倪香艷,鐘 葵,佟立濤,劉麗婭,周閑容,周素梅*
糙米中營養(yǎng)成分包括宏量營養(yǎng)素、微量營養(yǎng)素、非淀粉多糖、植物類化學(xué)素和抗?fàn)I養(yǎng)素等[1-2]。多酚類物質(zhì)是糙米中最主要的植物營養(yǎng)素,同時也是天然抗氧化物[3-4]。流行病學(xué)研究表明[5],谷物的抗氧化活性可有效地預(yù)防慢性病及代謝性疾病發(fā)生。因此,對于糙米中多酚類物質(zhì)及其抗氧化活性的研究成為近年來關(guān)注的熱點。
目前,關(guān)于糙米多酚類物質(zhì)及其抗氧化活性的研究大部分集中在原料上或?qū)⒍喾宇愇镔|(zhì)提出后開展生物活性的相關(guān)研究[6],但通常谷物的膳食方式是必須經(jīng)過熱處理熟化后食用,此外胃腸道的消化處理對多酚類小分子物質(zhì)的含量及抗氧化活性影響顯著,熟化的糙米經(jīng)過胃腸消化后其多酚類物質(zhì)的含量及抗氧化活性與原料差異較大[7],所以目前有關(guān)糙米原料中多酚類物質(zhì)含量及抗氧化活性的研究結(jié)論與糙米在胃腸道消化過程中相關(guān)指標(biāo)變化趨勢并沒有必然聯(lián)系。通過人體實驗或動物實驗研究糙米中多酚類物質(zhì)在人體胃腸道消化和吸收過程中的變化趨勢存在諸多困難,體外模擬胃腸道消化具有操作簡單、易行、實驗條件易于控制、實驗周期較短的優(yōu)點,成為研究食物在人體胃腸道消化中變化的重要途徑[8]。采用體外模擬胃腸道消化過程中酚類物質(zhì)及其抗氧化性變化近年來研究較多[9],但關(guān)于糙米熟化后在人體胃腸道消化和吸收過程中多酚類物質(zhì)及其活性的變化研究報道較少。
本實驗以粳型糙米圣稻735和秈型糙米農(nóng)香18為原料,對原料進(jìn)行熟化處理并通過體外消化模型模擬口腔、胃和小腸消化過程,研究體外消化過程中糙米多酚含量變化以及對抗氧化活性的影響,為以后深度研究提供基礎(chǔ)理論數(shù)據(jù)和思路。
粳型糙米圣稻735由山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供;秈型糙米農(nóng)香18由湖南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供。
α-淀粉酶(15 U/mg)、胃蛋白酶(474 U/mg)、胰酶(4×USP) 美國Sigma公司;豬膽汁、熒光素鈉鹽、水溶性VE(純度≥97%)、偶氮二異丁脒鹽酸鹽(純度≥97%)、三吡啶基三嗪(純度≥98.5%) 北京索萊寶生物有限公司;碳酸氫鈉、氫氧化鈉、氯化鈣(均為分析純) 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
CP-214分析天平 奧豪斯儀器(上海)有限公司;KJELTEC2300全自動凱氏定氮儀 FOSS儀器有限公司;SER148全自動粗脂肪測定儀 意大利VELP公司;IU-1900紫外分光光度計 北京普析通用儀器有限公司;UB-7標(biāo)準(zhǔn)型pH計 美國Denver儀器公司;THZ-82A恒溫水浴振蕩器 常州榮華儀器制造有限公司;TGL-16臺式冷凍高速離心機(jī) 湖南湘儀儀器有限公司;LGJ-25C冷凍干燥機(jī) 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;Chameleon V多功能酶標(biāo)儀 芬蘭Hidex公司。
1.3.1 樣品基本成分測定
參照GB/T 5519—2008《谷物與豆類 千粒重的測定》測定千粒質(zhì)量;參照GB/T 14772—2008《食品中粗脂肪的測定》測定粗脂肪含量;參照GB/T 5009.5—2003《食品中蛋白質(zhì)的測定》測定粗蛋白含量;參照GB/T 5009.88—2008《食品中膳食纖維的測定》測定總膳食纖維含量;采用試劑盒方法并參照AOAC 996.11測定總淀粉含量[10];采用Megazyme Amylose/Amylopectin Assay Procedure試劑盒方法測定直鏈淀粉含量[11]。
1.3.2 體外消化
體外消化過程參照Connolly[12]和趙旭[13]等的方法,并略作修改。稱取12.00 g糙米粉置于錐形瓶中,邊攪拌邊加入200 mL去離子水,隨后加入溶解在1.25 mL CaCl2(1 mmol/L,pH 7.0)溶液中的唾液α-淀粉酶10.00 mg,37 ℃恒溫水浴搖床中反應(yīng),空白對照組錐形瓶中不加入糙米粉,分別在反應(yīng)0、15 min和30 min取出一定體積的消化液;消化30 min后用6 mol/L HCl溶液將酶解液pH值調(diào)節(jié)至2.00,加入溶解在5 mL HCl溶液(0.1 mol/L)中的胃蛋白酶0.24 g,37 ℃恒溫水浴搖床中反應(yīng),空白對照組錐形瓶中不加入糙米粉,分別在反應(yīng)1、5、15、30、60 min和120 min取出一定體積消化液;消化2 h后用6 mol/L的NaOH將pH值調(diào)節(jié)至6.80,隨后加入溶解在Na2HCO3溶液(0.5 mol/L,10 mL)中的胰酶(0.22 g)和膽汁(0.70 g),37 ℃恒溫水浴搖床中反應(yīng),空白對照組錐形瓶中不加入糙米粉,分別在反應(yīng)1、15、30、60、120、180 min和240 min取出一定體積的消化液;消化4 h后將溶液轉(zhuǎn)移至1 kDa透析袋中透析過夜。將各消化階段消化液4 ℃離心(10 000 r/min,20 min)取上清液,80%丙酮溶液沉淀去除上清液中蛋白質(zhì)和多糖,離心(10 000 r/min、10 min),上清液于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.3 總酚含量測定
參考Shen Yun等[14]方法并進(jìn)行適當(dāng)?shù)恼{(diào)整。1 mL提取液(適度稀釋)中,加入0.5 mL 0.5 mol/L福林-酚試劑和2.5 mL 75 g/L Na2CO3溶液,混合均勻,室溫下避光反應(yīng)2 h,760 nm波長處測定反應(yīng)液的吸光度。根據(jù)不同濃度的沒食子酸繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,以沒食子酸當(dāng)量計算樣品中總酚含量,結(jié)果表示為mg/100 g。
1.3.4 酚酸組成的測定
采用HPLC測定提取液中酚酸含量及組成[3],8 種酚酸(沒食子酸、綠原酸、原兒茶酸、咖啡酸、香草酸、p-香豆酸、丁香酸和阿魏酸)作為外標(biāo)。使用SB-C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱,檢測波長280 nm和320 nm,柱溫為40 ℃,進(jìn)樣量為10 μL,流動相A(2%甲酸)和流動相B(乙腈),梯度洗脫程序:A 95%~75%,0~30 min;A 60%,30~50 min;A 95%,50~60 min。流速為0.8 mL/min。
1.3.5 抗氧化能力測定
1.3.5.1 鐵離子還原/抗氧化能力(ferric-reducing antioxidant power,F(xiàn)RAP)[15]
制備FRAP試劑:300 mmol/L醋酸鹽緩沖液-10 mmol/L TPTZ鹽酸溶液(40 mmol/L)-20 mmol/L FeCl3·6H2O溶液(10∶1∶1,V/V)。在96 孔板中加入20 μL提取液(適宜濃度)和260 μL FRAP試劑,避光反應(yīng)30 min后在593 nm波長處測定吸光度。以不同濃度的Trolox溶液繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)吸光度計算樣品的FRAP值,以Trolox當(dāng)量計算,測定結(jié)果以μmol/g表示。
1.3.5.2 氧自由基清除能力(oxygen radical absorbance capacity,ORAC)[16-17]
96 孔板中加入20 μL的提取液(適度濃度)和260 μL熒光素鈉鹽溶液(0.086 8 nmol/L),然后將96 孔板放入熒光酶標(biāo)儀中在37 ℃預(yù)熱20 min,迅速加入20 μL 2,2-偶氮二(2-甲基丙基咪)二鹽酸鹽(2,2-azobis(2-methylpropionamidine)dihydrochloride,AAPH)溶液(153 mmol/L),振蕩搖勻,立即在激發(fā)波長485 nm,發(fā)射波長525 nm條件下進(jìn)行測定,初始熒光強(qiáng)度記為f0,每隔2 min自動測定熒光強(qiáng)度,測定2 h,熒光強(qiáng)度分別記為f0、f1、f2…f58、f59、f60,根據(jù)公式計算熒光強(qiáng)度值。以Trolox當(dāng)量計算,測定結(jié)果以μmol/g表示。
熒光強(qiáng)度=1+f1/f0+f2/f0+f3/f0+f4/f0+…+f59/f0+f60/f0
我國稻米資源豐富、品種多樣,稻米按其粒形和粒質(zhì)可分為粳稻和秈稻兩大亞型,不同品種和類型間糙米基本營養(yǎng)及功能成分存在差異[18]。本實驗選取粳型糙米圣稻735和秈型糙米農(nóng)香18作為實驗原料。
表1 糙米原料基本成分分析Table 1 Proximate chemical composition of brown rice
如表1所示,JBR中粗蛋白、粗脂肪、總淀粉和直鏈淀粉的質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為8.49%、2.34%、78.28%和16.32%,IBR中質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為8.86%、2.21%、77.00%和17.73%,JBR與IBR中基本營養(yǎng)成分含量差異不顯著(P>0.05);IBR中膳食纖維含量顯著高于JBR(P<0.05),研究結(jié)果與文獻(xiàn)報道相似[19-20]。多酚類物質(zhì)是糙米中重要的植物類營養(yǎng)素,是一種天然抗氧化物,具有抗氧化能力[21]。JBR中游離酚含量約為IBR 1.6 倍左右,結(jié)合酚含量是IBR 1.07 倍左右,表明不同品種和類型糙米多酚類物質(zhì)含量存在顯著性差異(P<0.05);相關(guān)研究[14]指出不同糙米品種間游離型總酚及抗氧化活性存在差異,并與糙米籽粒顏色、大小和粒質(zhì)量有關(guān),Liu Lei等[22]曾研究表明JBR和IBR中游離型多酚含量(以沒食子酸當(dāng)量計算)分別為65.6、62.0 mg/100 g,JBR中含量略高于IBR,與本實驗結(jié)果具有一致性。
多酚類物質(zhì)的攝入與癌癥、心血管疾病及炎癥等多種慢性病及代謝性疾病的發(fā)生密切相關(guān)[12]。糙米良好的的生理功能與其富含多酚類物質(zhì)和良好的抗氧化活性密不可分。通常谷物食品需要熟化并經(jīng)過胃腸道消化處理后,營養(yǎng)及功能成分才能被人體消化吸收。近年來研究發(fā)現(xiàn),消化過程對谷物中酚類物質(zhì)具有顯著影響[7,13]。本研究通過體外模擬消化實驗,開展糙米原料在消化過程中多酚類物質(zhì)含量的變化,分析口部、胃部和小腸部分酚類物質(zhì)釋放量的變化趨勢。
圖1 體外消化過程中酚類物質(zhì)釋放量變化分析Fig. 1 Analysis of polyphenols release during in vitro digestion
如圖1所示,體外模擬口腔、胃和小腸3 個階段消化過程中,JBR中酚類物質(zhì)釋放量在3 個消化階段末分別為150.4、387.6 mg/100 g和460.9 mg/100 g,表明體外消化過程顯著促進(jìn)了JBR中酚類物質(zhì)的釋放。起始點JBR酚類物質(zhì)含量為106.25 mg/100 g,口腔消化階段后JBR中酚類物質(zhì)含量少量增加,胃部消化階段是酚類物質(zhì)含量增加速率最多的階段,JBR中酚類物質(zhì)含量增至3.7 倍,JBR在胃部消化階段前15 min內(nèi)增速較慢,僅為原料中1.4 倍左右;但30 min后含量快速增加至300 mg/100 g(2.8 倍左右);隨著胃部消化時間延長JBR中酚類物質(zhì)含量緩慢增加,120 min后增長至387.6 mg/100 g(3.7 倍)。小腸消化階段,JBR中酚類物質(zhì)含量隨消化時間延長呈現(xiàn)緩慢增加趨勢,從387.6 mg/100 g增至460.9 mg/100 g,最終為原料中4.4 倍左右。
IBR在整個消化過程中酚類物質(zhì)含量的變化趨勢與JBR類似,IBR酚類物質(zhì)釋放量在3 個消化階段末分別為95.1、325.7 mg/100 g和394.9 mg/100 g,表明消化過程能顯著促進(jìn)IBR中酚類物質(zhì)的釋放(P<0.05)。起始點IBR中酚類物質(zhì)含量為68.05 mg/100 g,口腔消化過程對秈米中酚類物質(zhì)含量增加影響較小,增幅約為20%~30%。胃部消化過程中,IBR在胃部消化30 min后酚類物質(zhì)含量呈現(xiàn)快速增加,120 min后增至325.7 mg/100 g(4.8 倍)。小腸消化階段,IBR中酚類物質(zhì)含量仍然緩慢增長,最終增至394.9 mg/100 g(5.8 倍)。整體來看,經(jīng)過口腔、胃部和小腸消化階段后,JBR中酚類物質(zhì)釋放量顯著高于IBR(P<0.05)。
王慧清等[23]在全麥粉模擬消化過程中的抗氧化活性研究中也指出胃和小腸消化階段全麥粉酚類物質(zhì)釋放量顯著升高,為胃起始階段的3.14、5.54 倍左右,與本研究結(jié)果較一致。體外消化過程中酚類物質(zhì)釋放量升高可能是由于糙米原料中多酚可與淀粉、蛋白質(zhì)、多糖等天然化合物發(fā)生復(fù)合,形成的復(fù)合物非常穩(wěn)定不易釋放[24],在極端pH值環(huán)境、胃蛋白酶和胰酶的作用下可以使多糖分離、淀粉和蛋白質(zhì)酶解,有研究[23]曾指出胃蛋白酶和胰蛋白酶會促使羧基的斷裂,胰酶中含有的胰脂肪酶能水解酯鍵,胰淀粉酶具有水解淀粉中糖苷鍵的功效從而使多酚失去束縛被釋放出來,使糙米在不同消化階段提取液中酚類物質(zhì)明顯升高。Ti Huihui等[7]曾研究指出大米經(jīng)體外消化其酚類物質(zhì)含量也顯著升高(P<0.05);由于粳型和秈型糙米原料中酚類物質(zhì)含量不同,模擬消化過程中兩者酚類物質(zhì)釋放量也存在差異。
表2 體外消化過程中酚酸含量變化分析Table 2 Analysis of phenolic acids during in vitro digestion
如表2所示,體外消化起始階段,糙米中主要的單體酚酸為阿魏酸、原兒茶酸和p-香豆酸,與葉玲旭[25]報道結(jié)果相似。體外消化處理促進(jìn)了糙米中阿魏酸釋放,但隨著消化過程延長,JBR消化液中阿魏酸含量沒有顯著變化,但I(xiàn)BR消化液中阿魏酸含量顯著增加(P<0.05)。小腸消化階段顯著促進(jìn)JBR和IBR中原兒茶酸釋放量,釋放量分別達(dá)到17.60 μg/g和10.80 μg/g。消化過程對糙米中p-香豆酸含量影響較小,僅IBR在小腸消化后p-香豆酸含量有少量增加(0.93 μg/g)。小腸消化過程顯著促進(jìn)IBR中沒食子酸含量增加。Ti Huihui等[26]也曾研究表明糙米在體外消化過程中原兒茶酸和阿魏酸含量較高,與本研究結(jié)果較為一致。
模擬消化過程中酚類物質(zhì)釋放量與消化時間存在顯著相關(guān)關(guān)系,為更直觀和準(zhǔn)確分析各消化階段酚類物質(zhì)釋放量隨時間變化趨勢,將不同消化階段和時間下糙米中酚類物質(zhì)釋放量進(jìn)行函數(shù)擬合,考察體外模擬胃和小腸消化過程中糙米酚類物質(zhì)釋放量的動力學(xué)變化,具體分析如圖2所示。
圖2 體外消化過程中酚類物質(zhì)釋放量變化動力學(xué)分析Fig. 2 Kinetic curves of polyphenols release during in vitro digestion
JBR和IBR在消化階段酚類物質(zhì)釋放量存在類似變化趨勢。消化過程中酚類物質(zhì)釋放量隨消化時間的變化趨勢符合冪函數(shù)Y=aXb(X為消化時間,Y為酚類物質(zhì)釋放量,a為速率常數(shù),b為曲線常數(shù)),各消化階段酚類物質(zhì)釋放量變化動力學(xué)參數(shù)見表3。在胃部和小腸消化階段,糙米中酚類物質(zhì)釋放量與消化時間的變化規(guī)律與冪函數(shù)擬合度高,R值均在0.95以上。a值越大表明相同消化時間下,酚類物質(zhì)釋放量越大;b代表相同消化時間下酚類物質(zhì)釋放曲線的變化速率。胃部和小腸消化過程中,IBR和JBR的b值沒有顯著差異,表明兩者具有類似的消化速率和變化趨勢。推測是由于粳型糙米和秈型糙米屬于稻米兩大亞型,兩者基本成分和結(jié)構(gòu)相似,使得在消化酶作用下變化趨勢相似。但JBR的a值均高于IBR的a值,表明相同消化階段JBR中酚類物質(zhì)釋放量高于IBR。這與JBR原料中酚類物質(zhì)含量高于IBR研究結(jié)果相對應(yīng)。
表3 體外消化過程中酚類物質(zhì)釋放量變化動力學(xué)參數(shù)Table 3 Kinetic parameters of polyphenols release during in vitro digestion
酚類物質(zhì)是糙米中主要的親水性抗氧化活性物質(zhì),多酚類物質(zhì)直接影響糙米的抗氧化能力。本實驗通過體外模擬消化系統(tǒng)制備收集消化液,同時采用FRAP和ORAC兩種方法測定消化液抗氧化能力,分析結(jié)果如圖3、4所示。
圖3 體外消化過程中消化液抗氧化活性變化分析Fig. 3 Analysis of antioxidant activity in terms of FRAP of in vitro digests
多酚作為天然抗氧化物可清除氧自由基、螯合金屬離子、抑制氧自由基產(chǎn)生過程中相關(guān)酶的活性,激活抗氧化酶系活性或調(diào)節(jié)相關(guān)內(nèi)源抗氧化劑的合成[27-28]等。如圖3所示,對于JBR,3 個消化階段末FRAP值分別為起始階段的0.94、1.08 倍和1.54 倍,表明消化過程使JBR抗氧化活性顯著增強(qiáng)??谇缓臀覆肯^程對FRAP值影響較小,但小腸消化過程FRAP值顯著增加(P<0.05)。在胃和小腸各消化階段中,隨著消化時間進(jìn)行,JBR的FRAP值并沒有發(fā)生顯著變化(P>0.05),最終值達(dá)到10.76 μmol/g。
消化過程中IBR中酚類物質(zhì)FRAP值與JBR變化趨勢類似。對于IBR,3個消化階段末FRAP值分別為起始階段的1.13、1.48 倍和2.01 倍,表明消化過程使IBR抗氧化活性顯著增強(qiáng)??谇幌^程對其FRAP值影響較小,胃和小腸消化過程FRAP值顯著增加(P<0.05)。在胃和小腸各消化階段中,隨著消化時間進(jìn)行,IBR的FRAP值并沒有發(fā)生顯著變化(P>0.05),最終值達(dá)到8.44 μmol/g。整體而言,相同消化階段,JBR的FRAP值顯著高于IBR(P<0.05),比較分析體外消化過程中抗氧化活性與酚類物質(zhì)釋放量間的關(guān)系,表明抗氧化活性的變化趨勢與其所含酚類物質(zhì)含量變化趨勢較為一致。
圖4 體外消化過程中消化液抗氧化活性變化分析Fig. 4 Analysis of antioxidant activity in terms of ORAC of in vitro digests
如圖4所示,對于JBR,口腔消化過程對其ORAC值無顯著影響,但胃和小腸消化階段抗氧化活性顯著增強(qiáng),且小腸消化階段抗氧化活性顯著高于胃消化階段。在胃和小腸各個消化階段,隨著消化時間延長,JBR的ORAC值并沒有顯著性變化(P>0.05),胃和小腸消化階段最終值達(dá)到5.35、6.75 μmol/g。對于IBR,口腔消化過程對其ORAC值無顯著影響,但胃和小腸消化階段抗氧化活性顯著增強(qiáng),且小腸消化階段抗氧化活性顯著高于胃消化階段。在胃部消化15 min后,ORAC值降低,胃消化階段最終ORAC值為5.04 μmol/g;在小腸消化60 min后,ORAC值降低,小腸消化階段最終ORAC值為5.28 μmol/g。整體而言,胃部消化階段,JBR與IBR的ORAC值無顯著性差異(P>0.05),小腸消化階段,JBR的ORAC顯著高于IBR(P<0.05)。
圖5 體外消化過程中酚類物質(zhì)釋放量與抗氧化活性相關(guān)性分析Fig. 5 Analysis of correlation between polyphenols release and antioxidant activity during in vitro digestion
圖5 為體外消化過程中酚類物質(zhì)釋放量與抗氧化活性相關(guān)性分析。在FRAP和ORAC兩種抗氧化體系中,消化液抗氧化活性與酚類物質(zhì)釋放量存在一定相關(guān)性。酚類物質(zhì)釋放量越高,其FRAP和ORAC活性也越高。JBR中,消化液FRAP值與ORAC值與酚類物質(zhì)釋放量之間存在一定相關(guān)性,其皮爾遜相關(guān)系數(shù)(R2)分別為0.786、0.655。IBR中,消化液FRAP值與酚類物質(zhì)釋放量之間存在較強(qiáng)相關(guān)性,其R2為0.888,消化液ORAC與酚類物質(zhì)釋放量相關(guān)性不高(0.352)。張兵[15]對小扁豆植物化學(xué)物質(zhì)抗氧化活性研究曾指出消化液抗氧化活性與酚類物質(zhì)釋放量存在一定相關(guān)性,且不同抗氧化體系相關(guān)性程度不同,與本研究結(jié)果具有一致性。
FRAP和ORAC兩種方法測定JBR和IBR抗氧化活性結(jié)果存在顯著性差異,推測與兩種方法中抗氧活性測定機(jī)理的不同有關(guān)。FRAP測定抗氧化活性涉及電子轉(zhuǎn)移,反映的是樣品總的還原能力,并不能表示對某一種自由基的清除能力;ORAC的測定原理是對氫原子轉(zhuǎn)移,測定過程涉及活性氧,該研究結(jié)果與Lee[29]和馬玉榮[30]等得到結(jié)論相類似。
JBR和IBR中粗蛋白、粗脂肪、總淀粉和直鏈淀粉的含量無顯著性差異(P>0.05);IBR中膳食纖維含量顯著高于JBR(P<0.05);JBR中多酚類物質(zhì)含量為IBR的1.5 倍左右。
體外消化過程顯著增加了糙米中酚類物質(zhì)的釋放??谇幌A段對糙米中酚類物質(zhì)的釋放影響較小,胃部和小腸消化階段顯著促進(jìn)了JBR和IBR中酚類物質(zhì)釋放(P<0.05),最高值分別為460.9 mg/100 g和401.1 mg/100 g。糙米體外消化過程消化液中單體酚酸主要為阿魏酸和原兒茶酸。JBR中酚類物質(zhì)釋放量顯著高于IBR(P<0.05),兩者酚類物質(zhì)含量隨消化時間的動態(tài)變化趨勢均符合冪函數(shù)模型,且具有類似的變化動力學(xué)曲線。
糙米體外消化過程中消化液具有良好的抗氧化活性,抗氧化活性與酚類物質(zhì)釋放量具有一定相關(guān)性。JBR和IBR的FRAP值最大分別為10.76、8.44 μmol/g。相同消化階段,JBR的FRAP值顯著高于IBR(P<0.05)。ORAC測得JBR和IBR消化液抗氧化能力最高分別在腸消化60 min(6.82 μmol/g),腸消化30 min(6.23 μmol/g)。胃部消化階段,JBR和IBR的ORAC值無顯著性差異(P>0.05),小腸消化階段,JBR的ORAC顯著高于IBR(P<0.05)。