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      殼聚糖協(xié)同次氯酸鹽對北碚447錦橙貯藏品質(zhì)的影響

      2018-05-25 00:49:42秘,張玉,2,*,趙
      食品科學(xué) 2018年9期
      關(guān)鍵詞:總酸總糖涂膜

      劉 秘,張 玉,2,*,趙 欣

      北碚447錦橙,又名北碚無核錦橙,具有早熟、無核、果大、皮薄、質(zhì)優(yōu)、豐產(chǎn)、穩(wěn)產(chǎn)等綜合優(yōu)良性狀[1]。但果實(shí)采摘后,隨著貯藏時(shí)間的延長,由于自身呼吸作用、生理代謝等進(jìn)行,果實(shí)的營養(yǎng)流失且品質(zhì)下降;因此果實(shí)的保鮮顯得極為重要。北碚447錦橙的傳統(tǒng)保鮮方法是采用化學(xué)保鮮劑浸泡果實(shí),雖然效果明顯,但近來年化學(xué)保鮮對人體健康和環(huán)境的影響問題日益突出,若不進(jìn)行果實(shí)保鮮處理又會導(dǎo)致果實(shí)貯藏期短,集中銷售的果實(shí)價(jià)格低廉,會導(dǎo)致果實(shí)滯銷和農(nóng)民經(jīng)濟(jì)利益受損。因此,天然保鮮劑的研發(fā)對新鮮果實(shí)貯藏和銷售意義重大[2-4]。尋找有可抑制果實(shí)腐敗變質(zhì)、保持果品品質(zhì)的天然無毒、環(huán)保無污染的保鮮劑成為研究者的目標(biāo)。

      殼聚糖是由自然界廣泛存在的幾丁質(zhì)經(jīng)過脫乙酰作用得到的,其化學(xué)結(jié)構(gòu)為帶陽離子的高分子堿性多糖聚合物[5-7]。丘苑新等[8]進(jìn)行了殼聚糖涂膜對紫金春甜桔保鮮效果的實(shí)驗(yàn),結(jié)果表明室溫貯存54 d內(nèi),適宜濃度的殼聚糖涂膜處理可有效減緩果實(shí)中水分的散失,促進(jìn)春甜桔總糖的積累,減緩果實(shí)中可滴定酸和VC的降解;于軍香[9]利用不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的殼聚糖涂膜處理沂州木瓜,測定在貯藏期間果實(shí)的品質(zhì)指標(biāo),發(fā)現(xiàn)殼聚糖涂膜處理能延緩果實(shí)硬度、總糖含量、VC含量、質(zhì)量損失率和感官品質(zhì)的降低,降低果實(shí)的腐爛率,質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.5%殼聚糖涂膜處理保鮮效果最好,可有效地延長沂州木瓜的保鮮期。但單獨(dú)使用殼聚糖涂膜進(jìn)行涂膜保鮮有一定的局限性和不足,有新的研究表明殼聚糖與其他物質(zhì)復(fù)合涂膜保鮮效果更好。吳雪瑩等[6]通過實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.5%殼聚糖、0.08%納米SiOx都能抑制臍橙果實(shí)貯藏期間硬度的降低,兩者復(fù)合處理的抑制效果更佳。次氯酸鹽用于果蔬保鮮近年來有部分研究,但由于其溶于水后涂膜成膜性差,必須與熱處理、過氧乙酸、草酸、低溫處理等結(jié)合才具有良好的保鮮效果[10-11]。殼聚糖協(xié)同次氯酸鹽涂膜處理可以避免單獨(dú)使用次氯酸鹽成膜性差的弊端,并且兩者的結(jié)合使用對北碚447錦橙貯藏過程中的果實(shí)品質(zhì)的影響還鮮有報(bào)道。因此,本研究以北碚447錦橙為實(shí)驗(yàn)材料,采用殼聚糖、殼聚糖協(xié)同次氯酸鹽處理北碚447錦橙果實(shí),通過測定貯藏期間果實(shí)中可溶性固形物、總糖、總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)和VC、總黃酮、總酚含量等與貯藏品質(zhì)相關(guān)的指標(biāo),探究殼聚糖與次氯酸鹽協(xié)同處理對北碚447錦橙果實(shí)貯藏品質(zhì)的影響,為北碚447錦橙貯藏期間品質(zhì)的保持以及新型天然保鮮劑的應(yīng)用提供一定的理論基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      北碚447錦橙,當(dāng)日采摘200 個(gè)外觀整齊、大小適中、無病蟲害和機(jī)械損傷的成熟度在9 成左右的果實(shí)。

      殼聚糖(1 600 Da) 山東濟(jì)南海得貝海洋生物工程公司;次氯酸鈣(分析純) 成都市科龍化工試劑廠;蒽酮(分析純) 上海科豐實(shí)業(yè)有限公司;福林-酚試劑 上海如吉生物科技發(fā)展有限公司。其他試劑為實(shí)驗(yàn)室常用試劑。

      1.2 儀器與設(shè)備

      722可見分光光度計(jì) 上海菁華科技儀器有限公司;HH-8數(shù)顯恒溫水浴鍋 國華電器有限公司;MP4001電子天平 上海恒平科學(xué)儀器有限公司。

      1.3 方法

      1.3.1 果實(shí)的前處理與分組

      當(dāng)日采摘的果實(shí)用清水清洗干凈,自然晾干后用0.02 g/mL次氯酸鈉溶液浸泡1 min,取出再用清水清洗干凈,自然晾干。

      將樣品分為A、B、C、D 4 組進(jìn)行涂膜處理,A組:0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2;B組:0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO;C組:0.01 g/mL殼聚糖;D組:空白組(蒸餾水)。0.01 g/mL殼聚糖水溶液中添加體積分?jǐn)?shù)0.5%乙酸溶液。

      4 組果實(shí)分別浸泡于對應(yīng)的膜液中2 min,取出自然晾干,使用厚0.02 mm聚乙烯塑料袋套袋,貯藏在25 ℃溫度下,每5 d為一個(gè)周期,每個(gè)周期各組取8 個(gè)果實(shí)進(jìn)行各項(xiàng)指標(biāo)的測定。

      1.3.2 指標(biāo)的測定

      1.3.2.1 可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測定

      每次取果肉2.0 g,用阿貝折光儀測定可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)[12]。

      1.3.2.2 總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測定

      采用蒽酮比色法[12],并作適當(dāng)改動(dòng)。稱取5.0 g研磨搗碎的樣品,置于三角瓶中,加蒸餾水20 mL,加蓋在沸水浴中保持15 min;冷卻后用漏斗過濾到100 mL容量瓶中,并用蒸餾水將三角瓶沖洗至少3 次,然后在容量瓶中加入2.5 mL 0.1 g/mL的醋酸鉛溶液,混勻,以沉淀樣品中的蛋白質(zhì)。待反應(yīng)完全后,加入0.5 g草酸鉀結(jié)晶,以除去過量的醋酸鉛,并定容混勻,過濾,取上清液1 mL,加入100 mL容量瓶中定容,取定容后的樣液1 mL,加4 mL蒽酮試劑(冰?。?,取出至常溫,再放入沸水浴10 min后取出至常溫,在620 nm波長處測定吸光度,并以公式(1)計(jì)算總糖含量。標(biāo)準(zhǔn)曲線的方程A=1.298ρ-0.004 4,R2=0.990 4。

      式中:ρ為根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程及測定的吸光度計(jì)算所得葡萄糖質(zhì)量濃度/(mg/mL);V為取樣體積/mL;m為樣品質(zhì)量/g;N為稀釋倍數(shù)。

      1.3.2.3 總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測定

      總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)采用直接滴定法測定[11]。按公式(2)計(jì)算總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

      式中:c為氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的濃度,值為0.1 moL/L;V為滴定試液時(shí)消耗氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)溶液的體積/mL;m為試樣的取樣質(zhì)量/g;K為酸的換算系數(shù),值為0.070。

      1.3.2.4 固酸比的測定

      固酸比通過計(jì)算可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)與總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)的比值得出。

      1.3.2.5 VC含量的測定

      VC的提取[12]:取樣品10.0 g,加入10 mL草酸EDTA溶液浸提劑,用研缽研磨成勻漿。過濾取得濾液,用浸提劑將樣液移入100 mL容量瓶中,并定容至100 mL。

      VC含量的測定[13]:準(zhǔn)確吸取樣品液10 mL至50 mL錐形瓶中,用標(biāo)定后的2,6-二氯酚靛酚溶液滴定,同時(shí)做空白實(shí)驗(yàn)。VC含量按公式(3)計(jì)算。

      式中:V為滴定樣液時(shí)消耗的2,6-二氯酚靛酚溶液體積/mL;V0為滴定空白液時(shí)消耗的2,6-二氯酚靛酚溶液體積/mL;T為滴定度/(mg/mL);N為稀釋倍數(shù);m為樣品質(zhì)量/g。

      1.3.2.6 總黃酮含量的測定

      總黃酮含量的測定參照文獻(xiàn)[14-16]。將果實(shí)去皮,取果肉用組織搗碎機(jī)搗碎后,用細(xì)紗布過濾,取過濾后樣品20 g,無水乙醇定容至100 mL作為樣品溶液。取10 mL刻度試管,向其中加入4 mL樣品液(空白加無水乙醇),再向試管中加0.05 g/mL的亞硝酸鈉溶液0.4 mL,搖勻,放置6 min;后再向刻度試管中加入1 g/mL硝酸鋁溶液0.4 mL,搖勻,放置6 min;最后加入1 mol/L的氫氧化鈉溶液4.5 mL,加水至刻度,搖勻,放置15 min,在506 nm波長處測定吸光度,根據(jù)式(4)計(jì)算總黃酮含量。總黃酮標(biāo)準(zhǔn)曲線:A=8.721 4ρ+0.014 4,R2=0.998。

      式中:V為樣品體積/mL;ρ為樣品溶液中總黃酮的質(zhì)量濃度/(μg/mL);N為稀釋倍數(shù);m取樣的質(zhì)量/g。

      1.3.2.7 總酚含量的測定

      總酚含量的測定采用福林-酚試劑法[17-18],并作相應(yīng)改動(dòng)。取2 mL待測液于10 mL離心管中,再加入2 mL福林-酚試劑,搖勻,5 min后加入2 mL 0.2 g/mL Na2CO3振蕩。靜置30 min后在760 nm波長處測定吸光度,以2 mL蒸餾水代替待測液作為空白。根據(jù)式(5)計(jì)算總酚含量。沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線為:A=0.015 7ρ+0.064 1,R2=0.997 3。

      式中:ρ為根據(jù)吸光度和標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算的總酚質(zhì)量濃度/(mg/L),V為樣品待測液體積/mL;N為樣品稀釋倍數(shù);m為取樣質(zhì)量/g。

      1.4 數(shù)據(jù)分析

      每個(gè)周期取樣8 個(gè)果實(shí),6 個(gè)實(shí)驗(yàn)周期,供試果實(shí)200 個(gè),實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)重復(fù)3 次;應(yīng)用Excel 2010 統(tǒng)計(jì)分析所有數(shù)據(jù),計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)差并繪圖;應(yīng)用SPSS 19.0軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析(P<0.05表示顯著差異,P<0.01表示極顯著差異)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 不同處理對果實(shí)貯藏期間可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響

      圖1 不同處理對可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Fig. 1 Effects of different treatments on soluble solid content

      如圖1所示,可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)隨貯藏時(shí)間延長呈先上升再下降的趨勢,其原因?yàn)榭扇苄怨绦挝镌谫A藏期間先到達(dá)一個(gè)峰值,然后由于呼吸作用消耗導(dǎo)致可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)逐漸降低。在整個(gè)貯藏過程中,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組的可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)均高于其他各組。在第15~20天,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2與0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)顯著高于0.01 g/mL殼聚糖組和空白組(P<0.05)。第15天時(shí),0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組、0.01 g/mL殼聚糖組、空白組分別為(11.2±0.1)%、(11.0±0.1)%、(10.3±0.2)%、(10.1±0.1)%;第20天時(shí)分別為(11.5±0.2)%、(11.0±0.1)%、(10.7±0.1)%、(10.2±0.1)%。第25天,各實(shí)驗(yàn)組的可溶性固形物的質(zhì)量分?jǐn)?shù)達(dá)到最高值,其中0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高,為(12.3±0.2)%。第25~30天,各實(shí)驗(yàn)組的可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)有小幅度下降。在整個(gè)貯藏期間,3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組的可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)高于或顯著高于空白組,說明實(shí)驗(yàn)組較空白組相比能有效延緩可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的下降,其中0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2作用效果最優(yōu)。

      2.2 不同處理對果實(shí)貯藏期間總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響

      圖2 不同處理對總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Fig. 2 Effects of different treatments on total sugar content

      如圖2所示,總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)隨貯藏時(shí)間延長發(fā)生改變,總體呈先下降再上升再下降的趨勢。在貯藏初期由于果實(shí)的呼吸作用消耗導(dǎo)致總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)有所降低;隨著貯藏時(shí)間的延長,多糖類物質(zhì)和大分子物質(zhì)的部分分解引起總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)有所上升[19]。該實(shí)驗(yàn)結(jié)果與丘苑新等[8]的研究結(jié)果一致。在第15天,各實(shí)驗(yàn)組的總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)達(dá)到貯藏期間最小值,質(zhì)量分?jǐn)?shù)從大到小分別為0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組(7.8±0.2)%、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組(6.6±0.1)%、0.01 g/mL殼聚糖組(6.2±0.1)%、空白組(6.0±0.1)%,其中0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組的總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)顯著高于其他3 個(gè)組(P<0.05)。在第25~30天,各處理組總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)均有下降,在第30天,各實(shí)驗(yàn)組總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組(7.8±0.1)%、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組(7.2±0.1)%、0.01 g/mL殼聚糖組(7.3±0.1)%、空白組(7.1±0.1)%,其中0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組的總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)顯著高于其他3 個(gè)組(P<0.05)。因此在整個(gè)貯藏期間,3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組與空白組相比能很好地減緩總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的下降,其中0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2處理對總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)保持效果最優(yōu)。

      2.3 不同處理對果實(shí)貯藏期間總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響

      果實(shí)總酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)影響著果實(shí)的風(fēng)味,果實(shí)本身的呼吸作用會使有機(jī)物質(zhì)被消耗分解導(dǎo)致總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)隨著貯藏時(shí)間的延長而下降[19]。如圖3所示,總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)隨貯藏時(shí)間的延長總體呈先上升后下降趨勢,其中3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組較空白組總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)下降緩慢,表明實(shí)驗(yàn)組較空白組能夠更好地保持果實(shí)風(fēng)味。在第10~15天,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2與0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別顯著高于空白組(P<0.05),在第10天,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組(1.14±0.02)%、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組(1.04±0.01)%、0.01 g/mL殼聚糖組(1.13±0.01)%、空白組(0.99±0.02)%;第15天,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組(1.10±0.01)%、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組(1.12±0.02)%、0.01 g/mL殼聚糖組(1.03±0.01)%、空白組(0.96±0.02)%。在貯藏過程中,各實(shí)驗(yàn)組總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)基本高于空白組,說明各組處理方式均能夠有效抑制有機(jī)酸的分解,其中0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2的抑制效果最優(yōu),但與其他實(shí)驗(yàn)組相比差異不顯著(P>0.05)。

      圖3 不同處理對總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Fig. 3 Effects of different treatments on total acid content

      2.4 不同處理對果實(shí)貯藏期間固酸比的影響

      圖4 不同處理對固酸比的影響Fig. 4 Effects of different treatments on solid/acid ratio

      如圖4所示,果實(shí)的固酸比總體呈下降-上升-下降的趨勢。固酸比與可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)成正相關(guān),與總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)成負(fù)相關(guān)[20]。前述研究中可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)隨貯藏時(shí)間延長呈先上升再下降(圖1);總酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)隨貯藏時(shí)間的延長總體呈先下降后上升的趨勢(圖3);所以固酸比應(yīng)該呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢,這與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果基本一致。在第25天,各實(shí)驗(yàn)組固酸比達(dá)到最大值,分別為0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組12.3±0.1、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組12.2±0.4、0.01 g/mL殼聚糖組12.2±0.1、空白組12.0±0.1,各實(shí)驗(yàn)組固酸比差異不顯著(P>0.05)。

      2.5 不同處理對果實(shí)貯藏期間VC含量的影響

      圖5 不同處理對VC含量的影響Fig. 5 Effects of different treatments on VC content

      VC是一種不穩(wěn)定的維生素,隨著果實(shí)貯藏時(shí)間的延長,逐漸被水分和抗壞血酸酶氧化分解而減少[12];因此,VC含量的保持對果實(shí)營養(yǎng)價(jià)值的保持有著重要意義。如圖5所示,果實(shí)的VC含量隨著貯藏時(shí)間的延長呈下降趨勢。在第5天,3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組果實(shí)的VC含量顯著高于空白組((1.00±0.01)mg/g)(P<0.05),分別為0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/LCa(ClO)2組(1.09±0.02) mg/g、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組(1.10±0.01)mg/g、0.01 g/mL殼聚糖組(1.11±0.01)mg/g,3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組之間無顯著差異(P>0.05)。在第25~30天,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組VC含量顯著高于其他各組(P<0.05),第25天為(0.97±0.01)mg/g,第30天為(0.95±0.01)mg/g。即0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO和1%殼聚糖均能有效抑制貯藏期間果實(shí)VC的氧化,減少果實(shí)營養(yǎng)的流失,減緩果實(shí)品質(zhì)的下降,其中0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2處理效果最優(yōu)。

      2.6 不同處理對果實(shí)貯藏期間總黃酮含量的影響

      圖6 不同處理對總黃酮含量的影響Fig. 6 Effects of different treatments on total flavonoid content

      總黃酮在果實(shí)中含量較低,但其有很好的抗氧化作用[21]。如圖6所示,在第10天,3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組的總黃酮含量明顯高于空白組((28.4±0.2)μg/g )(P<0.05),分別為0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組(35.4±0.2)μg/g、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組(33.1±0.1)μg/g、0.01 g/mL殼聚糖組(36.2±0.2)μg/g;第15天,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組的果實(shí)總黃酮含量顯著高于另外3組(P<0.05),為(45.6±0.1)μg/g。說明0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2處理有助于果實(shí)在貯藏中期總黃酮的積累。在整個(gè)貯藏期間,果實(shí)總黃酮含量呈下降-上升-下降趨勢,且在第25~30天,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組總黃酮含量顯著高于另外3 組(P<0.05)。說明了0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2處理能很好地保持貯藏期間果實(shí)總黃酮含量,增強(qiáng)果實(shí)的抗氧化能力,延緩果實(shí)營養(yǎng)品質(zhì)的下降。

      2.7 不同處理對果實(shí)貯藏期間總酚含量的影響

      圖7 不同處理對總酚含量的影響Fig. 7 Effects of different treatments on total phenolic content

      酚類物質(zhì)可以抗菌、抗氧化[22]。由圖7可知,在貯藏期間,3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組的果實(shí)總酚含量均高于空白組;在第30天,3 個(gè)實(shí)驗(yàn)組果實(shí)總酚含量顯著高于空白組果實(shí)((11.6±0.1)μg/g)(P<0.05),分別為0.01 g/mL殼聚糖組(15.2±0.1)μg/g、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO組(14.1±0.3)μg/g、0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2組(14.1±0.2)μg/g。說明了0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2處理效果顯著優(yōu)于0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO和0.01 g/mL殼聚糖(P<0.05)。

      3 討 論

      研究結(jié)果表明,殼聚糖協(xié)同次氯酸鹽有效地維持了北碚447錦橙貯藏期間果實(shí)可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)、固酸比,抑制了貯藏期間北碚447錦橙果實(shí)營養(yǎng)品質(zhì)的下降,這與胡佳羽[11]的研究結(jié)果一致。主要原因是殼聚糖協(xié)同次氯酸鹽能有效抑制果實(shí)的呼吸作用,減少了VC和有機(jī)酸的氧化分解,以延緩其營養(yǎng)品質(zhì)的下降[1,3,5]。此外,殼聚糖協(xié)同次氯酸鹽還有效抑制了貯藏期間北碚447錦橙果實(shí)中總酚含量上升,因此增強(qiáng)了果實(shí)抗氧化抗病能力。一方面原因是殼聚糖協(xié)同次氯酸鹽有效抑制了果實(shí)的呼吸作用,減慢了果實(shí)的生理代謝,抑制了總酚與總黃酮的氧化分解[23-24];另外一方面原因是鈣離子具有控制細(xì)胞代謝、保持水果硬度、抑制水果后熟、減輕水果生理病害的作用[25-30];殼聚糖誘導(dǎo)的抗病性也是貯藏期間總酚和總黃酮含量的變化的原因之一[5]。綜上所述,本研究的結(jié)果表明,0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L Ca(ClO)2處理對北碚447果實(shí)的保鮮效果優(yōu)于0.01 g/mL殼聚糖+200 mg/L NaClO。

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