VC。表明在以VC為陽(yáng)性對(duì)照下,DMP多糖可以劑量依賴性方式清除·OH,進(jìn)一步驗(yàn)證DMP多糖可作為潛在抗氧化劑。
3 結(jié)論
綜合以上研究結(jié)果,可得到DMP最佳的提取條件為料液比1∶53、提取時(shí)間3 h、提取溫度83 ℃,在這種提取條件下,DMP的最大產(chǎn)量可達(dá)到185 mg/g。而且,DMP表現(xiàn)出顯著的抗氧化活性。因此,DMP可作為功能性食品中的天然抗氧化劑。
參考文獻(xiàn)
[1] LUKOVA P,KARCHEVABAHCHEVANSKA D,NIKOLOVA M,et al. Comparison of structure and antioxidant activity of polysaccharides extracted from the leaves of Plantago major L., P. media L. and P. lanceolata L.[J]. Bulgarian chemical communications,2017,49(4):282-288.
[2] WANG M C,ZHU P L,ZHAO S W,et al.Characterization, antioxidant activity and immunomodulatory activity of polysaccharides from the swollen culms of Zizania latifolia[J].International journal of biological macromolecules,2017, 95:809-817.
[3] XU Z,WANG H D,WANG B L,et al.Characterization and antioxidant activities of polysaccharides from the leaves of Lilium lancifolium Thunb.[J].International journal of biological macromolecules,2016,92:148-155.
[4] LEE Y H,PARK J D,BAEK N I,et al. In vitro and in vivo antitumoral phenanthrenes from the aerial parts of Dendrobium nobile[J].Planta medica, 1995,61(2):178-180.
[5]LIN T H,CHANG S J,CHEN C C,et al.Two phenanthraquinones from Dendrobium moniliforme[J].Journal of natural products,2001,64(8):1084-1086.
[6] HSU J L,LEE Y J,LEU W J,et al.Moniliformediquinone induces in vitro and in vivo antitumor activity through glutathione involved DNA damage response and mitochondrial stress in human hormone refractory prostate cancer[J].The journal of urology,2014,191(5):1429-1438.
[7] JIANG P,YUAN L,CAI D L,et al.Characterization and antioxidant activities of the polysaccharides from mycelium of Phellinus pini and culture medium[J]. Carbohydrate polymers,2015,117:600-604.
[8] SEVAG M G,LACKMAN D B,SMOLENS J.The isolation of the components of streptoeoeeal nueleoproteins in serologieally active form[J]. Journal of biological chemistry,1938,124(1):42-49.
[9] GAO J,ZHANG T,JIN Z Y,et al.Structural characterisation, physicochemical properties and antioxidant activity of polysaccharide from Lilium lancifolium Thunb.[J].Food chemistry,2015,169:430-438.
[10] HE Y,YE M,JING L Y,et al.Preparation, characterization and bioactivities of derivatives of an exopolysaccharide from Lachnum[J].Carbohydrate polymers, 2015,117:788-796.
[11] SAMAVATI V,MANOOCHEHRIZADE A.Polysaccharide extraction from Malva sylvestris and its antioxidant activity[J].International journal of biological macromolecules,2013,60(6):427-436.
[12] YING Z,HAN X X,LI J R.Ultrasoundassisted extraction of polysaccharides from mulberry leaves[J].Food chemistry,2011,127(3):1273-1279.
[13] SAMAVATI V,YARMAND M S.Statistical modeling of process parameters for the recovery of polysaccharide from Morus alba leaf[J].Carbohydrate polymers,2013,98(1):793-806.
[14] AMAROWICZ R,PEGG R B,RAHIMIMOGHADDAM P,et al. Free-radical scavenging capacity and antioxidant activity of selected plant species from the Canadian prairies[J].Food chemistry,2004,84(4):551-562.
[15] MISHRA K,OJHA H,CHAUDHURY N K.Estimation of antiradical properties of antioxidants using DPPH assay:A critical review and results[J]. Food chemistry,2012,130(4):1036-1043.
[16] XU W T,ZHANG F F,LUO Y B,et al.Antioxidant activity of a watersoluble polysaccharide purified from Pteridium aquilinum[J].Carbohydrate research, 2009,344(2):217-222.
[17] YUAN H M,ZHANG W W,LI X G,et al.Preparation and in vitro antioxidant activity of κcarrageenan oligosaccharides and their oversulfated, acetylated, and phosphorylated derivatives[J].Carbohydrate research,2005,340(4):685-692.
[18] CHEN J J,ZHANG T,JIANG B,et al.Characterization and antioxidant activity of Ginkgo biloba exocarp polysaccharides[J].Carbohydrate polymers,2012, 87(1):40-45.
[19] WOOTTONBEARD P C,RYAN L.Improving public health?:The role of antioxidantrich fruit and vegetable beverages[J].Food research international, 2011,44(10):3135-3148.
[20] LUO A X,HE X J,ZHOU S D,et al.Purification, composition analysis and antioxidant activity of the polysaccharides from Dendrobium nobile Lindl.[J]. Carbohydrate polymers,2010,79(4):1014-1019.
[21] HUANG S S,HUANG G J,HO Y L,et al.Antioxidant and antiproliferative activities of the four Hydrocotyle species from Taiwan[J].Botanical studies, 2008,49(4):311-322.
[22] KATALINIC V,MILOS M,KULISIC T,et al.Screening of 70 medicinal plant extracts for antioxidant capacity and total phenols[J].Food chemistry,2006, 94(4):550-557.
[23] HAN J,WENG X C,BI K S.Antioxidants from a Chinese medicinal herb-Lithospermum erythrorhizon[J].Food chemistry,2008,106(1):2-10.
[24] YUAN J F,ZHANG Z Q,F(xiàn)AN Z C,et al.Antioxidant effects and cytotoxicity of three purified polysaccharides from Ligusticum chuanxiong Hort.[J].Natural product research &development,2012,74(4):822-827.
[25] CHEN S X,SCHOPFER P.Hydroxylradical production in physiological reactions[J].FEBS Journal,1999,260(3):726-735.