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      沙門氏菌重組酶聚合酶檢測方法的建立及應(yīng)用

      2019-01-28 08:06:48劉立兵耿云云姜彥芬劉思穎孫曉霞南匯珠王建昌
      食品科學(xué) 2019年2期
      關(guān)鍵詞:食源性沙門氏菌特異性

      劉立兵,耿云云,姜彥芬,劉思穎,孫曉霞,南匯珠,王建昌,

      (1.河北出入境檢驗(yàn)檢疫局技術(shù)中心,河北 石家莊 050051;2.河北省檢驗(yàn)檢疫科學(xué)技術(shù)研究院,河北 石家莊 050051;3.河北師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河北 石家莊 050024)

      沙門氏菌(Salmonella)屬于腸道菌科細(xì)菌,兼性厭氧菌[1],是一種能夠?qū)е氯诵蠊不疾〉母锾m氏陰性桿菌。在世界各國都屬于常見的食源性致病菌,在細(xì)菌性食物中毒種類中,沙門氏菌引起的食物中毒事件常被列榜首[2-3]。沙門氏菌主要通過人和動物的消化道感染致病,潛伏期通常在4~8 h,引起嘔吐、發(fā)熱、腹瀉等癥狀,在從而引起食物中毒、慢性腸炎等疾??;在中國,由沙門氏菌導(dǎo)致食物中毒事件占全國食物中毒事件的40%~60%[4];在歐洲每年有16萬多人感染沙門氏菌,發(fā)病率約為0.035%[5];動物飼用了含有沙門氏菌的飼料,會引起雞白痢、豬霍亂等相應(yīng)的疾病,最終導(dǎo)致動物死亡[6]。因此,沙門氏菌一直是國內(nèi)外細(xì)菌學(xué)領(lǐng)域研究的重點(diǎn)。

      沙門氏菌廣泛存在于自然界,在常溫條件下就可繁殖生長,而且對營養(yǎng)條件的要求很低,在肉類、禽類、蔬菜,蛋類、豆制品中都檢測到沙門氏菌[7-8],其中生肉是沙門氏菌污染的主要食品[9]。目前,沙門氏菌的鑒定方法主要采用傳統(tǒng)的檢測方法[10],分離培養(yǎng)和VITEK全自動鑒定系統(tǒng),該方法檢測周期長,過程費(fèi)時費(fèi)力,而且菌落形態(tài)受樣品復(fù)雜程度影響較大,腸桿菌科細(xì)菌間的生化反應(yīng)多有交叉,在檢測特異性和敏感性方面有局限性[11]。隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,沙門氏菌的檢測方法也出現(xiàn)了聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)法[7,12]、實(shí)時熒光PCR法[13]、環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增法[14],這些方法在快速檢測和現(xiàn)場檢測方面有一定的局限性。重組酶聚合酶擴(kuò)增(recombinase polymerase amplification,RPA)是一種新型的等溫擴(kuò)增技術(shù)。該技術(shù)主要通過重組酶與引物結(jié)合形成的蛋白-DNA復(fù)合物,在雙鏈DNA中定位同源序列,發(fā)生鏈交換反應(yīng)形成并啟動DNA合成,對模板上的目標(biāo)區(qū)域進(jìn)行指數(shù)式擴(kuò)增。

      沙門氏菌的表面有很多外膜蛋白,這些蛋白與細(xì)菌進(jìn)入宿主上皮細(xì)胞的能力密切相關(guān)。有研究表明,沙門氏菌表面的侵襲蛋白(invasion protein,inv)起到關(guān)鍵性作用[15]。侵襲蛋白是由invA、invB、invC、invD和invE等基因編碼組成,invA為沙門氏菌的主要毒力因子,在沙門氏菌的致病過程中起到重要作用[15-16],基于invA基因設(shè)計的引物鑒定沙門氏菌,具有屬特異性[17]。本研究以invA基因序列為靶序列,設(shè)計特異性RPA引物,建立能夠快速有效檢測沙門氏菌的RPA等溫檢測方法。

      本研究建立的RPA等溫檢測方法操作簡單、反應(yīng)快速,能夠排除人為干擾、交叉污染等不可控因素對沙門氏菌檢測的影響;該方法對儀器設(shè)備要求低,不需要大型的儀器設(shè)備,適合于偏遠(yuǎn)不發(fā)達(dá)地區(qū)的實(shí)驗(yàn)室對沙門氏菌的檢測。同時,也為食源性致病的鑒定和檢測提供了一個新的方向。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 菌株

      本實(shí)驗(yàn)所用的菌株見表1。

      表1 實(shí)驗(yàn)用菌株信息Table1 Information about the strains used in this study

      1.1.2 材料與試劑

      蔬菜、禽類中都能檢測到沙門氏菌,而且生肉是沙門氏菌污染的主要食品[7-9],選取生活中常食用的雞肉、羊肉和西蘭花做為模擬樣品,由本實(shí)驗(yàn)室提供。

      Premix Ex Taq 寶生物工程(大連)有限公司;RAA試劑盒(基礎(chǔ)型) 浙江泰晶生物科技有限公司;DNA純化回收試劑盒、細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒天根生化科技(北京)有限公司;緩沖蛋白胨水(BPW)、沙門氏菌顯色培養(yǎng)基、營養(yǎng)肉湯 北京陸橋技術(shù)有限責(zé)任公司;引物及探針由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

      1.1.3 儀器與設(shè)備

      ABI 7500實(shí)時熒光PCR儀 美國ABI公司;DK-8D電熱恒溫水槽 上海一恒科技有限公司;NanoDrop 2000c核酸分析儀 美國Thermal公司;Fusion Fx5凝膠成像系統(tǒng) 法國Viber Lourmat公司;MIR253恒溫培養(yǎng)箱日本三洋公司。

      1.2 方法

      1.2.1 引物設(shè)計

      以沙門氏菌invA為靶基因,參考GeneBank上序列進(jìn)行比對,確定保守序列。設(shè)計RPA特異性引物,目的片段大小為200 bp,同時參照文獻(xiàn)[18]合成沙門氏菌實(shí)時熒光PCR的引物和探針。所有引物和探針由生工生物工程(上海)股份有限公司合成(表2)。

      表2 引物探針序列Table2 Primers and TaqMan probe sequences

      1.2.2 沙門氏菌的培養(yǎng)及基因組DNA提取

      將沙門氏菌(CICC22956)菌株接種到10 mL的營養(yǎng)肉湯中,恒溫培養(yǎng)箱37 ℃培養(yǎng)18 h,取菌液進(jìn)行斜面劃線接種至沙門氏菌顯色培養(yǎng)基中,37 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)18 h,傳代培養(yǎng)2 次,出現(xiàn)單菌落。

      取沙門氏菌純培養(yǎng)菌液1 mL加入到1.5 mL的離心管中,10 000 r/min 離心2 min,收集沉淀,將菌體沉淀按照細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒所述方法提取細(xì)菌DNA,立即使用或-20 ℃保存?zhèn)溆谩M瑫r使用NanoDrop 2000C超微量分光光度計測定濃度。

      1.2.3 RPA方法的建立

      使用R A A試劑盒(基礎(chǔ)型)配制單個反應(yīng)體系,其中10 μmol/L的RPA-F和RPA-R各2 μL,A Buffer 12.5 μL,模板1 μL,ddH2O 30 μL。將上述47.5 μL體系混勻后加入到裝有凍干酶制劑的反應(yīng)管中,用移液器上下吹打至完全溶解,向反應(yīng)管中加入2.5 μL B Buffer(280 mmol/L醋酸鎂),蓋緊后瞬時離心并渦旋后,放入38 ℃水浴鍋中反應(yīng)10、20、30 min和40 min。使用DNA純化試劑盒對RPA產(chǎn)物進(jìn)行純化,取5 μL產(chǎn)物進(jìn)行2%瓊脂糖凝膠電泳并在Fusion Fx5中觀察分析電泳結(jié)果。

      1.2.4 實(shí)時PCR方法

      按照文獻(xiàn)[18]配制沙門氏菌實(shí)時PCR體系。反應(yīng)體系:Premix Ex Taq 12.5 μL,10 μmol/L PCR-F和PCR-R各2 μL(終濃度為0.8 μmol/L),5 μmol/L PCR-Probe 0.9 μL(終濃度為0.18 μmol/L),模板1 μL,ddH2O 6.6 μL。將上述體系充分混勻后放入ABI7500實(shí)時熒光PCR儀中,反應(yīng)程序設(shè)置為:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃變性5 s,60 ℃延伸35 s,35 個循環(huán),60 ℃收集熒光信號。

      1.2.5 特異性和靈敏性實(shí)驗(yàn)

      根據(jù)1.2.3節(jié)建立的最佳反應(yīng)時間,以表1中所示菌株的DNA作為模板進(jìn)行RPA反應(yīng),確定RPA反應(yīng)的特異性。

      取1 mL純培養(yǎng)菌液提取的基因組DNA,進(jìn)行10 倍梯度稀釋,以1 μL為模板進(jìn)行RPA反應(yīng),確定該方法的靈敏性。同時與已建立的實(shí)時PCR方法的敏感性作比較。

      1.2.6 人工模擬污染樣品檢測

      挑取培養(yǎng)的沙門氏菌單菌落于1 mL滅菌的生理鹽水試管中,振蕩混勻30 s,麥?zhǔn)蠞岫葍x測定1.00 個麥?zhǔn)蠞岫?,用生理鹽水進(jìn)行10 倍梯度稀釋,選取10-5、10-6、10-7稀釋度的菌液200 μL涂于沙門氏菌顯色培養(yǎng)基上,并作3 個平行,用于計算純培養(yǎng)菌的初始濃度。

      取羊肉、雞肉和西蘭花樣品,經(jīng)GB 4789.4—2010《食品衛(wèi)生微生物學(xué)檢驗(yàn) 沙門氏菌檢驗(yàn)》驗(yàn)證3 份樣品沙門氏菌均為陰性,作為人工污染的樣品,進(jìn)行檢出限分析。選擇1~10、10~50、50~100 CFU范圍內(nèi)細(xì)菌分別添加到25 g羊肉、25 g雞肉和25 g西蘭花樣品中,再添加到225 mL沙門氏菌增菌肉湯中,37 ℃培養(yǎng),增菌6、8 h后分別取1 mL菌液參照1.2.2節(jié)進(jìn)行細(xì)菌DNA的提取,取1 μL作為模板進(jìn)行檢測。

      1.3 數(shù)據(jù)分析

      采用1.2.3節(jié)建立的RPA方法和1.2.4節(jié)實(shí)時PCR方法,同時檢測1.2.6節(jié)人工模擬污染樣品的核酸,通過對RPA片段和實(shí)時PCR擴(kuò)增曲線的分析,完成對不同樣品、不同污染量和不同增菌時間的人工模擬污染樣品的檢測。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 RPA反應(yīng)時間的優(yōu)化

      以1 mL菌液提取的DNA為模板,進(jìn)行RPA最佳反應(yīng)時間實(shí)驗(yàn),在200 bp處有一條特異性條帶(圖1),通過Bio1D軟件定量分析,劃定相同面積的擴(kuò)增條帶,進(jìn)行產(chǎn)物量對比分析,20 min RPA產(chǎn)物量接近10 min產(chǎn)物量的2 倍,而20 min產(chǎn)物量與30 min和40 min的產(chǎn)物量沒有顯著差異,所以本研究RPA的最佳反應(yīng)時間確定為20 min。

      圖1 沙門氏菌RPA檢測時間優(yōu)化結(jié)果Fig.1 Optimization of RPA reaction time for Salmonella detection

      2.2 特異性實(shí)驗(yàn)結(jié)果

      以沙門氏菌及表1中其他26 種食源性致病菌基因組DNA作為模板,進(jìn)行RPA反應(yīng),結(jié)果表明,只有沙門氏菌出現(xiàn)特異性擴(kuò)增條帶,其他細(xì)菌均在200 bp處無擴(kuò)增條帶,說明該方法具有良好的特異性,具體結(jié)果如圖2和表1所示。

      圖2 沙門氏菌RPA檢測特異性結(jié)果Fig.2 Specificity of RPA for Salmonella detection

      2.3 靈敏性實(shí)驗(yàn)結(jié)果

      提取1 mL沙門氏菌菌液的核酸,經(jīng)核酸分析儀測定質(zhì)量濃度為1.1×102ng/μL,將核酸進(jìn)行倍比稀釋至1.1×10-4ng/μL,分別進(jìn)行RPA反應(yīng)和實(shí)時PCR。結(jié)果表明,RPA反應(yīng)當(dāng)質(zhì)量濃度為1.1×10-3ng/μL時有擴(kuò)增條帶,當(dāng)質(zhì)量濃度為1.1×10-4ng/μL時,無任何擴(kuò)增條帶,由此確定RPA反應(yīng)的最低檢測限為1.1×10-3ng/μL; 實(shí)時PCR在質(zhì)量濃度為1.1×10-3ng/μL時檢測結(jié)果Ct值在31,當(dāng)質(zhì)量濃度為1.1×10-4ng/μL時檢測結(jié)果Ct值為35,無擴(kuò)增曲線。由此可見,RPA反應(yīng)和實(shí)時PCR的最低檢測限一致,都為1.1×10-3ng/μL(圖3)。

      圖3 沙門氏菌RPA和實(shí)時熒光PCR檢測方法的敏感性實(shí)驗(yàn)結(jié)果Fig.3 Sensitivities of RPA and real-time PCR for Salmonella detection

      2.4 人工模擬污染樣品檢測結(jié)果

      人工污染沙門氏菌的羊肉、雞肉和西蘭花樣品增菌后,RPA檢測結(jié)果表明,當(dāng)樣品污染量為4 CUF/25 g,接種時間為6 h,羊肉、雞肉和西蘭花均未檢出沙門氏菌,而當(dāng)接種時間為8 h時,樣品均檢出沙門氏菌;當(dāng)樣品污染量為14 CFU/25 g,接種時間為6、8 h,羊肉、雞肉和西蘭花均檢出沙門氏菌;當(dāng)樣品接種量為59 CFU/25 g,接種時間為6、8 h,所有樣品均檢出沙門氏菌。所有樣品與實(shí)時熒光PCR檢測結(jié)果一致,見表3。

      表3 人工污染樣品RPA檢測結(jié)果Table3 Detection of RPA in artificially contaminated samples

      3 討 論

      在我國,每年都會發(fā)生食源性致病菌中毒事件,沙門氏菌是引起人和動物食物中毒的重要感染源,沙門氏菌的檢測在食源性致病菌的檢測中處于非常重要的位置。目前,沙門氏菌的檢測普遍采用傳統(tǒng)的檢測方法,檢測周期在4~6 d之間,檢測周期長,操作復(fù)雜,需要經(jīng)驗(yàn)豐富的檢測人員,這些都不足以滿足市場的需求。近幾年,沙門氏菌的檢測也建立了很多分子生物學(xué)的方法,如,武曉松等[7]建立了沙門氏菌PCR檢測方法,并應(yīng)用到蔬菜中沙門氏菌的檢測;杜雄偉等[13]建立了實(shí)時熒光PCR檢測肉制品中的沙門氏菌的方法;高琳等[14]建立了交叉引物等溫擴(kuò)增法和環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增檢測沙門氏菌的方法。但在食源性致病菌的檢測方面,由于食品的成分復(fù)雜、食品中添加劑及培養(yǎng)基的成分復(fù)雜,都會對反應(yīng)的Taq酶的活性起到一定的抑制作用,影響反應(yīng)的擴(kuò)增效率。Jacobsen等[19]研究表明,熒光定量PCR不能有效區(qū)分死菌和活菌,所以熒光定量PCR方法不適用于檢測加熱致死的菌體的樣品;其次,這些檢測方法都需要昂貴的檢測儀器和專業(yè)的操作人員,且在快速檢測、現(xiàn)場檢測以及市場需求方面有一定的局限性。所以建立快速、精準(zhǔn)、滿足市場需求的檢測方法,對我國沙門氏菌的檢測非常重要。

      RPA作為一種新型的快速檢測技術(shù),已經(jīng)應(yīng)用到各個領(lǐng)域。在病毒檢測方面,Wang Jianchang等[20]建立了豬圓環(huán)2型病毒的RPA快速檢測方法,并應(yīng)用到臨床樣品的檢測;在轉(zhuǎn)基因方面,鄧婷婷等[21]應(yīng)用RPA檢測轉(zhuǎn)基因水稻中的Cry1Ab/c基因;在真菌方面,Ahmed等[22]應(yīng)用RPA技術(shù)檢測致病性鉤端螺旋體(pathogenic Leptospira);在細(xì)菌方面,Euler等[23]應(yīng)用RPA技術(shù)檢測兔熱病桿菌(Francisella tularensis)。在寄生蟲[24-26]、食品安全[27]、生物安全[28]和癌癥[29]等方面RPA技術(shù)都已經(jīng)有研究。RPA是一種等溫擴(kuò)增技術(shù),具有試劑易于保存、反應(yīng)時間較短、操作簡單等優(yōu)點(diǎn),并且對儀器設(shè)備要求較低,在水浴鍋、保溫杯,甚至手中即可進(jìn)行反應(yīng)[30],適合于食源性致病菌的檢測,也便于推廣到儀器設(shè)備比較匱乏的基層檢測機(jī)構(gòu)。

      沙門氏菌invA基因具有屬特異性,常作為沙門氏菌研究的靶基因,如Radhika等[31]根據(jù)invA基因設(shè)計了特異性檢測致病性沙門氏菌的引物,并在非沙門氏菌中沒有檢測到invA基因;龐心怡等[32]根據(jù)invA基因建立的LAMP檢測方法,比PCR方法的靈敏度高100 倍;魏瓊[33]根據(jù)沙門氏菌的invA基因,建立了沙門氏菌、志賀菌和金黃色葡萄球菌的三重?zé)晒舛縋CR。本實(shí)驗(yàn)選擇invA基因作為沙門氏菌檢測的靶基因,設(shè)計特異性引物,建立了沙門氏菌的RPA檢測方法,即38 ℃水浴鍋反應(yīng)20 min完成檢測,特異性強(qiáng),靈敏性達(dá)到1.1×10-3ng/μL。人工污染樣品結(jié)果表明,經(jīng)過8 h就可完成不同濃度沙門氏菌的檢測。與傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)方法、實(shí)時熒光PCR法及環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增方法相比,節(jié)約了成本、減少了反應(yīng)時間、縮短了檢測周期,RPA方法適合于食品中沙門氏菌的快速檢測。RPA檢測方法的建立,為食源性致病菌中沙門氏菌的檢測提供了新的技術(shù)方向,對我國食品安全監(jiān)控和進(jìn)出口食品的檢驗(yàn)具有重要意義。

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