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      花椒麻味物質(zhì)替代模板分子印跡聚合物的制備

      2018-08-31 02:32:42何葉子陳光靜闞建全
      食品科學(xué) 2018年16期
      關(guān)鍵詞:萃取液印跡花椒

      李 耀,何葉子,陳光靜,2,3,闞建全,2,3,*

      花椒(Zanthoxylum bungeanum)含有多種生理活性成分,如揮發(fā)油類(lèi)、生物堿類(lèi)和酰胺類(lèi)物質(zhì),目前從花椒中分離純化得到的酰胺類(lèi)物質(zhì)主要是α-山椒素、β-山椒素、γ-山椒素及其羥基山椒素(圖1),這類(lèi)酰胺物質(zhì)被稱(chēng)為花椒麻味物質(zhì)(numb-taste components of Z. bungeanum,NTCZB),山椒素是最能代表花椒引起麻刺感的成分。NTCZB具有麻醉、抑菌、祛風(fēng)除濕、殺蟲(chóng)和抗氧化等功效,具有很好的應(yīng)用價(jià)值[1-2]。但NTCZB在空氣中不穩(wěn)定,目前還沒(méi)有市售的標(biāo)準(zhǔn)品,傳統(tǒng)分離純化方法存在繁瑣、成本高等缺點(diǎn),而NTCZB的結(jié)構(gòu)、性質(zhì)、含量等方面還有待深入研究,因此迫切需要研究出NTCZB更加高效的分離純化方法[3-4]。分子印跡技術(shù)為NTCZB的分離純化提供了新的思路。在分子印跡技術(shù)中,采用與印跡分子結(jié)構(gòu)相似的化合物作為替代模板分子,可以解決一些印跡分子難獲得、溶解性差等問(wèn)題[5-6]。用替代模板分子制備的分子印跡聚合物(molecular imprinting polymers,MIPs)對(duì)目標(biāo)印跡分子仍具有較好的印跡效果[7-8]。近些年替代模板分子印跡技術(shù)快速發(fā)展,但目前鮮見(jiàn)有關(guān)采用替代模板分子制備N(xiāo)TCZB的MIPs相關(guān)報(bào)道。

      NTCZB標(biāo)準(zhǔn)品制備過(guò)程繁雜、成本高,其分子鏈上的多個(gè)不飽和碳碳雙鍵容易發(fā)生共價(jià)鍵化學(xué)反應(yīng),使NTCZB不易洗脫[9]。為解決上述問(wèn)題,本實(shí)驗(yàn)采用山椒素的結(jié)構(gòu)類(lèi)似物(molecular structural analogs of alkyl amides,LM,見(jiàn)圖1d)為NTCZB分子印跡的替代模板分子(理論相對(duì)分子質(zhì)量為271),采用本體聚合的方法制備多種NTCZB的MIPs,從中選出對(duì)NTCZB的印跡效果最優(yōu)的MIPs,并用其吸附花椒萃取液中的NTCZB,為高純度NTCZB的分離純化奠定基礎(chǔ),同時(shí)也為具有類(lèi)似結(jié)構(gòu)特點(diǎn)物質(zhì)的分子印跡技術(shù)提供方法借鑒。

      圖1 NTCZB主要成分及LM的分子結(jié)構(gòu)圖Fig. 1 Molecular structures of numb-taste components of Z. bungeanum and structural analogs of alkyl amides

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      NTCZB標(biāo)準(zhǔn)品(純度>95%),由實(shí)驗(yàn)室按照逆流干柱層析法、制備型高效液相色譜法等工序制備[10];LM(純度>95%)由實(shí)驗(yàn)室按照Menozzismarrito等[11]提供的方法制備;鮮花椒 重慶凱揚(yáng)農(nóng)業(yè)有限公司;乙二醇二甲基丙烯酸酯(ethylene glycol dimethacrylate,EDMA)、2-乙烯基吡啶(2-vinylpyridine,2-Vpy)、甲基丙烯酸(methacrylic acid,MAA)、丙烯酰胺(acrylamide,AM)(均為分析純) 阿拉丁公司;偶氮二異丁腈(2,2-azobisisobutyronitrile,AIBN)、氯仿、甲醇、冰乙酸、乙腈(均為分析純) 成都科隆試劑公司;實(shí)驗(yàn)用水為蒸餾水。

      1.2 儀器與設(shè)備

      DSHZ-300型水浴振蕩儀 蘇州市培英實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;DHG-9123A型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海一恒科學(xué)儀器有限公司;5810型離心機(jī) 德國(guó)艾本德公司;超聲波清洗器 上??茖?dǎo)超聲儀器有限公司;HH-6型數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市富華儀器有限公司;1260型高效液相色譜儀 美國(guó)Agilent公司;CP214型電子天平 奧豪斯儀器上海有限公司;UV-260型紫外光譜儀 日本島津公司;Equinox55傅里葉變換紅外光譜儀 德國(guó)Bruker公司;S-3400N I型掃描電子顯微鏡 日本Hitachi公司;R215旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 瑞士Büchi公司。

      1.3 方法

      1.3.1 LM與功能單體混合溶液的紫外吸收光譜測(cè)定[12-13]

      分別吸取LM-乙腈溶液100 μL、功能單體(2-Vpy、AM、MAA)的乙腈溶液200 μL及LM與功能單體混合物(物質(zhì)的量比為1∶2)于10 mL比色管中,乙腈定容,超聲10 min后,于4 ℃避光靜置12 h,以乙腈作為參比溶液,在波長(zhǎng)190~400 nm進(jìn)行紫外光譜掃描。

      1.3.2 不同物質(zhì)的量比的功能單體與LM的紫外光譜掃描

      固定LM-乙腈溶液1 mL于10 mL比色管中,分別加入功能單體(2-Vpy、AM、MAA)的乙腈溶液,使LM與功能單體物質(zhì)的量比分別為1∶1、1∶2、1∶4、1∶6、1∶8、1∶10,乙腈定容,超聲10 min后在4 ℃環(huán)境下避光保存12 h,以相同濃度功能單體為參比溶液,在190~400 nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)進(jìn)行紫外光譜掃描。

      1.3.3 NTCZB的MIPs制備

      MIPs的不同聚合條件見(jiàn)表1。以實(shí)驗(yàn)組編號(hào)1為例,聚合物的制備過(guò)程具體如下[14]:稱(chēng)取67.75 mg(0.25 mmol)LM于50 mL圓底燒瓶中,加入12 mL乙腈溶解,然后加1 mmol功能單體MAA,超聲30 min,使其充分溶解,5 ℃避光放置過(guò)夜,使LM和功能單體充分作用;加入4 mmol交聯(lián)劑EDMA和10 mg引發(fā)劑AIBN,充分溶解后,向混合液中通氮?dú)?0 min,使瓶?jī)?nèi)保持惰性氛圍,并在氮?dú)獗Wo(hù)下用封口膜密封燒瓶;于50 ℃恒溫水浴鍋內(nèi)熱引發(fā)聚合4 h后,再于60 ℃恒溫水浴鍋內(nèi)熱引發(fā)聚合20 h,得乳白色塊狀聚合物,將聚合物反復(fù)研磨,過(guò)200 目標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)篩;用丙酮自然沉降3 次,棄去上層濁液,以除去聚合物中過(guò)細(xì)小的粒子;將沉淀物真空干燥后,以甲醇-乙酸(9∶1,V/V)為洗脫液進(jìn)行索氏提取,直至索氏提取器內(nèi)溶液不含LM為止;再用甲醇反復(fù)洗滌聚合物以去除乙酸,將處理好的MIPs放置于真空干燥箱內(nèi),40 ℃干燥至恒質(zhì)量,待用。各條件下制備N(xiāo)TCZB的MIPs記為MIPs l~MIPs 16(表1)。作為對(duì)照,實(shí)驗(yàn)制備了空白印跡聚合物(non-imprinting polymers,NIPs),其制備方法與MIPs的步驟相同,只是在聚合過(guò)程中不加入LM[15],對(duì)應(yīng)樣品記為NIPs l~NIPs 16。

      表1 聚合物的制備條件Table 1 Conditions for preparation of polymers

      1.3.4 NTCZB高效液相色譜檢測(cè)條件及標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)[16]的繪制

      高效液相色譜檢測(cè)條件:色譜柱-Agilent Eclipse XDB-C18(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動(dòng)相:甲醇-水(60∶40,V/V),流速1 mL/min,保留時(shí)間15 min,進(jìn)樣量10 μL,柱溫40 ℃,紫外檢測(cè)波長(zhǎng)254 nm。配制0.01~0.4 mg/mL的NTCZB標(biāo)準(zhǔn)溶液,高效液相色譜檢測(cè)該系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,以3 次檢測(cè)結(jié)果中目標(biāo)峰的平均峰面積(y)對(duì)質(zhì)量濃度(x)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),NTCZB標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的線(xiàn)性回歸方程:y=17 765x+125(R2=0.999)。

      1.3.5 MIPs的靜態(tài)吸附實(shí)驗(yàn)

      稱(chēng)取50 mg MIPs,置于20 mL具塞錐形瓶中,加入8 mL的一定質(zhì)量濃度的NTCZB-氯仿溶液,于振蕩器上25 ℃、150 r/min振蕩12 h后,倒入10 mL離心管中6 000 r/min離心5 min,移取適量上層清液,微孔濾膜過(guò)濾后,高效液相色譜檢測(cè)NTCZB濃度,差減法計(jì)算該聚合物對(duì)NTCZB的吸附量[17],計(jì)算見(jiàn)式(1):

      式中:Q為MIPs的吸附量/(mg/g);C1為氯仿溶液中NTCZB的原始質(zhì)量濃度/(μg/mL),C0為吸附后上層清液中NTCZB的質(zhì)量濃度/(μg/mL);V為所用氯仿溶液的體積/mL;m為印跡聚合物的質(zhì)量/g。

      分子印跡研究中通常用特異因子α表示印跡效果。特異結(jié)合量和特異因子分別定義為式(2)、(3):

      式中:ΔQ為特異結(jié)合量/(mg/g);QMIPs為MIPs的吸附量/(mg/g);QNIPs為NIPs的吸附量/(mg/g);α為特異因子。

      1.3.6 MIPs的紅外表征[18]

      稱(chēng)取MIPs和NIPs各10 mg,1 000 mg溴化鉀,研磨充分后于100 ℃烘干至恒質(zhì)量,經(jīng)壓片后,在傅里葉變換紅外光譜儀上進(jìn)行測(cè)定(掃描范圍400~4 000 cm-1)。

      1.3.7 MIPs對(duì)花椒中NTCZB的分子印跡驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

      取1.0 g粉碎后的花椒粉末置于75 mL氯仿中,于35 ℃、150 r/min振蕩提取12 h,再將其轉(zhuǎn)移到分液漏斗中,振搖2 min,靜置分層后,收集氯仿萃取液,定容于100 mL容量瓶中。稱(chēng)取250 mg MIPs,置于100 mL具塞錐形瓶中,加入30 mL的上述萃取液,于振蕩器上25 ℃、150 r/min振蕩5 h后,轉(zhuǎn)入10 mL離心管中6 000 r/min離心5 min,收集固體沉淀物,以甲醇為洗脫液對(duì)固體沉淀物索氏抽提24 h,將洗脫液濃縮至100 mL,高效液相色譜檢測(cè)洗脫液中NTCZB的含量[19]。

      1.4 數(shù)據(jù)處理

      每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,用Origin 8.0和Excel 2003處理實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)并作圖,結(jié)果以 ±s表示。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 單體與LM的紫外光譜分析

      根據(jù)吸光度加和性,若溶液中各個(gè)組分彼此間不發(fā)生作用,則吸光度就等于該溶液中各個(gè)組分的吸光度之和,即混合物的理論吸光度,而該混合物的實(shí)際吸光度為該混合物溶液在該波長(zhǎng)下實(shí)測(cè)的紫外吸光度,理論吸光度與實(shí)際測(cè)量值差值越大,表明二者相互作用也越大。

      圖2 LM、功能單體及其混合物的紫外吸收光譜Fig. 2 Ultraviolet absorption spectra of LM, functional monomer and their mixture

      從圖2可以看出,所有樣品的理論吸光度(E1)均大于實(shí)際測(cè)量值(E2),說(shuō)明LM與功能單體間發(fā)生了相互作用,原因是LM上存在?;土u基,與功能單體形成氫鍵[20]。LM-MAA在波長(zhǎng)200 nm處的實(shí)測(cè)值與理論值差值為0.937±0.095,LM-AM波長(zhǎng)200 nm處的實(shí)測(cè)值與理論值差值為0.977±0.101,LM-2-Vpy波長(zhǎng)200 nm處的實(shí)測(cè)值與理論值差值為1.248±0.138,從差值上可以看出LM與2-Vpy相互作用最大,理論上說(shuō),用2-Vpy為功能單體合成的MIPs具有更好的穩(wěn)定性和特異性識(shí)別能力[21]。

      由圖3A、B、C可知,隨著加入功能單體量的增加,LM和功能單體混合體系的最大吸收峰的吸光度呈上升趨勢(shì),這是因?yàn)長(zhǎng)M上的—NH—、C=O和—OH基團(tuán)與3 種功能單體上含有的助色團(tuán)和生色團(tuán)相連,產(chǎn)生電子躍遷,使混合體系的最大吸收峰的吸光度增加,同時(shí)使最大吸收峰向長(zhǎng)波長(zhǎng)方向移動(dòng),這說(shuō)明隨著功能單體的加入,LM與相應(yīng)的功能單體通過(guò)氫鍵生成了新的復(fù)合物,而該復(fù)合物的穩(wěn)定性直接影響MIPs的吸附效果[22]。吸光度變化趨于平緩時(shí),說(shuō)明混合物體系趨于穩(wěn)定,此時(shí)進(jìn)入平緩區(qū)的轉(zhuǎn)折點(diǎn)所對(duì)應(yīng)的混合物比例是最佳的配比[23],從圖3D可看出,LM與MAA、AM、2-Vpy在對(duì)應(yīng)物質(zhì)的量比在1∶4之后吸光度變化均較之前更加平緩,可推斷LM與功能單體物質(zhì)的量比為1∶4可能是聚合的較佳比例。

      圖3 不同比例功能單體對(duì)預(yù)組裝體系紫外光譜的影響Fig. 3 Effect of different ratios between functional monomers on UV spectrum of preassembled system

      差示紫外光譜掃描與不同物質(zhì)的量比的功能單體加入量的紫外光譜掃描實(shí)驗(yàn)方法類(lèi)似,僅將參比溶液換成相同濃度的LM溶液。LM與2-Vpy相互作用最大,故選擇LM-2-Vpy組裝體系進(jìn)行差示紫外光譜分析,由于功能單體2-Vpy與LM以及其主客體復(fù)合物最大吸收波長(zhǎng)在206 nm波長(zhǎng)處,參照文獻(xiàn)[24],LM與功能單體反應(yīng)公式可以推導(dǎo)整理為式(4):

      式中:n為L(zhǎng)M和功能單體2-Vpy的結(jié)合比例(n=1,2,3,…);b0為2-Vpy的濃度;a0為L(zhǎng)M的濃度;ΔA為L(zhǎng)M與LM-2-Vpy混合物的紫外吸光度差值;K為反應(yīng)平衡常數(shù)。Δε為復(fù)合物與功能單體的摩爾吸光系數(shù)差值;Ι為比色皿厚度。

      以ΔA/bn0對(duì)ΔA作圖,可以推導(dǎo)出n值,從而得知在乙腈溶液中LM與功能單體的作用模式,進(jìn)而揭示分子印跡作用機(jī)理。以ΔA/bn0對(duì)ΔA作圖發(fā)現(xiàn),物質(zhì)的量比為1∶1、1∶2時(shí)并沒(méi)有出現(xiàn)很好的線(xiàn)性關(guān)系,這是由于推導(dǎo)反應(yīng)公式的假設(shè)條件為b0遠(yuǎn)大于a0,即功能單體加入量遠(yuǎn)大于LM,這2 種濃度并不滿(mǎn)足上述假設(shè)條件。因此作線(xiàn)性關(guān)系圖時(shí)舍棄這2 種比例。

      從圖4可以看出,當(dāng)n為3時(shí),ΔA/bn0對(duì)ΔA作圖可以擬合成一條直線(xiàn)(R2=0.963);當(dāng)n為4時(shí),ΔA/bn0對(duì)ΔA作圖也可以擬合成一條直線(xiàn)(R2=0.974),這說(shuō)明在研究的濃度范圍內(nèi)主客體主要存在形式為1 個(gè)LM與3 個(gè)或者4 個(gè)2-Vpy分子發(fā)生作用,即1 個(gè)LM周?chē)辽傩枰? 個(gè)2-Vpy功能單體才能形成穩(wěn)定的復(fù)合物[25]。

      圖4 206 nm波長(zhǎng)處ΔA/bn0對(duì)ΔA的關(guān)系圖Fig. 4 Plots of ΔA/bn0 versus ΔA at 206 nm

      2.2 不同制備條件對(duì)MIPs的分子印跡效果的影響

      由表2可知,MIPs 1、MIPs 2、MIPs 3對(duì)NTCZB的吸附量的大小關(guān)系為MIPs 3>MIPs 2>MIPs l,其特異性吸附效果也呈此趨勢(shì),即α3>α2>α1。說(shuō)明以2-Vpy為功能單體時(shí),MIPs 3對(duì)NTCZB的印跡效果最好,這與功能單體和LM的紫外光譜分析的結(jié)果吻合。

      MIPs 3~MIPs 7對(duì)NTCZB的吸附量的大小為MIPs 7>MIPs 6>MIPs 3>MIPs 5>MIPs 4,其特異性吸附效果為α3>α5>α6>α4>α7,說(shuō)明替代模板與2-Vpy物質(zhì)的量比為1∶4時(shí)MIPs的印跡效果最好,這與紫外光譜分析研究LM和功能單體相互作用的結(jié)果吻合。

      MIPs 8~MIPs 11和MIPs 3對(duì)NTCZB的吸附量的大小關(guān)系為MIPs 9>MIPs 3>MIPs 10>MIPs 11>MIPs 8,其特異性吸附效果為α9>α3>α8>α10>α11,隨著交聯(lián)劑用量增大,吸附量先增大而后減少,非特異性吸附一直增大,這是因?yàn)榻宦?lián)劑過(guò)量時(shí),易發(fā)生自聚,使所得聚合物內(nèi)的非特異性吸附位點(diǎn)增多,從而造成非特異性吸附量增大[26],因此實(shí)驗(yàn)選擇功能單體和交聯(lián)劑物質(zhì)的量比為2-Vpy與EDMA 4∶20。

      MIPs 9、MIPs 12和MIPs 13的實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,MIPs 9對(duì)NTCZB的吸附量和特異性吸附效果最好,這是由于溶劑用量較小時(shí),溶液中各組分濃度較大,這會(huì)使功能單體復(fù)合物被網(wǎng)絡(luò)包裹的程度過(guò)于致密,致孔劑不能充分進(jìn)入聚合物網(wǎng)絡(luò)形成大孔結(jié)構(gòu);溶劑的用量較大時(shí),反應(yīng)溶液濃度較低,自由基引發(fā)聚合反應(yīng)速度減慢,延長(zhǎng)了聚合反應(yīng)的時(shí)間[17]。MIPs 9、MIPs 14和MIPs 15的結(jié)果表明,其他條件相同時(shí),溫度A條件下制備的MIPs 9對(duì)NTCZB的印跡效果最好。

      MIPs 9、MIPs 16對(duì)NTCZB的吸附量的大小關(guān)系為MIPs 9>MIPs 16,其特異因子α也呈此趨勢(shì),即MIPs 9的印跡效果優(yōu)于MIPs 16,這是因?yàn)榫酆戏磻?yīng)制備MIPs的過(guò)程中,NTCZB上的碳碳雙鍵容易與交聯(lián)劑發(fā)生共價(jià)鍵化學(xué)反應(yīng)而形成大分子結(jié)構(gòu),使NTCZB沒(méi)有被洗脫完全,從而造成NTCZB的再吸附時(shí)印跡孔穴的浪費(fèi)和印跡位點(diǎn)利用率不高[9]。

      綜上所述,MIPs 9樣品的分子印跡效果最好,在上述條件下對(duì)制備MIPs 9進(jìn)行紅外表征和吸附性能實(shí)驗(yàn)研究。

      表2 不同制備條件的MIPs的分子印跡效果Table 2 Imprinting effect of MIPs prepared under different conditions

      2.3 MIPs 9對(duì)NTCZB印跡前后的紅外光譜分析

      由圖5可知,3 條曲線(xiàn)的出峰位置很相近,但仍存在很多差異,洗脫前MIPs 9、洗脫后MIPs 9、NIPs 9在2 965 cm-1附近的雙峰是功能單體2-Vpy中吡啶環(huán)上的C—H伸縮振動(dòng)峰,洗脫前MIPs 9在此處的峰形明顯區(qū)別于洗脫后MIPs 9和NIPs 9,這是因?yàn)長(zhǎng)M上的酰基與2-Vpy發(fā)生相互作用,形成氫鍵而締合于MIPs上,洗脫前MIPs 9在1 540 cm-1處和1 635 cm-1處比洗脫后MIPs 9和NIPs 9的強(qiáng)度弱,這主要是LM上的仲酰胺N—H和C=O反式存在的吸收峰產(chǎn)生[27],洗脫前MIPs 9在2 853 cm-1處的峰是LM上的飽和C—H伸縮振動(dòng),洗脫前MIPs 9與洗脫后MIPs 9、NIPs 9的這些差異說(shuō)明LM已經(jīng)通過(guò)氫鍵結(jié)合在了MIPs上[28];洗脫后MIPs 9和NIPs 9幾乎沒(méi)有差別,這說(shuō)明LM已經(jīng)完全被洗脫下來(lái)[29-30]。

      圖5 MIPs 9和NIPs 9的紅外光譜圖Fig. 5 IR spectra of non-imprinted polymers and molecularly imprinted polymers

      2.4 MIPs 9對(duì)花椒中NTCZB的分子印跡驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果

      圖6 花椒萃取液、甲醇洗脫液及NTCZB標(biāo)準(zhǔn)品的高效液相色譜圖Fig. 6 HPLC profiles of the extract of prickly ash, the methanol eluate and NTCZB standard

      由圖6可知,甲醇洗脫液與NTCZB標(biāo)準(zhǔn)品的峰形及出峰時(shí)間一致,可確證分離純化出的物質(zhì)主要成分是NTCZB;花椒萃取液中NTCZB的峰面積占總峰面積的(72.65±1.27)%,MIPs 9的甲醇洗脫液中NTCZB占總峰面積的(94.60±1.52)%,NTCZB占總峰面積的比例提高了約21.95%;同時(shí),高效液相色譜檢測(cè)到濃縮的甲醇洗脫液中NTCZB質(zhì)量濃度為(34.2±3.1)μg/mL,經(jīng)計(jì)算MIPs 9對(duì)花椒的氯仿萃取液中NTCZB的吸附量為(14.64±0.80)mg/g。結(jié)果表明,MIPs 9對(duì)花椒萃取液中的NTCZB有較強(qiáng)的特異性吸附能力[31]。

      3 結(jié) 論

      取LM 0.25 mmol,以2-Vpy為功能單體,LM、功能單體、交聯(lián)劑物質(zhì)的量比為1∶4∶20,乙腈12 mL,AIBN 10 mg,在50 ℃恒溫水浴聚合4 h后再在60 ℃恒溫水浴聚合20 h,該條件下合成的MIPs對(duì)NTCZB具有較好的特異性吸附效果;在該條件下制備的MIPs可以吸附花椒萃取液中的NTCZB,吸附量達(dá)到(14.64±0.80)mg/g。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:分子印跡技術(shù)可以應(yīng)用于NTCZB標(biāo)準(zhǔn)品的分離純化。采用LM能夠制備出對(duì)NTCZB具有較強(qiáng)印跡效果的MIPs。本研究為具有該分子結(jié)構(gòu)特點(diǎn)物質(zhì)的MIPs的制備提供了方法借鑒,同時(shí)也對(duì)NTCZB的研究和應(yīng)用具有借鑒價(jià)值。

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