薛朝軍,李 倩,支旭然,李 穎,李 宵,董占軍,
(1. 河北醫(yī)科大學(xué)研究生學(xué)院,河北 石家莊 050017;2. 河北省人民醫(yī)院藥學(xué)部,河北 石家莊 050051)
甲氨蝶呤(methotrexate,MTX)是一種葉酸拮抗劑,通過抑制二氫葉酸還原酶,阻止癌細胞分裂,用于治療急性白血病[1]、乳腺癌、絨毛上皮癌等癌癥。低劑量甲氨蝶呤用于治療類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、銀屑病、硬皮病等自身免疫性疾病[2]。由于缺乏特異的毒性生物標(biāo)志物,甲氨蝶呤副作用的發(fā)生往往是不可預(yù)知的,應(yīng)根據(jù)患者疾病的需求選擇適當(dāng)劑量的氨甲喋呤并監(jiān)測血藥濃度。
左乙拉西坦(levetiracetam,LEV)在臨床上主要用于治療各種癲癇,其機制可能是通過選擇性地抑制癲癇樣放電,以及與突觸囊泡白蛋白2A結(jié)合,對突觸前突觸囊泡釋放神經(jīng)遞質(zhì)產(chǎn)生影響[3],具體機制目前尚不清楚。左乙拉西坦臨床用于4歲以上兒童癲癇患者部分性發(fā)作的加用治療。左乙拉西坦副作用較小,目前臨床上進行了左乙拉西坦治療自閉癥[4]、頭痛[5]等疾病研究。加拿大衛(wèi)生部提示,左乙拉西坦和甲氨蝶呤相互作用具有潛在風(fēng)險。這兩種藥物合用可能會導(dǎo)致血液中甲氨蝶呤濃度升高,引起可能是致死性(包括突發(fā)急性腎衰竭)的嚴重副作用。文獻報道,甲氨蝶呤和左乙拉西坦都是p-gp的底物[6-7]。由于在甲氨蝶呤和左乙拉西坦在臨床上存在合用的可能性,而這兩藥合用后可能會發(fā)生相互作用,因此開展此研究,以期為臨床合理用藥提供依據(jù)。
1.1藥品與試劑甲氨蝶呤(索萊寶公司,純度:99%);左乙拉西坦(J&K Scientific Ltd,純度:99%);氨基蝶呤(上海源葉生物有限公司,純度:99%);甲醇、乙腈、三蒸水等。
1.2儀器Shimadzu LC-30AD型超高效液相色譜系統(tǒng)(日本島津公司);AB Sciex Triple Quad 5500型三重四級桿串聯(lián)質(zhì)譜儀(美國AB公司);Hettich Zentrifuge 1602型高速低溫離心機(德國Hettich公司);KQ3200E 型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);AB204-S型標(biāo)準型的分析天平(瑞士METTLER TOLEDO公司) ;XW-80A型旋渦混合器(上海精科實業(yè)有限公司);Milli-Q純水儀(默克化工技術(shù)有限公司)等。
1.3實驗動物健康♂ SD大鼠,體質(zhì)量(250±20) g,由河北醫(yī)科大學(xué)中實驗動物中心提供,生產(chǎn)合格證號:1707095,使用許可證號:SCXK(冀)2013-10003。
2.1色譜條件色譜柱:Waters ACQUITY?UPLC HSS T3(100 mm×2.1 mm,1.8 μm);柱溫:40℃;自動進樣器:4℃;流動相:乙腈(B)、含0.1%甲酸水(A),梯度洗脫(0 min,5% B; 3.5 min,95% B;4 min,95% B;4.2 min,5% B;4.5 min,stop);時間:4.5 min;流速:0.2 mL·min-1;進樣量:2 μL。
2.2質(zhì)譜條件離子化源:電噴霧離子源(ESI),正離檢測;氣簾氣壓力為30 kPa;碰撞氣壓力是8 kPa;噴霧電壓是5 500 V;去溶劑溫度為600℃;霧化氣壓力為60 kPa;輔助氣壓力是60 kPa;入口電壓是10 V;碰撞室出口電壓為14 V。MTX、LEV和氨基蝶呤(內(nèi)標(biāo))的質(zhì)譜參數(shù)見Tab 1。
Tab 1 Patameters of mass spectrometry
2.3溶液的配制
2.3.1儲備液和工作液配制 分別精密稱取MTX、LEV適量,放到10 mL棕色的容量瓶中,用甲醇溶解定容,配制成MTX、LEV濃度分別是2.2 mmol·L-1和5.9 mmol·L-1的貯備液,于4℃冰箱儲存。用移液槍分別精密吸取MTX、LEV標(biāo)準品貯備液適量,用50%甲醇水溶液逐級稀釋,配制成MTX濃度為11、4.4、2.2、1.1、0.22、0.11、0.022、0.011 μmol·L-1的工作液和LEV濃度為58.8、29.4、11.8、5.88、2.94、0.588、0.294、0.0588 μmol·L-1工作液,備用。精密稱取氨基蝶呤(內(nèi)標(biāo))適量置于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解至刻度線均勻,配制成濃度為0.227 mmol·L-1的內(nèi)標(biāo)貯備液,置于4℃冰箱保存。精密吸取氨基蝶呤500 μL,置于50 mL的容量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,搖勻,配制成質(zhì)量濃度為2.27 μmol·L-1的內(nèi)標(biāo),4℃冷藏,備用。
2.3.2標(biāo)準曲線和質(zhì)控樣品配制 用移液槍量取5 μL上述配好的工作液,加入45 μL空白大鼠血漿配制MTX和LEV的血漿標(biāo)準曲線,使得終濃度分別為1.1、2.2、11、22、110、220、440、1 100 nmol·L-1;5.88、29.4、58.8、294、588、1 180、2 940、5 880 nmol·L-1。精密稱取MTX和LEV各10.0 mg,按照上述方法配制低、中、高3個質(zhì)控制(QC)樣品,MTX、LEV濃度分別為2.2、110、880 nmol·L-1;11.8、588、4 700 nmol·L-1。
2.4給藥方案、樣品采集與處理大鼠隨機分為3組:1 mg·kg-1MTX組、180 mg·kg-1LEV組、合用組,每組5只。在0、0.16、0.5、1、1.5、2、3、4、6、8、10、24、48 h眼底靜脈叢取血,離心取血漿用于檢測;將大鼠飼養(yǎng)于代謝籠,并按分組灌胃給藥,于8、24、48 h收集尿液用于檢測;按上述分組給藥后在1、2、4 h取大鼠肝、腎標(biāo)本進行HE染色。取血漿、稀釋尿液樣品50 μL,加入10 μL內(nèi)標(biāo)和150 μL甲醇沉淀劑,渦旋2 min,離心(12 000×g,10 min),取上清液100 μL用于UPLC/MS/MS的測定。血漿和尿液于-20℃冰箱保存待測。
2.5方法學(xué)驗證
2.5.1專屬性 按照“2.3”項下要求,用大鼠的空白血漿,配成1.1 nmol·L-1的MTX和5.88 nmol·L-1LEV血漿樣品,與空白血漿經(jīng)處理后一起分析,觀察空白血漿中的成分是否對待測物和內(nèi)標(biāo)存在干擾。
2.5.2線性、最低定量限 按照“2.3”項下要求配制標(biāo)準曲線,以待測物濃度(x)為橫坐標(biāo),待測物與內(nèi)標(biāo)的峰面積比值(y)為縱坐標(biāo),用加權(quán)(W=1/x2)最小二乘法進行回歸運算,并計算標(biāo)準曲線的線性回歸系數(shù)(r2>0.99)。最低定量(LLOQ)為標(biāo)曲的最低點。
2.5.3精密度、準確度 按照“2.3”項下要求配的3個QC濃度的樣品,每一濃度6個樣本,1 d內(nèi)同批次處理,連續(xù)檢測3 d并進行分析,根據(jù)當(dāng)日的標(biāo)準曲線計算QC樣品濃度,評價分析方法的準確度與精密度結(jié)果RSD和RE應(yīng)在± 15%之內(nèi)。
2.5.4提取回收率、基質(zhì)效應(yīng) 按照“2.3”項下要求配制3個QC濃度的血漿樣品,每個濃度6個樣本,并按照“2.4”項進行處理后進行分析。樣本為A。分別取5只大鼠的空白血漿50 mL,加入150 mL甲醇,渦漩1 min后離心(12 000 ×g,10 min),取上清液45 mL,加入5 mL工作液(相當(dāng)于甲氨蝶呤2.2、110、880 nmol·L-1;左乙拉西坦11.8、588、4 700 nmol·L-1),按照“2.4”項處理后,LC-MS/MS測定。樣本為B。按照“2.3”項下要求,配的3個QC濃度的工作液,每個濃度6個工作液,并直接進樣分析。樣本為C。計算公式:提取回收率=A/B;基質(zhì)效應(yīng)=B/C。
2.5.5穩(wěn)定性 穩(wěn)定性考察是指甲氨蝶呤和左乙拉西坦在血漿樣品室溫放置4 h、經(jīng)歷3次冷凍、解凍循環(huán)和4℃冷藏8 h的穩(wěn)定性。按照“2.3”項下要求,配制低、中、高濃度的QC血漿樣品,每個濃度在每個穩(wěn)定條件平行6個樣本進行分析。儲存的樣品與新配制樣品相比較來證明樣品穩(wěn)定性。用空白大鼠血漿稀釋工作液,每一個濃度平行6個樣本,考察稀釋穩(wěn)定。樣本濃度均在配制濃度的±15%范圍,則樣品穩(wěn)定。
2.5.6生物樣品的適用性 按照“2.3”項下要求,分別制備3個濃度的QC,每濃度平行6份的稀釋尿液樣品進行分析。樣品濃度的RSD在±15%以內(nèi),則該分析方法適用于稀釋尿液樣品。
3.1方法學(xué)
3.1.1專屬性 血漿樣品中,甲氨蝶呤、左乙拉西坦、氨基蝶呤保留時間分別為3.02 min、3.09 min和2.95 min,空白血漿中的內(nèi)源性物質(zhì)不干擾測定,方法專屬性高(Fig 1)。
3.1.2線性和最低定量限 左乙拉西坦:y=0.061 2x+0.2429 (r2=0.991 9);線性范圍為5.88~5 880 nmol·L-1,最低定量限為5.88 nmol·L-1;甲氨蝶呤:y=0.026 6x+0.462 5 (r2=0.9936);線性范圍為1.1~1 100 nmol·L-1,最低定量限1.1 nmol·L-1。
3.1.3精密度和準確度 甲氨蝶呤和左乙拉西坦的質(zhì)控樣品在日內(nèi)精密度、日間精密度、準確度都符合生物樣本要求(Tab 2),表明該分析方法的重現(xiàn)性比較好,可用于檢測左乙拉西坦和甲氨蝶呤的濃度。
3.1.4提取回收率和基質(zhì)效應(yīng) 甲氨蝶呤和左乙拉西坦在3個濃度水平上的提取回收率、基質(zhì)效應(yīng)都符合藥典規(guī)定(Tab 3)。
Fig 1 Representive MRM chromatograms of IS, MTX and LEV
A, D, G:Representative chromatograms blank plasma; B, E, H: Representative chromatograms of blank homogenate spiked with IS, LEV and MTX; C, F, I: Representative chromatograms of plasma sample from pharmacokinetic study after coadministration of LEV and MTX. IS: Aminopurine; MTX: Methotrexatein; LEV: Levetiracetam.
Tab 2 Accuracy and precision of methotrexate and levetiracetam in rat plasma
Tab 3 Matrix effect and extraction recovery of methotrexate and levetiracetam in rat plasma
Tab 4 Stability of levetiracetam and methotrexatein in rat plasma
aPlace 4h at room temperature(25℃);b4℃ storage for 8 h;c-20℃ refrigeration cycle three times
Tab 5 Dilution effect of methotrexate and levetiracetam in plasma samples
3.1.5穩(wěn)定性 甲氨蝶呤和左乙拉西坦血漿樣品室溫放置4 h、經(jīng)歷3次冷凍、解凍循環(huán)和4℃冷藏8 h后,穩(wěn)定性良好,見Tab 4;血漿樣品稀釋后,甲氨蝶呤和左乙拉西坦的精確度和準確度都滿足要求(Tab 5),表明樣品可被稀釋。
3.1.6生物樣品的適用性 為了分析該方法在稀釋尿液樣品中的適用性,我們分析了3個濃度的稀釋尿液樣品,其RSD和RE值滿足要求(Tab 6)。
3.2MTX與LEV在大鼠體內(nèi)相互作用研究
3.2.1藥代動力學(xué)參數(shù)研究 為了探究MTX和LEV在大鼠體內(nèi)的相互作用,我們進行了大鼠體內(nèi)的藥代動力學(xué)試驗。MTX和LEV在大鼠體內(nèi)的藥代動力學(xué)參數(shù)見Tab 7,藥時曲線見Fig 2。兩藥合用后,MTX的Cmax、AUC0-t、Tmax值升高,T1/2、Cl、MRT值下降,各參數(shù)差異有統(tǒng)計學(xué)意義;LEV的Tmax、T1/2、Cl有一定的上升趨勢,AUC0-t有一定的下降趨勢,各參數(shù)差異無統(tǒng)計學(xué)意義。結(jié)果表明LEV明顯增加MTX在大鼠體內(nèi)的吸收。
Fig 2 Mean plasma concentration-time curves of MTX and LEV in rats
A: Mean plasma concentration-time curves of MTX after oral administration MTX and MEX plus LEV; B: Mean plasma concentration-time curves of LEV after oral administration MTX and MEX plus LEV.
Tab 6 Application of analytical methods in the Urine samples
Tab 7 Pharmacokinetic parameters of methotrexatein and levetiracetam
*P<0.05vsMTX group
3.2.2腎臟排泄研究 為了探究MTX血藥濃度升高對腎臟排泄的影響,我們通過代謝籠驗證了MTX和LEV單用及合用后大鼠的腎臟排泄水平。在8、24、48及48 h總量4個水平上,與口服單用MTX和LEV組相比,MTX腎臟排泄量在合用組明顯增多,而LEV的腎臟排泄量在合用組減少,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(Fig 3)。結(jié)果表明,LEV明顯增加MTX在大鼠體內(nèi)的吸收,使其血藥濃度升高、腎排泄增加。
3.2.3肝腎毒性研究 為了探究MTX血藥濃度及尿排泄的增加對肝腎急性毒性的影響,選取給藥后1、2、4 h 3個時間點,取老鼠肝、腎組織,經(jīng)福爾馬林溶液固定24 h后,經(jīng)石蠟切片進行HE染色后。肝臟病理切片結(jié)果顯示,與對照組相比,MTX組、LEV組肝臟均無明顯的病理變化,MTX和LEV合用組肝損傷也不明顯,僅在4 h組在肝門靜脈附近肝細胞有少量的空泡樣變性(紅色箭頭所示部位,F(xiàn)ig 4)。腎臟病理切片結(jié)果顯示,與對照組相比,LEV組大鼠腎臟無病理學(xué)改變,MTX組大鼠腎臟在腎小球附近部分腎小管可見輕微損傷,表現(xiàn)為顆??张輼幼冃浴⒐芮惠p度擴張(紅色箭頭所示部位),MTX和LEV合用組腎小管損傷明顯增加,表現(xiàn)為腎小管大量的顆??张輼幼冃?、部分刷毛緣脫落、部分管腔可見細胞碎片(紅色箭頭、紅色方框所示部位,F(xiàn)ig 5)。結(jié)果表明,合用MTX和LEV后大鼠肝腎毒性都明顯增加,且腎臟毒性的增加遠高于肝毒性。
Fig 3 Renal excretion of MEX and LEV in rats
A: Renal excretion of MEX after oral administration MTX and MEX plus LEV at 8 h, 12 h, 24 h.*P<0.05vsMTX group; B: Renal excretion of LEV after oral administration MTX and MEX plus LEV at 8 h, 12 h, 24 h.*P<0.05,**P<0.01vsLEV group.
Fig 4 Rats liver pathological slices(HE×200)
Rat liver was taken after oral administration LEV, MTX and MTX plus LEV at 1 h, 2 h and 4 h. The red arrow marks the place where the damage occurred. Compared to LEV and MTX group, MTX plus LEV group increased liver damage significantly.
由于MTX具有抗炎和免疫抑制雙重作用[8],因此在臨床應(yīng)用比較廣泛,但其毒副作用也比較明顯。2017年3月23日,國家藥品不良反應(yīng)監(jiān)測中心發(fā)布的藥物警戒快訊中提到,加拿大衛(wèi)生部提示LEV和MTX合用可能會導(dǎo)致血液中MTX濃度升高,引起可能是致死性(包括突發(fā)急性腎衰竭)的嚴重副作用[8]。我們的實驗證明,LEV明顯增加MTX在大鼠體內(nèi)的吸收,使其血藥濃度升高,腎排泄增加,造成明顯的肝腎損傷,且對腎臟毒性的影響要明顯大于肝臟毒性。有文獻報道[9],LEV可以延長MTX的排泄。本實驗結(jié)果表明,口服合用LEV與MTX后,MTX的排泄明顯增加,而LEV的排泄明顯減少。MTX的排泄明顯增加可能是因為MTX血藥濃度增加的原因,但也不排除LEV與MTX在腎臟發(fā)生相互作用的可能??紤]到合用LEV與MTX后,LEV在血藥濃度變化無統(tǒng)計學(xué)意義的情況下腎臟排泄明顯減少,MTX與LEV以腎臟為靶點發(fā)生相互作用的可能性是很大的,需要進一步實驗來驗證兩藥在腎臟相互作用的機制。本實驗結(jié)果提示,臨床上聯(lián)合使用LEV與MTX時需要進行劑量調(diào)整。
Fig 5 Rats kidney pathological slices(HE×400)
Rat kidney was taken after oral administration LEV, MTX and MTX plus LEV at 1 h, 2 h and 4 h. The red arrow marks the place where the damage occurred. Compared to LEV and MTX group, MTX plus LEV group increased kidney damage significantly.
(致謝:感謝河北省臨床醫(yī)學(xué)研究中心/河北省代謝病重點實驗室提供大鼠實驗的實驗室;感謝河北省人民醫(yī)院病理科康林老師對病理切片結(jié)果的指導(dǎo)。)
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