趙磊,李希,袁建業(yè),林江,*
(1. 上海中醫(yī)藥大學(xué),上海 201203; 2. 上海中醫(yī)藥大學(xué)附屬龍華醫(yī)院消化科,上海 200032; 3. 上海中醫(yī)藥大學(xué)脾胃病研究所,上海 200032)
腸易激綜合征(irritable bowel syndrome,IBS)是一種常見的功能性腸病,主要表現(xiàn)為腹痛伴有排便習(xí)慣和大便性狀的改變,并缺少足以解釋其癥狀的腸道結(jié)構(gòu)改變和生化異常[1]。IBS的發(fā)病機(jī)制尚未完全明了。目前認(rèn)為,包括在生活早期遭受創(chuàng)傷[2]和恐懼、焦慮、緊張等負(fù)面心理因素[3]在內(nèi)的各種應(yīng)激作用于腦腸軸[4],可引起神經(jīng)、內(nèi)分泌、腸道動(dòng)力和內(nèi)臟敏感性的異常[5]。其中內(nèi)臟高敏感(visceral hypersensitivity,VH)是引起IBS臨床癥狀的重要病理生理機(jī)制之一[6]。因此,用應(yīng)激方法建立VH模型,對于進(jìn)一步探索IBS發(fā)病機(jī)制和研發(fā)治療IBS的藥物具有重要意義。但是,現(xiàn)有的應(yīng)激方法如避水、束縛、母嬰分離等,存在刺激可控性差、容易產(chǎn)生應(yīng)激耐受、個(gè)體差異大等缺陷,影響研究的結(jié)果。足底電擊是建立大鼠焦慮、抑郁模型常用的一種應(yīng)激刺激[7-8],具有可量化和穩(wěn)定的特點(diǎn)。而焦慮、抑郁也是引起VH的重要因素。因此,本研究嘗試采用足底電擊應(yīng)激法建立大鼠VH的模型,并與經(jīng)典的避水應(yīng)激法相比較,以期建立一種簡便而有效的VH造模方法,為相關(guān)研究提供更多的模型選擇。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
清潔級雌性SD大鼠24只,體重160 ~ 180 g,購于上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司【SCXK(滬)2017-0005】。大鼠飼養(yǎng)于上海中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心【SYXK(滬)2014-0008】,溫度20 ~ 26℃,濕度40% ~ 70%,自由進(jìn)水進(jìn)食,適應(yīng)性飼養(yǎng)3 d后開始造模實(shí)驗(yàn)。所有實(shí)驗(yàn)經(jīng)上海中醫(yī)藥大學(xué)倫理委員會(huì)審批【SZY201712005】,操作均符合實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理要求。
1.1.2 儀器和試劑
大鼠ELISA檢測試劑盒:促腎上腺皮質(zhì)激素釋放因子(corticotrophin-releasing factor,CRF),貨號mL037302;促腎上腺皮質(zhì)激素(adrenocorticotrophic hormone,ACTH),貨號mL002875;皮質(zhì)酮(corticosterone,CORT),貨號mL002893;五羥色胺(5-hydroxytryptamine,5-HT),貨號mL028308,均購自上海酶聯(lián)生物。避水應(yīng)激箱、恒壓電擊箱、壓力檢測氣囊均為自制。
將實(shí)驗(yàn)大鼠隨機(jī)分為正常對照(normal control,NC)組、足底電擊(foot shock stress,F(xiàn)SS)組和避水應(yīng)激(water avoidance stress,WAS)組,每組8只,合籠飼養(yǎng)。NC組大鼠每日放入足底電擊箱內(nèi)1 h,不予刺激。FSS組和WAS組分別置于足底電擊箱和避水應(yīng)激箱予以相應(yīng)刺激。
1.2.1 避水應(yīng)激
參考Bradesi等[9]文獻(xiàn)中的方法,裝置為避水應(yīng)激箱(45 cm × 25 cm × 25 cm),箱體中央設(shè)置一島型方臺(10 cm × 8 cm × 8 cm),箱體注入室溫水(25℃),水面距平臺表面下1 cm,大鼠放置于方臺上,每天1 h,連續(xù)10 d。
1.2.2 足底電擊
造模裝置為足底電擊箱,大小與避水應(yīng)激箱相同,在電擊箱底部平行鋪設(shè)直徑2.0 mm的不銹鋼絲,鋼絲長度超出箱底兩側(cè)各3.0 cm,鋼絲間隔0.5 cm,以大鼠足趾可同時(shí)接觸相鄰的至少2條鋼絲為準(zhǔn),絕緣固定。將不相鄰的鋼絲分別在兩端用導(dǎo)絲連接,一端串聯(lián)自復(fù)位開關(guān)(LA38按鈕式自鎖點(diǎn)動(dòng)開關(guān),深圳匯君科技有限公司),接入可控硅電子恒壓器(WBT.4000 W,上海穩(wěn)伏電器有限公司)負(fù)極,另一端串聯(lián)15 W白熾燈(E27型鎢絲燈,佛山電器照明股份有限公司,常溫電阻R1=100 Ω,發(fā)熱電阻R2=3200 Ω),接入恒壓器正極。將大鼠置于電擊箱中自由活動(dòng)1 h,后接通電源,施加足底電擊刺激。具體操作如下:刺激電壓為40 V,刺激頻率為20次/min,每次1 s,共5 min。為消除晝夜節(jié)律影響,刺激時(shí)間固定于每天8:00—10:00進(jìn)行,連續(xù)10 d。
1.2.3 排便量和糞便含水量檢測
造模期間隔日采集大鼠在應(yīng)激箱1 h內(nèi)的糞便,記錄顆粒數(shù)并稱重,質(zhì)量記為M1。然后置于70℃烘箱內(nèi)烘烤6 h,再次稱干重,質(zhì)量記為M2。糞便含水量計(jì)算公式為:
糞便含水量=(M1-M2)/M1×100%
1.2.4 直腸擴(kuò)張氣囊組裝
將8號兒童導(dǎo)尿管頂端剪除,在剪口處加熱使其鈍化,將定制的橡膠氣囊套于導(dǎo)尿管頂部,0號手術(shù)線扎緊。導(dǎo)尿管用三通閥與50 mL注射器和便攜式血壓計(jì)的導(dǎo)氣管相連,連接處嚴(yán)格密封。用注射器推注空氣,觀察記錄氣囊形變的壓力值為P0,注射器刻度值N0。
1.2.5 腹壁回縮反射(abdominal withdrawal reflex)測定
造模結(jié)束后第1天,大鼠禁食12 h,將直腸擴(kuò)張氣囊用石蠟油潤滑,輕柔插入肛門,末端距肛門約1 cm,用膠布將導(dǎo)尿管固定于鼠尾根部。將大鼠置入透明有機(jī)玻璃盒中,適應(yīng)10 min后,用注射器以2 mL/s速度向氣囊內(nèi)注氣。當(dāng)注射器刻度接近N0時(shí)推注速度降為0.5 mL/s,同時(shí)觀察大鼠腹壁。當(dāng)腹部肌肉收縮時(shí),標(biāo)記為疼痛壓力閾值。所得壓力值減去球囊形變壓力P0為真實(shí)壓力閾值。每只大鼠重復(fù)操作3次,每次操作間隔2 min,取平均值。
1.2.6 動(dòng)物取材
在造模第4天、第7天、第10天以及造模結(jié)束后第1天,待大鼠于造模箱內(nèi)應(yīng)激1 h后,分別抽取尾靜脈血0.5 mL置于1.5 mL離心管中。所有血液標(biāo)本4℃靜置過夜后,3000 r/min勻速離心15 min,取血清備用,用于血清CRF、ACTH、CORT、5-HT等檢測。造模結(jié)束后第1天尾靜脈取血后,用2%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉大鼠,頸椎脫臼處死。剖腹,剪取距肛門5 cm以上的結(jié)腸組織4 cm,沿腸系膜縱向剖開,用磷酸鹽緩沖液漂洗,分成2等分,一段置入4%甲醛溶液中固定,用于病理檢查;另一段稱量50 mg,勻漿后用于ELISA檢測腸組織5-HT。
造模期間各組大鼠毛發(fā)光澤濃密,飲食及體重增加穩(wěn)定。三組大鼠體重比較見表 1,差異無顯著性(P> 0.05)。NC組大鼠活動(dòng)自如,F(xiàn)SS組和WAS組大鼠受水環(huán)境和電擊應(yīng)激環(huán)境影響,均表現(xiàn)出精神緊張,活動(dòng)謹(jǐn)慎及異常排便等應(yīng)激行為。
表1 大鼠體重變化Table 1 Changes of body weight in the rats
注:三組間體重比較采用重復(fù)測量方差分析。
Note. Repeated measures. ANOVA is used to compare the changes of body weight among the three groups.
造模期間大鼠排便顆粒數(shù)和糞便含水量結(jié)果見表2和表3。FSS組和WAS組大鼠經(jīng)過應(yīng)激刺激后,排便量明顯增多,組間比較,差異有顯著性(P< 0.05)。NC組大鼠對應(yīng)激箱環(huán)境能較好地適應(yīng),糞便顆粒數(shù)穩(wěn)定,組內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)比較,差異無顯著性(P> 0.05)。WAS組組內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)比較,糞便顆粒數(shù)逐漸減少,差異有顯著性(P< 0.05),在相同時(shí)間點(diǎn)避水組與正常組比較,從第7天起排便量相當(dāng),差異無顯著性(P> 0.05)。FSS組排便顆粒數(shù)和糞便含水量增加明顯而穩(wěn)定,組內(nèi)比較差異無顯著性(P> 0.05),排便顆粒數(shù)在相同時(shí)間點(diǎn)與NC組和WAS組比較,差異有顯著性(P< 0.05)。WAS組因排便顆粒沾水,無法有效獲取糞便及測量其含水量。
表2 大鼠排便顆粒數(shù)比較Table 2 Comparison of the number of stool particles (n) in the rats
注:與正常對照組比較,*P< 0.05;與避水應(yīng)激組比較,#P< 0.05。(下表同)
Note. Compared with the NC group,*P< 0.05. Compared with the WAS group,#P< 0.05.(The same in the following tables.)
表3 大鼠糞便含水量(%)比較Table 3 Comparison of water content(%)in feces of the
造模結(jié)束后第1天,檢測大鼠直腸敏感性。用自制氣囊刺激直腸誘發(fā)腹壁回縮反射,記錄引起腹部肌肉收縮的氣囊壓力值,減去氣囊形變壓力P0,作為疼痛壓力閾值。結(jié)果FSS組與WAS組的大鼠疼痛閾值較正常組均明顯降低,差異有顯著性(120.0 ± 7.6 mmHgvs.160± 2.1 mmHg; 148.3 ± 11.7 mmHgvs. 160.2 ± 2.1 mmHg,P< 0.05),且FSS組比WAS組的降低更為明顯,存在顯著性差異 (120.0 ± 7.6 mmHgvs. 148.3 ± 11.7 mmHg,P< 0.05)。
大鼠經(jīng)過應(yīng)激刺激后,分別在第4天、第7天、第10天檢測其血清中CRF、ACTH及CORT激素濃度,結(jié)果見表4。WAS組和FSS組大鼠血清CRF、ACTH和CORT在造模第4、第7和第10天均較NC組明顯升高,差異有顯著性(P< 0.05)。WAS組大鼠血清CRF、ACTH、CORT濃度在第4天升高明顯,后逐漸降低,并從7 d起穩(wěn)定在一定水平,與第10天比較差異無顯著性(P> 0.05)。FSS組血清CRF、ACTH濃度逐漸升高,第7天起穩(wěn)定在較高濃度,與第10天比較,差異無顯著性(P> 0.05),但CORT濃度持續(xù)升高,第4天、第7天、第10天差異均有顯著性(P< 0.05)。
表4 大鼠血清CRF(pg/mL)、ACTH(pg/mL)和CORT(ng/mL)濃度比較Table 4 Comparison of serum concentrations of CRF, ACTH and CORT in the rats
造模結(jié)束后第1天,檢測大鼠血清和結(jié)腸組織中5-HT濃度,結(jié)果見表5。與NC組比較,F(xiàn)SS組和WAS組大鼠血清和組織5-HT濃度均明顯升高,差異有顯著性(P< 0.05)。FSS組5-HT濃度較WAS組升高明顯,差異有顯著性(P< 0.05)。
三組大鼠結(jié)腸黏膜HE染色均未見明顯結(jié)構(gòu)異常和炎性細(xì)胞浸潤,可排除模型動(dòng)物存在腸道炎癥和腸黏膜損傷。(見圖1)
組別Groups結(jié)腸Colon血清Serum對照組 NC10.1 ± 0.69.1 ± 0.4電擊組 FSS14.9 ± 0.5*#13.1 ± 0.5*#避水組 WAS13.7 ± 0.8*12.4 ± 0.4*
圖1 各組大鼠結(jié)腸黏膜組織切片(伊紅-蘇木素染色)Figure 1 Histopathological changes of colon tissue in different groups of the rats (HE staining)
應(yīng)激誘導(dǎo)法如避水應(yīng)激[10]、束縛應(yīng)激[11]、母嬰分離[12]等通過人為的生理或心理刺激,間接誘導(dǎo)出腸道痛閾降低等VH表現(xiàn)。這些造模方法所建立的VH模型符合應(yīng)激可以誘導(dǎo)或者加重VH癥狀的IBS病理生理機(jī)制,且所建立模型的腸道無病理性損傷,因此一直作為經(jīng)典的造模方法被應(yīng)用于IBS內(nèi)臟高敏感性的研究中[13-14]。但是這些應(yīng)激方法尚存在一些不足之處:如母嬰分離法,幼鼠在成年后體長和體重等均一性差,導(dǎo)致其內(nèi)臟敏感性也存在較大的差異;又如避水應(yīng)激法,隨著應(yīng)激延長,大鼠會(huì)對其產(chǎn)生耐受。還有研究采用不可預(yù)知性慢性應(yīng)激刺激干預(yù)大鼠,以求避免應(yīng)激耐受,但是實(shí)驗(yàn)過程復(fù)雜,可操作性低[15]。
本研究采用足底電擊作為應(yīng)激刺激構(gòu)建VH模型。將大鼠放置于特制的足底電擊箱內(nèi),大鼠足趾作為導(dǎo)體形成回路,電擊發(fā)生后大鼠跳起,電路瞬間斷開。如果大鼠不能躲避,則白熾燈亮起,燈絲發(fā)熱后電阻迅速增加,電擊籠內(nèi)電壓降至安全范圍,可使大鼠避免發(fā)生電擊損傷。實(shí)驗(yàn)中的電擊條件參照了有關(guān)文獻(xiàn)[7,16]的報(bào)道。在足底電擊造模期間大鼠足底皮膚微紅,1 h左右可恢復(fù)正常,無明顯皮損、腫脹等電擊傷,符合實(shí)驗(yàn)動(dòng)物福利的3R原則。在造模結(jié)束后檢測大鼠結(jié)腸黏膜并未出現(xiàn)病理損傷表現(xiàn)。本研究中內(nèi)臟敏感性的評價(jià)采取常用的直腸擴(kuò)張法[6]。造模結(jié)束后直腸擴(kuò)張刺激引發(fā)大鼠疼痛的壓力閾值明顯低于正常對照組。與經(jīng)典的避水應(yīng)激法相比,足底電擊法模型大鼠腸道疼痛壓力閾值降低存在更好的一致性,其指標(biāo)參數(shù)能更好地反映大鼠的VH。
本研究還觀察到,在避水應(yīng)激法造模中,部分大鼠多次落水后對溺水的恐懼感驟減,大鼠的排便數(shù)會(huì)隨造模天數(shù)的增加而逐漸減少。避水應(yīng)激法造模大鼠從第5天起排便粒數(shù)明顯減少,到第10天已接近于正常組。而足底電擊法造模大鼠3 d后可出現(xiàn)排便粒數(shù)增多和糞便含水量增加,明顯高于正常對照組,而且這一現(xiàn)象可穩(wěn)定持續(xù)到造模結(jié)束,更符合IBS大便性狀和排便習(xí)慣改變的臨床特點(diǎn)。
目前認(rèn)為,應(yīng)激引起的VH可能與下丘腦-垂體-腎上腺軸(hypothalamic-pituitary-adrenal axis,HPA)密切相關(guān)。大腦中樞接收應(yīng)激刺激信號,引起下丘腦分泌CRF,CRF通過垂體束的門脈系統(tǒng)進(jìn)入腦垂體前葉,引起ACTH的分泌,ACTH由血液循環(huán)運(yùn)送至腎上腺皮質(zhì),引起糖皮質(zhì)激素的釋放[17]。嚙齒類動(dòng)物的糖皮質(zhì)激素主要成分是CORT。有研究[ 18-19]表明CRF和CORT可分別激活中樞及外周的CRF受體和糖皮質(zhì)激素受體,直接引起VH。因此CRF、ACTH、CORT等可作為評價(jià)大鼠應(yīng)激水平的重要指標(biāo)。本研究在造模期間動(dòng)態(tài)檢測了各組大鼠血清中CRF、ACTH、CORT等指標(biāo),結(jié)果顯示避水和足底電擊兩種造模方法均可升高這些指標(biāo)的血清濃度。但避水組各指標(biāo)均一性較差,部分結(jié)果在造模結(jié)束時(shí)已接近正常值,提示大鼠對其應(yīng)激存在一定的耐受。電擊組各指標(biāo)的升高較避水組和正常對照組持久且穩(wěn)定,不存在應(yīng)激耐受現(xiàn)象。
5-HT是一種與VH形成密切相關(guān)的單胺類神經(jīng)遞質(zhì)。其約90%由腸嗜鉻細(xì)胞(enterochromaffin cells,EC)合成,并以旁分泌形式進(jìn)入腸黏膜中。5-HT既可激活腸道初級神經(jīng)元,引起腸道蠕動(dòng)和分泌活動(dòng)的增強(qiáng),也可興奮內(nèi)臟傳入神經(jīng),進(jìn)而引起下游降鈣素基因相關(guān)肽、P物質(zhì)等多種神經(jīng)活性物質(zhì)的釋放,使傳入中樞的化學(xué)信號異常,引起不適感受,在IBS內(nèi)臟高敏感性形成過程中發(fā)揮重要作用[20]。因此,5-HT也是目前研究IBS治療藥物的重要靶點(diǎn)之一[21]。本研究檢測了各組大鼠結(jié)腸和血清中5-HT濃度,發(fā)現(xiàn)模型大鼠結(jié)腸組織和血清中5-HT濃度明顯升高,且與內(nèi)臟敏感性升高一致,與目前已知的研究結(jié)果相吻合。應(yīng)激如何引起EC釋放5-HT仍未知。但已有研究[22]發(fā)現(xiàn),EC表面存在腎上腺素受體α2 A,激活后可引起5-HT的釋放。應(yīng)激是否通過增加腎上腺素的釋放,進(jìn)而刺激EC分泌5-HT,最終引起VH,可能是以后研究的新方向。
綜上所述,足底電擊具有很好的可控性,可成功誘導(dǎo)模型大鼠VH,模型參數(shù)均一性和穩(wěn)定性好,造模成功率高,不易出現(xiàn)應(yīng)激耐受,并可誘導(dǎo)大鼠排便量和糞便含水量的穩(wěn)定增加。該應(yīng)激造模法為研究應(yīng)激、VH和IBS之間的聯(lián)系提供了新的造模選擇。
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