王競(jìng)?cè)澹?王 洋*, 余政豪, 喬秀亭, 程鎮(zhèn)燕,崔 培, 王慶奎, 孫金輝,曹 鵬,白東清
(1.天津農(nóng)學(xué)院水產(chǎn)系,天津西青 300384;2.天津市寶坻區(qū)漁翁水產(chǎn)科技發(fā)展有限公司,天津?qū)氎?301800)
益生菌是指一類(lèi)可以直接飼喂動(dòng)物的有益活體或死的微生物。在水產(chǎn)動(dòng)物養(yǎng)殖過(guò)程中,益生菌可作為水產(chǎn)動(dòng)物飼料添加劑,或用于制備發(fā)酵飼料。目前,在水產(chǎn)養(yǎng)殖中應(yīng)用較廣的水產(chǎn)益生菌主要包括芽孢桿菌屬 (Bacillus)、酵母菌(Saccharomyces)和光合細(xì)菌(Photorophic bacterium)。 益生菌在對(duì)蝦養(yǎng)殖中的應(yīng)用非常廣泛 (朱金星等,2017),最主要的應(yīng)用方式為直接添加到飼料中(Azadis等,2005)。然而,蝦類(lèi)的消化道較短,飼料在體內(nèi)停留時(shí)間約2 h(李健等,1993)。因此,如果采用拌料投喂的方式添加益生菌,無(wú)法充分發(fā)揮其降解飼料大分子物質(zhì),提高消化吸收率的作用。研究表明,直接投喂芽孢桿菌僅能使斑節(jié)對(duì)蝦的飼料干物質(zhì)、蛋白質(zhì)、脂肪水解率增加不到2%(於葉兵等,2007)。相比之下,復(fù)合益生菌發(fā)酵后的飼料中大分子物質(zhì)轉(zhuǎn)化成小分子,如氨基酸等,可提升飼料的可消化性(胡紅偉等,2017)。同時(shí)益生菌發(fā)酵可以降低飼料原料中的抗?fàn)I養(yǎng)因子,提高對(duì)蝦腸道消化酶活性,還能產(chǎn)生抑菌物質(zhì),提高水產(chǎn)動(dòng)物抗病性(吳東,2015)。
研究證明,多株益生菌混合發(fā)酵效果優(yōu)于單一菌株(陳樹(shù)河等,2016)。因此本研究擬篩選適用于制備對(duì)蝦發(fā)酵飼料的益生芽孢桿菌復(fù)配組合,并對(duì)組合菌株的產(chǎn)酶活性進(jìn)行評(píng)價(jià),以初步優(yōu)化發(fā)酵對(duì)蝦飼料的條件。
1.1 試驗(yàn)菌株 益生芽孢桿菌菌株7株,保存于天津農(nóng)學(xué)院水產(chǎn)學(xué)院,使用前以LB液體培養(yǎng)基活化至活菌數(shù) 1×109~ 3×109cfu/mL。
1.2 試驗(yàn)試劑 磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、氫氧化鈉、三氯乙酸、無(wú)水碳酸鈉、L-酪氨酸、鹽酸、三水乙酸鈉、冰乙酸、羧甲基纖維素鈉、3,5-二硝基水楊酸、四水酒石酸鉀鈉、苯酚、無(wú)水亞硫酸鈉、無(wú)水葡萄糖、檸檬酸、蒸餾水、檸檬酸鈉、麥芽糖、酒石酸鉀鈉、干酪素等,均為國(guó)產(chǎn)分析純。
1.3 主要試驗(yàn)儀器 W-CJ-2FO潔凈工作臺(tái):蘇凈集團(tuán)蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;DK-98-11A電熱恒溫水浴鍋:天津市泰斯特儀器有限公司;SMLS-3780高壓蒸汽滅菌鍋:日本Sanyo公司;FA2104電子天平:上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司;UV-5500紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):上海元析儀器有限公司;SHP-250型微生物生化培養(yǎng)箱:上海三發(fā)科學(xué)儀器有限公司;YZB-GER 1841-2014高速冷凍離心機(jī):奧默飛世爾科技(中國(guó))有限公司。
1.4 LB培養(yǎng)基 按照張士偉等(2013)的方法制備LB種子培養(yǎng)基(固體培養(yǎng)基需加入細(xì)菌瓊脂粉1.5% ~2.0%),pH 7.0,121℃滅菌20 min后使用。
1.5 益生芽孢桿菌復(fù)配組合的篩選 根據(jù)表1,各菌株按照OD600值1∶1∶1比例組合,接種于LB培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)12 h后測(cè)定上清液酶活性。
表1 菌株組合情況表
蛋白酶活性的定量測(cè)定采用福林酚法 (中國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)委員會(huì),2009),淀粉酶活性的定量測(cè)定采用3,5-二硝基水楊酸法 (張龍翔等,1982),纖維素酶活性的定量測(cè)定采用DNS法 (楊海峰等,2014)。使用SPSS 16.0軟件進(jìn)行單因素方差分析(One-way ANOVA)。以三種酶活性的綜合響應(yīng)值作為評(píng)價(jià)指標(biāo),選取最優(yōu)組合。計(jì)算公式為:
響應(yīng)值=蛋白酶活性×50%+(淀粉酶活性+纖維素酶活性)×25%。
1.6 優(yōu)良芽孢桿菌復(fù)配組合發(fā)酵飼料 采用單因素優(yōu)化法,使用自封袋模擬發(fā)酵容器,分別控制加水量(0.8、1.0、1.3、1.5 mL/g 飼料)、接種量(0.1%、0.5%、1%、5%),置于 37℃恒溫箱發(fā)酵 24 h,對(duì)比飼料顆粒黏合狀態(tài),以確定發(fā)酵飼料的最適注水量;采用平板法進(jìn)行活菌計(jì)數(shù),以確定最適接種量;在最佳注水量和接種量條件下,分別發(fā)酵對(duì)蝦開(kāi)口餌料(南美白對(duì)蝦配合飼料-開(kāi)口料,唐山三發(fā)普林飼料有限公司)和對(duì)蝦成蝦飼料(通威南美白對(duì)蝦配合飼料-成蝦料,通威股份有限公司),發(fā)酵24 h后進(jìn)行活菌計(jì)數(shù),以確定適用的飼料種類(lèi);選用適宜飼料種類(lèi),向自封袋內(nèi)注入無(wú)菌空氣(10、20、30、40、50 mL/g 飼料)、適宜水量和接種量,發(fā)酵24 h后進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)以確定最適通氣量。
2.1 組合菌酶活性定量測(cè)定和響應(yīng)值結(jié)果 表2可知,在所測(cè)的9組芽孢桿菌組合菌中,組合8-Z所產(chǎn)蛋白酶活性明顯高于其他組合,達(dá)到(28.58±0.34)U/mL。復(fù)配菌株應(yīng)用于對(duì)蝦飼料或者制備發(fā)酵飼料過(guò)程中,產(chǎn)生的消化酶可以與水產(chǎn)動(dòng)物內(nèi)源酶相互補(bǔ)充,從而提高消化率(陽(yáng)艷林等,2017;仉明軍等,2013)。許多研究發(fā)現(xiàn),為水產(chǎn)動(dòng)物補(bǔ)充外源性消化酶,能夠提高水產(chǎn)動(dòng)物的飼料利用率。張娟娟等(2012)試驗(yàn)證明,在虹鱒魚(yú)的低魚(yú)粉飼料中添加蛋白酶,可提高其胃腸蛋白酶活性,進(jìn)而改善生長(zhǎng)性能。與其他報(bào)道相比,本研究中所測(cè)得的各菌株蛋白酶活性并不高,這可能與培養(yǎng)時(shí)間短(陳營(yíng)等,2004)以及培養(yǎng)基成分的差異有關(guān)。因此,本試驗(yàn)各菌株在LB培養(yǎng)基中僅培養(yǎng)12 h后測(cè)得的酶活性,并不能完全代表菌株在發(fā)酵飼料或者宿主腸道內(nèi)的產(chǎn)酶能力。
組合3-Z所產(chǎn)的淀粉酶活性較其他復(fù)配組合高,達(dá)到(5.8±0.34)U/mL。 其淀粉酶活性顯著高于其他報(bào)道,如經(jīng)紫外誘變育種得到的高產(chǎn)淀粉酶菌株,淀粉酶活性只達(dá)到2.264 U/mL(馬穎輝等,2011);游龍等(2018)測(cè)定的野生型芽孢桿菌,胞外淀粉酶活性最高為3.0 U/mL。表明本試驗(yàn)所篩選的芽孢桿菌產(chǎn)淀粉酶活性較高,更具研究和實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。有試驗(yàn)證明,芽孢桿菌的淀粉酶活性會(huì)隨溫度變化而發(fā)生改變,在0~40℃其淀粉酶活性隨溫度升高而上升,之后隨溫度升高而下降(高永生等,2011)。
表2 組合菌株蛋白酶、淀粉酶和纖維素酶酶活性定量和響應(yīng)值結(jié)果
菌株組合3-Z所產(chǎn)纖維素酶活性最高,達(dá)到(34.53±7.41)U/mL。 此結(jié)果高于屈二軍等(2008)經(jīng)過(guò)紫外誘變得到的高酶活枯草芽孢桿菌以及江國(guó)忠 (2010)所篩選的野生型高酶活枯草芽孢桿菌。在飼料中添加纖維素酶,可改善養(yǎng)殖動(dòng)物對(duì)粗纖維的利用率(張新武等,2002)。纖維素酶可以刺激內(nèi)源酶分泌,還可以與其他內(nèi)源酶共同作用,從而促進(jìn)動(dòng)物的消化和吸收(王仁華等,2011)。
2.2 優(yōu)選芽孢桿菌形態(tài) 7株菌均為革蘭氏陽(yáng)性桿菌,大小和長(zhǎng)短有菌株特異性,無(wú)特殊排列方式。
2.3 16S rDNA測(cè)序結(jié)果 測(cè)定上述優(yōu)選菌株的16S rDNA序列,通過(guò)與數(shù)據(jù)庫(kù)其他菌株的序列信息進(jìn)行比對(duì),得出鑒定結(jié)論:菌株8-D、4-D、9-D、3-D、7-D、5-D均為枯草芽孢桿菌;菌株2-D為地衣芽孢桿菌;菌株6-D為地衣形芽孢桿菌;菌株1-D為解淀粉芽孢桿菌。使用MEGA3.1軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),圖1為菌株2-D的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。
2.4 飼料發(fā)酵條件優(yōu)化
2.4.1 不同加水量發(fā)酵飼料形態(tài)觀察 通過(guò)觀察,加入0.8 mL蒸餾水的飼料(1 g)經(jīng)過(guò)24 h發(fā)酵后,飼料顆粒呈現(xiàn)較干燥狀態(tài),故不能充分發(fā)酵;而加水量1.3 mL和1.5 mL的兩組則呈現(xiàn)較為潮濕、易碎狀態(tài),會(huì)影響發(fā)酵后配合飼料在水中的穩(wěn)定性;加水量1.0 mL的飼料發(fā)酵24 h后呈現(xiàn)較為理想的狀態(tài)。
圖1 菌株2-D系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)
2.4.2 不同接種量發(fā)酵飼料的活菌數(shù) 由表3可知,接種芽孢桿菌組合8-Z的接種量為5%的飼料(成蝦飼料和開(kāi)口料)在發(fā)酵24 h后,所得的活菌數(shù)最高,其中成蝦飼料活菌數(shù)為9.47×108cfu/g,開(kāi)口料活菌數(shù)為4.33×108cfu/g。其次為接種量0.50%的飼料(成蝦飼料和開(kāi)口料),其中成蝦飼料的活菌計(jì)數(shù)結(jié)果為4.23×108cfu/g,開(kāi)口料的活菌計(jì)數(shù)結(jié)果為3.67×108cfu/g。出于對(duì)飼料成本和活菌數(shù)的綜合考慮,選擇接種量為0.50%作為芽孢桿菌組合菌8-Z的最適接種量。
表3 不同接種量發(fā)酵24 h后蝦開(kāi)口餌料和成蝦飼料活菌數(shù)cfu/g
2.4.3 不同通氣量發(fā)酵飼料的活菌數(shù) 如表4所示,通入空氣量為20 mL的飼料發(fā)酵后活菌數(shù)最高,為 6.48×108cfu/g。
表4 不同通氣量發(fā)酵24 h后成蝦飼料的活菌數(shù)cfu/g
適用于制備對(duì)蝦發(fā)酵飼料的益生芽孢桿菌組合為8-Z(包含解淀粉芽孢桿菌1-D,枯草芽孢桿菌3-D和枯草芽孢桿菌9-D)。制備對(duì)蝦發(fā)酵飼料的適宜參數(shù)為:加水量1 mL/g,接種量0.50%(0.5×107~ 1.5×107cfu/g),充氣量 20 mL/g,發(fā)酵24 h成蝦飼料的活菌數(shù)為6.48×108cfu/g。