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      串聯(lián)體結(jié)合血糖儀的便攜式傳感器檢測cfDNA

      2019-07-18 08:43:00周津王代芳鐘碧萍
      生物化工 2019年3期
      關(guān)鍵詞:血糖儀磁珠緩沖溶液

      周津,王代芳,鐘碧萍

      (福建生物工程職業(yè)技術(shù)學(xué)院,福建福州 350002)

      游離DNA(cfDNA)作為血液及體液中的腫瘤標(biāo)志物,對(duì)癌癥患者的早期診斷具有較高的應(yīng)用價(jià)值[1-2]。常規(guī)的cfDNA檢測方法[3-6]有放射性免疫分析法、聚合酶鏈反應(yīng)法、酶聯(lián)免疫吸附法、實(shí)時(shí)熒光定量PCR等,但這些方法有的檢測成本較高,有的方法復(fù)雜且需要特殊儀器,不適合大規(guī)模人群的初篩。DNA利用自組裝形成串聯(lián)體作為信號(hào)放大機(jī)制被廣泛關(guān)注[7-9]。血糖儀具有體積小便攜、檢測成本低、定量準(zhǔn)確、操作簡便等優(yōu)點(diǎn),是最成功的便攜式儀器[10]。本文以DNA串聯(lián)體作為信號(hào)放大系統(tǒng),血糖儀作為檢測器,構(gòu)建一種快速篩查腫瘤標(biāo)志物cfDNA的便攜式傳感器。

      1 材料與方法

      1.1 試劑與儀器

      蔗糖(阿爾法埃莎中國有限公司);Sulfo-SMCC,TCEP,蔗糖轉(zhuǎn)化酶和吐溫-20(西格瑪奧德里奇貿(mào)易有限公司);磷酸二氫鈉和磷酸氫二鈉(分析純,上海化學(xué)試劑公司);鏈霉親和素修飾的磁性納米粒子(SA-PMPs)(美國普洛麥格公司)。

      DNA均由上海生工生物技術(shù)有限公司合成及純化(中國上海),序列如下(從左到右:5’到3’):

      3’-生物素修飾的捕獲DNA:TGCAGCTCATGCC AAAAAAAAA- Biotin

      目標(biāo)DNA:GGCATGAGCTGCATGATGAGCTG

      3’-巰基修飾的信號(hào)DNA:TACTCCCCCAGGTGCC AGCTCATCA- SH

      附加探針AP:GCACCTGGGGGAGTATGATGAGCTG

      本實(shí)驗(yàn)用水為18.2 MΩ的超純水,所用緩沖溶液配制如下:(1)緩沖溶液A:0.1 M氯化鈉,pH為7.4的0.1 M磷酸鹽緩沖溶液, 0.05%的吐溫-20。(2)緩沖溶液B:0.1 M氯化鈉,pH為7.4的0.1 M磷酸鹽緩沖溶液。(3)1.0 M的蔗糖溶液用緩沖溶液A(pH=7.4)配制并儲(chǔ)存于4 ℃待用。

      Milli-Q超純水系統(tǒng)(Millipore,Bedford,USA);PHS-3C型精密酸度計(jì)(上海大普儀器有限公司);FINNPIPETTE 可調(diào)式移液器(上海熱電儀器有限公司);TGL-16 型臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(湘儀離心機(jī)儀器有限公司);羅氏羅康全血糖儀及其配套試紙Roche ACCU-CHEK?Active羅氏羅康全活力 2 型(德國羅氏診斷產(chǎn)品有限公司)。

      1.2 方法

      1.2.1 捕獲探針(CP-PMPs)的制備

      (1)移取0.6 mL濃度為1 mg/mL的修飾有鏈霉親和素的磁珠(SA-PMPs),用緩沖溶液B洗滌3次后重新溶解于0.6 mL的緩沖溶液B中。加入生物素修飾的捕獲DNA并將混合物置于搖床上室溫振蕩1 h。(2)用緩沖溶液B洗滌磁珠3次并溶解于適量緩沖溶液B中,即配制成終濃度為20 μM的捕獲探針母液(CP-PMPs)。由于鏈霉親和素和生物素之間具有強(qiáng)親和力的特異性結(jié)合作用[11],因此修飾有生物素的捕獲DNA能被固定結(jié)合在修飾有鏈霉親和素的磁珠SA-PMPs表面。(3)用磁鐵吸附混合溶液中捕獲DNA與SA-PMPs反應(yīng)所生成的磁珠復(fù)合物,并進(jìn)一步用緩沖溶液B洗滌此磁珠復(fù)合物3次。(4)將洗滌后的磁珠復(fù)合物重新分散于緩沖溶液B中并儲(chǔ)存于4 ℃待用。

      1.2.2 信號(hào)探針(SP-酶)的制備

      根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道的方法[12]合成蔗糖轉(zhuǎn)化酶標(biāo)記的信號(hào)探針(SP-invertase)。制備步驟簡述如下:首先移取30 μL濃度為100 μM的巰基修飾的信號(hào)DNA溶解于超純水中,再加入2 μL濃度為3 mM的TCEP和 20 μL pH=5.5、濃度為 10 mM 磷酸鹽緩沖溶液,將混合溶液在室溫下反應(yīng)1 h。最后,將反應(yīng)混合物用緩沖溶液A透析得到活化后巰基修飾的信號(hào)DNA。為了使蔗糖轉(zhuǎn)化酶共價(jià)鍵接到信號(hào)DNA上,移取800 μL濃度為10 mg/mL的蔗糖轉(zhuǎn)化酶溶液并稱取1 mg的Sulfo-SMCC同時(shí)加入到緩沖溶液B中,將其混合并渦旋5 min后,將混合物置于搖床上在室溫下振蕩1 h。隨后用離心機(jī)進(jìn)行離心分離,除去未溶解的Sulfo-SMCC。取上清液中用Sulfo-SMCC修飾后的蔗糖轉(zhuǎn)化酶溶液與上述活化后的信號(hào)DNA在室溫下混合孵化48 h。為了移去未反應(yīng)的信號(hào)DNA,將混合溶液用緩沖溶液A透析即得到純化后的信號(hào)探針(SP-invertase)。

      1.2.3 目標(biāo)物的檢測

      取適量信號(hào)探針(SP-invertase)、捕獲探針(CP-PMPs)和附加探針(AP)加入緩沖溶液B(pH=7.4)中,配成捕獲探針、信號(hào)探針和附加探針終濃度為4 μM、總體積為30 μL的測試溶液。在體系中,附加探針與信號(hào)探針首先自組裝形成長串的蔗糖轉(zhuǎn)化酶標(biāo)記的DNA串聯(lián)體,在沒有目標(biāo)DNA存在的條件下,串聯(lián)體不能結(jié)合到磁珠上,所檢測到的血糖儀信號(hào)極低,同時(shí)可以觀察到血糖試紙背面的比色窗口顏色沒有明顯的變化。當(dāng)體系中加入不同濃度的目標(biāo)DNA并在黑暗室溫條件下孵化1.5 h后,目標(biāo)DNA與信號(hào)探針與捕獲探針之間發(fā)生強(qiáng)有力的親和作用,形成具有穩(wěn)定的互補(bǔ)配對(duì)結(jié)構(gòu)。隨后,用磁鐵分離出體系中的磁珠-蔗糖轉(zhuǎn)化酶串聯(lián)體復(fù)合物。使用50 μL緩沖溶液B進(jìn)一步洗滌固定在磁珠表面的蔗糖轉(zhuǎn)化酶串聯(lián)體復(fù)合物3次,并將其最終溶解于10 μL的緩沖溶液B中。然后,向上述溶液中小心加入20 μL濃度為1.0 M的蔗糖溶液,并在45 ℃下孵化20 min。此時(shí),蔗糖轉(zhuǎn)化酶催化蔗糖水解生成葡萄糖并能被血糖儀檢測到。需要注意的是,在到達(dá)20 min時(shí)立即將測試溶液置于100 ℃水浴鍋中滅活。采集在加入目標(biāo)DNA前后血糖儀信號(hào)的變化數(shù)據(jù)用于定量分析。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 反應(yīng)時(shí)間對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS的影響

      考察了探針與目標(biāo)DNA的特異性結(jié)合時(shí)間(0~3 h)對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS的影響,結(jié)果如圖1所示。當(dāng)反應(yīng)1.5 h之后體系的ΔS趨于穩(wěn)定,故本實(shí)驗(yàn)選取反應(yīng)時(shí)間為1.5 h。

      圖1 兩種探針與目標(biāo)DNA特異性結(jié)合時(shí)間對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值的影響

      2.2 反應(yīng)溫度對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS的影響

      考察了酶催化反應(yīng)溫度(25~60 ℃)對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS的影響,結(jié)果如圖2所示。當(dāng)酶催化反應(yīng)溫度低于45 ℃時(shí),酶催化效果隨溫度上升而增強(qiáng),并在45 ℃時(shí)達(dá)到最佳酶催效果;在超過45 ℃后,酶催化效果大幅下降,說明高溫可能會(huì)使酶部分失活,不利于酶催化反應(yīng)的進(jìn)行。故本實(shí)驗(yàn)選擇反應(yīng)溫度為 45 ℃。

      圖2 蔗糖轉(zhuǎn)化酶催化蔗糖水解反應(yīng)溫度對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值的影響

      2.3 探針濃度對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS的影響

      考察了0~6.0 μM探針的反應(yīng)濃度對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS的影響,結(jié)果如圖3所示。我們選擇探針濃度分別為1.0μM,2.0μM,3.0μM,4.0μM,5.0μM,6.0μM,由血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值可知,隨著濃度的增加其響應(yīng)值也逐漸增大,在4.0-6.0μM范圍內(nèi),響應(yīng)值趨于平緩,由此選擇4.0μM的探針濃度。

      圖3 探針濃度對(duì)血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS的影響

      2.4 校準(zhǔn)曲線

      在選定實(shí)驗(yàn)條件下,在1~316 fM的范圍內(nèi),血糖儀信號(hào)增強(qiáng)值ΔS與目標(biāo)DNA濃度的對(duì)數(shù)值呈良好的線性關(guān)系,回歸方程為ΔS=3.7859lgC+8.6332,相關(guān)系數(shù)為0.9986,檢出限可達(dá)1fM(圖4),低于很多文獻(xiàn)報(bào)導(dǎo)的方法。選擇目標(biāo)DNA濃度為100 fM時(shí),重復(fù)制備五組傳感器進(jìn)行平行實(shí)驗(yàn)得到的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為3.1%。表明該傳感器具有良好的重現(xiàn)性。

      圖4 目標(biāo)DNA濃度的對(duì)數(shù)值與血糖儀信號(hào)的增強(qiáng)值間的校正曲線

      3 結(jié)論

      cfDNA作為腫瘤標(biāo)志物引起了廣泛的關(guān)注與研究,本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建了一種基于血糖儀的便攜式傳感器,利用DNA串聯(lián)體構(gòu)建信號(hào)放大系統(tǒng),實(shí)現(xiàn)對(duì)低濃度cfDNA的快速檢測,為癌癥的早期篩查與檢測提供了一種新方法。

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