陳亨德 褚武英 李玉瓏 許友卿 丁兆坤 鐘藝文 王利香 安曉玲
摘要:為了解克隆羅非魚(yú)SIRT1基因,并分析其在不同組織器官中的表達(dá)量和饑餓前后白肌和肝中的表達(dá)量,以期為研究羅非魚(yú)基因功能和代謝調(diào)控機(jī)制提供參考。采用逆轉(zhuǎn)錄PCR(RT-PCR)技術(shù)由羅非魚(yú)肌肉組織克隆獲得羅非魚(yú)SIRT1基因,并用生物信息學(xué)方法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(QRT-PCR)技術(shù)對(duì)SIRT1在羅非魚(yú)體內(nèi)表達(dá)進(jìn)行研究。結(jié)果顯示,SIRT1基因開(kāi)放閱讀框(ORF)為2 109 bp,共編碼702個(gè)氨基酸,具有保守的DUF、SIR2和TPP保守結(jié)構(gòu)域。進(jìn)化樹(shù)分析發(fā)現(xiàn),羅非魚(yú)與伯氏樸麗魚(yú)和紅麗魚(yú)的SIRT1首先成簇,說(shuō)明2個(gè)物種的親緣關(guān)系最接近。且SIRT1基因在所檢測(cè)的組織、器官中均有表達(dá),其中白肌、腸道中表達(dá)量最高,且差異顯著(P<0.05)。與饑餓組0 d相比,饑餓組7 d的白肌SIRT1基因mRNA的表達(dá)無(wú)明顯變化,而肝表達(dá)量卻顯著增加(P<0.05)。提示羅非魚(yú)SIRT1基因可作為信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)控機(jī)體糖代謝、脂肪代謝的候選基因之一。
關(guān)鍵詞:羅非魚(yú);SIRT1基因;實(shí)時(shí)定量PCR;饑餓;系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)
中圖分類(lèi)號(hào): S917.4文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2019)21-0103-04
收稿日期:2018-07-25
基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(編號(hào):31472256);湖南省長(zhǎng)沙市科技計(jì)劃重點(diǎn)項(xiàng)目(編號(hào):ZD1601003);湖南省長(zhǎng)沙市科技計(jì)劃一般項(xiàng)目(編號(hào):K1705044)。
作者簡(jiǎn)介:陳亨德(1993—),男,福建泉州人,碩士,研究方向?yàn)樗鷦?dòng)物營(yíng)養(yǎng)、生理生化和分子生物學(xué)。E-mail:335776526@qq.com。
通信作者:丁兆坤,博士,教授,研究方向?yàn)榄h(huán)境生物學(xué)、水生動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)、生理、生化和分子生物學(xué)。E-mail:zhaokun.ding@hotmail.com。
羅非魚(yú)是聯(lián)合國(guó)糧食及農(nóng)業(yè)組織(FAO)向全世界推廣的優(yōu)質(zhì)養(yǎng)殖魚(yú)類(lèi)品系,目前全球有近百個(gè)國(guó)家和地區(qū)進(jìn)行羅非魚(yú)的規(guī)?;斯ゐB(yǎng)殖,羅非魚(yú)同時(shí)也是我國(guó)農(nóng)業(yè)農(nóng)村部主要推廣的重要淡水養(yǎng)殖品種,我國(guó)羅非魚(yú)養(yǎng)殖產(chǎn)量在世界上高居榜首。尼羅羅非魚(yú)(Oreochromis niloticus)是羅非魚(yú)類(lèi)中的主要養(yǎng)殖品種,該魚(yú)的養(yǎng)殖性能極其優(yōu)越,具有生長(zhǎng)快、食性廣、抗病強(qiáng)、肉質(zhì)鮮美、富含谷氨酸和甘氨酸等特點(diǎn)[1],深受許多美食愛(ài)好者的喜愛(ài)。
沉默信息調(diào)節(jié)因子2同源蛋白1(silent mating type information regulation 2 homolog1,簡(jiǎn)稱(chēng)SIRT1)是一種依賴(lài)于煙酰胺腺嘌呤二核甘酸(NAD+)的組蛋白去乙酰化酶[2],于1999年從人類(lèi)中發(fā)現(xiàn)[3]。SIRT1能夠廣泛表達(dá)于成熟組織,在胚胎早期和生殖細(xì)胞中含量也較高[4]。哺乳動(dòng)物中Sirtuins家族共有7名成員(SIRT1~SIRT7)[3],其中SIRT1與沉默信息調(diào)節(jié)因子2的同源性最高[5],是Sirtuins家族中目前研究得最為廣泛的1名成員。SIRT1在機(jī)體內(nèi)可通過(guò)對(duì)幾種控制代謝轉(zhuǎn)錄因子的去乙?;饔脕?lái)調(diào)節(jié)其活性,廣泛參與機(jī)體的糖代謝和脂肪代謝通路,還參與基因轉(zhuǎn)錄、細(xì)胞衰老的調(diào)節(jié)過(guò)程[6]。SIRT1還可抑制成脂肪分化因子PPARγ的轉(zhuǎn)錄因子活性,減少脂肪的合成與堆積[7]。同時(shí)能夠使FOXO1、STAT3等去乙?;龠M(jìn)糖異生而抑制糖酵解[8-9]。SIRT1還可以通過(guò)環(huán)磷腺苷效應(yīng)元件結(jié)合蛋白(cAMP-response element binding protein,簡(jiǎn)稱(chēng)CREB),調(diào)節(jié)糖脂代謝[10]。目前對(duì)SIRT1基因的研究主要還是集中在人類(lèi)、小鼠、家畜與家禽(豬、羊、雞等)上,對(duì)魚(yú)類(lèi)SIRT1基因的相關(guān)研究還鮮有報(bào)道。本研究探討羅非魚(yú)SIRT1 mRNA在不同組織器官中的規(guī)律性表達(dá),目的是為今后羅非魚(yú)SIRT1基因的相關(guān)研究提供理論依據(jù)。
1材料與方法
1.1試驗(yàn)材料
試驗(yàn)用魚(yú)是新鮮健康的成年羅非魚(yú),體質(zhì)量約為(500±10) g,于2018年3月采自湖南省水產(chǎn)科學(xué)研究所。分別解剖正常組0 d和饑餓組7 d試驗(yàn)魚(yú),采集白肌、紅肌、肝、腦、脾、腎、腸道和心臟8個(gè)新鮮的組織器官,放入已滅菌的1.5 mL 離心管中,立即轉(zhuǎn)存于液氮罐中運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室,移置于-80 ℃冰柜中保存,用于總RNA提取和基因克隆。所用各種試劑、消耗品和容器均用高壓滅菌鍋處理,解剖工具和研磨器具經(jīng)160 ℃烘烤6 h,滅活RNA酶。
1.2試驗(yàn)方法
1.2.1羅非魚(yú)SIRT1基因的克隆
用Trizol Reagent試劑盒,并根據(jù)Trizol Reagent試劑盒使用說(shuō)明書(shū)從成年羅非魚(yú)各組織器官中分別提取總RNA。將提取的羅非魚(yú)不同組織器官的總RNA稀釋后測(cè)定其D260 nm/D280 nm和濃度(ng/μL),并用1.5%瓊脂糖凝膠電泳對(duì)提取的RNA進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)其純度和完整性。采用寶生物工程(大連)有限公司提供的cDNA合成試劑盒,并按試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄合成cDNA第1鏈。
1.2.2內(nèi)參基因的選擇及引物設(shè)計(jì)
從GenBank中下載其他魚(yú)類(lèi)的SIRT1基因全序列,用DNAStar比對(duì)進(jìn)行保守性分析。并運(yùn)用Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)羅非魚(yú)內(nèi)參基因和目的基因的引物序列(表1),送生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行合成,合成后再1次對(duì)所有引物進(jìn)行驗(yàn)證。
1.2.3羅非魚(yú)SIRT1基因片段的克隆與序列測(cè)定
以cDNA為模板進(jìn)行RT-PCR克隆,將擴(kuò)增的DNA片段經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),分析其純度。然后采用Omega純化試劑盒割膠回收,用TaKaRa公司的pMD19-T載體試劑盒,并按說(shuō)明書(shū)連接過(guò)夜,再將得到的連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞中,取50 μL 轉(zhuǎn)化產(chǎn)物涂板,37 ℃正置1 h后倒置過(guò)夜培養(yǎng),挑取白色單菌斑培養(yǎng),菌液經(jīng)過(guò)PCR擴(kuò)增,電泳分析確定插入片段是否正確。對(duì)于篩選出的陽(yáng)性菌,克隆提取質(zhì)粒送上海博尚生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司測(cè)序,測(cè)序結(jié)果經(jīng)模板比對(duì)以及National Center for Biotechnology Information(NCBI)數(shù)據(jù)庫(kù)中Basic Local Alignment Search Tool(BLAST)檢索,確定為目的基因片段后,使用DNAstar軟件進(jìn)行序列拼接。
1.2.4實(shí)時(shí)熒光定量PCR
本試驗(yàn)采用SYBR GreenⅠ染料法,在QRT-PCR儀(博樂(lè)公司CFX96TM型號(hào))上進(jìn)行擴(kuò)增和數(shù)據(jù)分析。以最小的CT值和最高的熒光值為標(biāo)準(zhǔn),分別對(duì)引物的濃度、循環(huán)的條件、退火溫度等試驗(yàn)流程進(jìn)行優(yōu)化。擴(kuò)增二步法反應(yīng)程序如下:95 ℃ 30 s預(yù)變性;95 ℃ 5 s變性,58 ℃ 25 s退火、延伸,循環(huán)40次;繪制熔解曲線(xiàn);65~95 ℃,每0.5 ℃讀板1次。
1.3數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析
實(shí)時(shí)熒光定量PCR后,根據(jù)收集到的目的基因與內(nèi)參基因的CT值,運(yùn)用2-ΔΔCT方法[11]計(jì)算出目的基因的相對(duì)表達(dá)量。運(yùn)用SPSS 20.0軟件中的一般線(xiàn)性模型(GLM)對(duì)SIRT1基因的相對(duì)表達(dá)量進(jìn)行單因素方差分析,采用最小顯著差數(shù)法(LSD)進(jìn)行多重比較,并用SigmaPlot 12.0軟件對(duì)處理完成的數(shù)據(jù)作羅非魚(yú)SIRT1基因的相對(duì)表達(dá)柱狀圖。所有結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(X±SD)表示。P<0.05為有顯著差異。
2結(jié)果與分析
2.1羅非魚(yú)SIRT1基因的生物信息學(xué)分析
SIRT1基因編碼區(qū)為2 109 bp(GenBank登錄號(hào):MH229477),編碼702個(gè)氨基酸,推導(dǎo)的SIRT1蛋白相對(duì)分子量為76 571.30 u,等電點(diǎn)為4.64。用“http://www.molbiol-tools.ca/Motifs.htm”網(wǎng)站上的在線(xiàn)軟件進(jìn)行氨基酸結(jié)構(gòu)域分析,可知SIRT1基因具有保守的DUF、SIR2和TPP結(jié)構(gòu)域(圖1)。
2.2氨基酸序列比對(duì)和系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)構(gòu)建
從NCBI網(wǎng)站上收集到不同物種SIRT1基因的氨基酸序列(表2),然后利用Bio Edit和MEGA 7.0軟件分別進(jìn)行氨基酸序列的比對(duì)及SIRT1基因的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)構(gòu)建(圖2)。
圖2的進(jìn)化樹(shù)分析表明,羅非魚(yú)SIRT1與伯氏樸麗魚(yú)和紅麗魚(yú)的SIRT1首先成簇,三者同源性高達(dá)98%,說(shuō)明2個(gè)物種的親緣關(guān)系最為接近。魚(yú)類(lèi)SIRT1與哺乳類(lèi)、鳥(niǎo)類(lèi)、昆蟲(chóng)類(lèi)及人的同源性存在一定的差異,其原因可能是所含的蛋白質(zhì)種類(lèi)和構(gòu)型差異較大所致。由分析樹(shù)可以看出,即使同為魚(yú)類(lèi)的孔雀魚(yú)和白斑狗魚(yú),即低等魚(yú)類(lèi)和高等魚(yú)類(lèi)之間氨基酸肽鏈長(zhǎng)度和空間構(gòu)型仍有巨大的差別。
2.3不同組織中SIRT1 mRNA表達(dá)量分析
采用QRT-PCR檢測(cè)羅非魚(yú)的白肌、紅肌、肝、脾、腎、腸道、腦和心臟組織/器官中SIRT1基因mRNA的表達(dá)量,表達(dá)結(jié)果(圖3)顯示,SIRT1基因在白肌和腸道組織中的表達(dá)量最高,在腦組織中也有較高表達(dá),但在肝、脾、腎等組織中的表達(dá)量相對(duì)較弱,表明SIRT1在羅非魚(yú)的不同組織器官中表達(dá)差異較大,具有較強(qiáng)的組織器官特異性。
2.4饑餓7 d羅非魚(yú)白肌和肝SIRT1基因mRNA表達(dá)量
在饑餓狀況下,肌肉和肝在機(jī)體能量調(diào)節(jié)中發(fā)揮十分重要的作用。經(jīng)過(guò)7 d饑餓的羅非魚(yú)(饑餓組),與饑餓0 d的羅非魚(yú)相比較,饑餓組羅非魚(yú)的白肌和肝SIRT1 mRNA表達(dá)量均有增加,且在肝中的表達(dá)量顯著上升(P<0.05)(圖4),說(shuō)明在饑餓環(huán)境中,羅非魚(yú)SIRT1基因與機(jī)體的脂肪代謝及能量代謝有密切關(guān)系。
3討論
本研究采用RT-PCR技術(shù)克隆得到羅非魚(yú)SIRT1基因的完整開(kāi)放閱讀框(ORF)區(qū)序列為2 109 bp,具有保守的DUF、SIR2和TPP結(jié)構(gòu)域,其蛋白相對(duì)分子量為76 571.30 u,等電點(diǎn)為4.64,共編碼702個(gè)氨基酸。本研究利用Bio Edit和MEGA 7.0軟件分別進(jìn)行氨基酸序列的比對(duì)及構(gòu)建SIRT1基因的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)模型,用作建樹(shù)的18個(gè)物種分屬于硬骨魚(yú)綱、昆蟲(chóng)綱、鳥(niǎo)綱以及哺乳綱4大類(lèi)群。構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)表明,羅非魚(yú)SIRT1與伯氏樸麗魚(yú)和紅麗魚(yú)的SIRT1首先成簇,表示2個(gè)物種間的親緣關(guān)系較近。魚(yú)類(lèi)SIRT1與哺乳類(lèi)、鳥(niǎo)類(lèi)、昆蟲(chóng)類(lèi)以及人的同源存在一定的差異,其原因可能是所含的蛋白質(zhì)種類(lèi)和構(gòu)型差異較大。即使同為魚(yú)類(lèi),如孔雀魚(yú)和白斑狗魚(yú),低等魚(yú)類(lèi)和高等魚(yú)類(lèi)之間的氨基酸肽鏈長(zhǎng)度和空間構(gòu)型仍有一定的差距,推測(cè)SIRT1基因的氨基酸肽鏈長(zhǎng)度和空間結(jié)構(gòu)可能與肌肉發(fā)育和進(jìn)化的程度有關(guān)。
羅非魚(yú)SIRT1基因mRNA表達(dá)量在所檢測(cè)的各組織器官中均有表達(dá),在白肌和腸道組織中表達(dá)量最高,在腦組織也有較高的表達(dá),說(shuō)明羅非魚(yú)SIRT1基因的表達(dá)具有較強(qiáng)的組織特異性。研究發(fā)現(xiàn),SIRT1定位于小鼠下丘腦的禁食區(qū),能通過(guò)抑制脂肪細(xì)胞基因和FOXO1的表達(dá),影響脂質(zhì)代謝[12-15]。Bai等在對(duì)豬的研究中也發(fā)現(xiàn),SIRT1基因的表達(dá)量與脂肪代謝存在密切的相關(guān)性[16-17]。潘洋洋等在SIRT1基因?qū)d羊不同組織器官影響的差異性研究中發(fā)現(xiàn),綿羊SIRT1基因在肌肉組織中具有較高表達(dá)[18]。羅非魚(yú)SIRT1基因在白肌組織和腸道組織中的表達(dá)量最高的原因可能是SIRT1基因廣泛參與羅非魚(yú)的能量代謝的調(diào)節(jié)作用,但目前還沒(méi)有相關(guān)研究能夠證實(shí)這一點(diǎn),需要進(jìn)一步分析研究。
肝臟作為主要糖脂代謝器官,能夠影響機(jī)體營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)分解吸收和激素信號(hào)的傳遞,在機(jī)體中發(fā)揮著巨大作用。研究發(fā)現(xiàn),在短期禁食條件下,SIRT1可以抑制糖異生關(guān)鍵因子TORC2,影響血糖濃度。而在長(zhǎng)期禁食條件下,SIRT1去乙?;⒓せ頟GC1-α和PPARα,促進(jìn)脂肪酸的氧化并改善葡萄糖的穩(wěn)態(tài)[19]。在對(duì)人體肝細(xì)胞的研究中發(fā)現(xiàn),生理?xiàng)l件下PGC-1α上賴(lài)氨酸殘基會(huì)在SIRT1的作用下發(fā)生去乙酰化,將PGC-1α激活,從而有效抑制糖酵解,促進(jìn)了肝葡萄糖的輸出[20-21]。PPARγ通過(guò)促進(jìn)成纖維細(xì)胞向脂肪細(xì)胞分化和脂肪酸合成可加快脂肪沉積,而PPAR-γ在SIRT1基因過(guò)表達(dá)的情況下發(fā)生轉(zhuǎn)錄抑制,抑制脂肪生成,促進(jìn)游離脂肪酸釋放及脂解作用的增加[7]。此外,SIRT1還能對(duì)膽固醇等進(jìn)行乙酰化并活化,從而對(duì)肝中的膽固醇通量進(jìn)行有效調(diào)節(jié)[22],進(jìn)一步證實(shí)了SIRT1基因表達(dá)與脂肪代謝存在相關(guān)性。本研究饑餓條件下也發(fā)現(xiàn),羅非魚(yú)SIRT1基因在肝中表達(dá)量顯著增加(P<0.05),可見(jiàn)SIRT1基因與機(jī)體的糖代謝和脂肪代謝聯(lián)系十分密切。因此推測(cè)SIRT1基因可作為信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)控機(jī)體糖代謝、脂肪代謝的候選基因之一,能夠通過(guò)多種通路途徑直接或間接調(diào)節(jié)羅非魚(yú)的脂質(zhì)代謝。
4結(jié)論
羅非魚(yú)的白肌、紅肌、肝、腦、脾、腎、腸道和心臟組織器官中SIRT1基因mRNA表達(dá)量的結(jié)果顯示出一定的規(guī)律性,且在白肌和腸道組織中表達(dá)量最高,推測(cè)SIRT1基因可能通過(guò)不同的信號(hào)通路,參與羅非魚(yú)能量代謝的調(diào)節(jié)。而且在饑餓處理下SIRT1基因mRNA的表達(dá)量在白肌中有所增加,在肝中顯著增加(P<0.05),表明羅非魚(yú)SIRT1基因可能與脂肪代謝活動(dòng)密切相關(guān),能夠通過(guò)多種通路途徑直接或間接調(diào)節(jié)羅非魚(yú)的能量代謝。
參考文獻(xiàn):
[1]郝淑賢,李來(lái)好,楊賢慶,等. 5種羅非魚(yú)營(yíng)養(yǎng)成分分析及評(píng)價(jià)[J]. 營(yíng)養(yǎng)學(xué)報(bào),2007,29(6):614-615,618.
[2]邵芳,郁建鋒,張燕萍,等. SIRT1基因的表達(dá)調(diào)控及對(duì)動(dòng)物脂類(lèi)代謝的功能[J]. 常熟理工學(xué)院學(xué)報(bào),2015,29(4):8-14.
[3]Frye R A. Characterization of five human cDNAs with homology to the yeast SIR2 gene:Sir2-like proteins (sirtuins) metabolize NAD and may have protein ADP-ribosyltransferaseactivity[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,1999,260(1):273-279.
[4]Mcburney M W,Yang X,Jardine K,et al. The mammalian SIR2α protein has a role in embryogenesis and gametogenesis[J]. Molecular and Cellular Biology,2003,23(1):38-54.
[5]李碧俠,趙芳,任守文,等. 去乙酰化酶SIRT1在豬不同組織中的表達(dá)規(guī)律性分析[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2012,43(11):1765-1768.
[6]Brunet A,Sweeney L B,Sturgill J F,et al. Stress-dependent regulation of FOXO transcription factors by the SIRT1 deacetylase[J]. Science,2004,303(5666):2011-2015.
[7]Picard F,Kurtev M,Chung N J,et al. Sirt1 promotes fat mobilization in white adipocytes by repressing PPAR-gamma[J]. Nature,2004,429(6993):771-776.
[8]Nie Y,Erion D M,Yuan Z,et al. STAT3 inhibition of gluconeogenesis is downregulated by SirT1[J]. Nature Cell Biology,2009,11(4):492.
[9]Frescas D,Valenti L,Accili D. Nuclear trapping of the forkhead transcription factor FoxO1 via Sirt-dependent deacetylation promotes expression of glucogeneticgenes[J]. Journal of Biological Chemistry,2005,280(21):20589-20595.
[10]Qiang L,Lin H V,Kim-Muller J Y,et al. Proatherogenic abnormalities of lipid metabolism in SirT1 transgenic mice are mediated through crebdeacetylation[J]. Cell Metabolism,2011,14(6):758-767.
[11]Livak K J,Schmittgen T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT Method[J]. Methods,2001,25(4):402-408.
[12]Finkel T,Deng C X,Mostoslavsky R. Recent progress in the biology and physiology of sirtuins[J]. Nature,2009,460(7255):587-591.
[13]Sasaki T,Kitamura T. Roles of FoxO1 and Sirt1 in the central regulation of food intake[J]. Endocrine Journal,2010,57(11):939-946.
[14]Chu W,Cheng J,Zhu X,et al. Identification and characterization of follistatin-related protein-1 involved in the regulation of Chinese perch skeletal muscle hyperplasia[J]. Current Molecular Medicine,2016,16(6):596-604.
[15]Cohen H Y,Miller C,Bitterman K J,et al. Calorie restriction promotes mammalian cell survival by inducing the SIRT1 deacetylase[J]. Science,2004,305(5682):390-392.
[16]Bai L,Pang W J,Yang Y J,et al. Modulation of Sirt1 by resveratrol and nicotinamide alters proliferation and differentiation of pig preadipocytes[J]. Molecular and Cellular Biochemistry,2008,307(1/2):129-140.
[17]Shan T Z,Ren Y,Wu T,et al. Regulatory role of Sirt1 on the gene expression of fatty acid-binding protein 3 in cultured porcine adipocytes[J]. Journal of Cellular Biochemistry,2009,107(5):984-991.
[18]潘洋洋,景炅婕,喬利英,等. SIRT1基因在綿羊不同組織器官中的差異性表達(dá)研究[J]. 山西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2015,35(2):113-118.
[19]Rodgers J T,Lerin C,Haas W,et al. Nutrient control of glucose homeostasis through a complex of PGC-1alpha and SIRT1[J]. Nature,2005,434(729):113-118.
[20]徐傳翀,尚文斌. SIRT1與代謝相關(guān)疾病的研究進(jìn)展[J]. 海南醫(yī)學(xué),2016,27(5):785-788.
[21]Gerhart‐Hines Z,Rodgers J T,Bare O,et al. Metabolic control of muscle mitochondrial function and fatty acid oxidation through SIRT1/PGC‐1α[J]. The EMBO Journal,2007,26(7):1913-1923.
[23]Tontonoz P,Hu E,Spiegelman B M. Stimulation of adipogenesis in fibroblasts by PPARγ2,a lipid-activated transcription factor[J]. Cell,1994,79(7):1147-1156.