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      杠板歸槲皮素提取工藝優(yōu)化及體外抑菌效果

      2020-03-03 21:14:23唐遠(yuǎn)江楊粵黔周思璇張濤盧昱希黃炳香
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年22期
      關(guān)鍵詞:槲皮素

      唐遠(yuǎn)江 楊粵黔 周思璇 張濤 盧昱希 黃炳香

      摘要:為優(yōu)化杠板歸中槲皮素的最佳提取工藝,檢驗(yàn)提取物體外抑菌活性,以槲皮素提取量為評(píng)價(jià)指標(biāo),采用Plackett-BurnmanDesign(PBD)設(shè)計(jì)聯(lián)合Box-BehnkenDesign(BBD)對(duì)槲皮素的提取工藝進(jìn)行考察,并采用微量肉湯二倍稀釋法和瓊脂平板培養(yǎng)計(jì)數(shù)法研究提取物和槲皮素對(duì)大腸桿菌、沙門氏菌和金黃色葡萄球菌的體外抑菌和殺菌作用。結(jié)果可知,最佳提取工藝為加25倍59.92%乙醇浸泡24h,60℃下回流提取時(shí)間3.4h,提取2次。提取物對(duì)3株細(xì)菌的最小抑菌濃度(MIC)介于3.12~6.31g/L,最小殺菌濃度(MBC)介于12.52~25.41g/L,槲皮素對(duì)大腸桿菌和金黃色葡萄球菌MIC分別為7.11、3.16g/L,MBC分別為100.18、50.56g/L,其殺菌效果不如提取物,對(duì)沙門氏菌的MIC和MBC均為3.27g/L,殺菌效果優(yōu)于提取物。優(yōu)化后的提取工藝穩(wěn)定合理,且提取物具有良好抑菌活性。

      關(guān)鍵詞:杠板歸;槲皮素;PBD;BBD;MIC;MBC

      中圖分類號(hào):R284.2文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

      文章編號(hào):1002-1302(2020)22-0207-06

      作者簡(jiǎn)介:唐遠(yuǎn)江(1987—),男,貴州遵義人,碩士,研究實(shí)習(xí)員,主要從事中獸藥研發(fā)。E-mail:tangyjjay0909@126.com。

      通信作者:楊粵黔,副研究員,主要從事中獸藥研發(fā)。E-mail:252184152@qq.com。

      杠板歸為蓼科蓼屬植物杠板歸(PolygonumperfoliatumL.)的全草,民間習(xí)稱蛇倒退、貓爪刺、杠板歸等[1],其主要成分有黃酮類、有機(jī)酸類、萜類等[2-6]。《中國(guó)獸藥典》2015版第二部中規(guī)定,槲皮素為杠板歸的主要成分[7]。現(xiàn)代藥理學(xué)研究表明,杠板歸具有抗菌、抗病毒、降血壓、抗腫瘤等作用[8-10],臨床上杠板歸常用于治療慢性濕疹、乳腺炎、百日咳、瀉痢、黃疸、跌打腫痛等疾病。杠板歸的煎煮劑對(duì)金黃色葡萄球菌、乙型鏈球菌、炭疽桿菌等均有較強(qiáng)抑制作用,乙酸乙酯、正丁醇提取物對(duì)大腸埃希菌、枯草芽孢桿菌具有較強(qiáng)的抑制作用,75%乙醇提取物對(duì)多種細(xì)菌具有廣譜抗菌性[11-12]。槲皮素具有廣譜抗菌性,并且對(duì)革蘭氏陰性菌的抗菌作用強(qiáng)于革蘭氏陽(yáng)性菌[13]。

      大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、沙門氏菌是引起畜禽細(xì)菌性疾病的常見(jiàn)致病菌[14-17]。因致病性細(xì)菌血清型眾多,難以制備出具有針對(duì)性的疫苗[18]??股厥侵委煷祟惣膊∮行У氖侄?,但長(zhǎng)期使用抗生素導(dǎo)致致病菌的耐藥性嚴(yán)重,研究表明,大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、沙門氏菌對(duì)多種抗生素具有耐藥作用[19]??股貧埩艨蓪?dǎo)致致病菌的耐藥性增強(qiáng)并轉(zhuǎn)移給人類,引起動(dòng)物內(nèi)源性感染和二重感染,使動(dòng)物免疫力降低,抗原質(zhì)量降低,降低疫苗的使用效果。尋找抗生素替代物和新途徑,消除或減輕禁用抗生素帶來(lái)的一系列影響,是我國(guó)畜牧業(yè)急需解決的問(wèn)題[20]。

      相比抗生素,中獸藥具有無(wú)殘留、不易產(chǎn)生耐藥性、價(jià)格便宜等優(yōu)點(diǎn),在畜牧養(yǎng)殖中的作用日趨重要[21]。2020年,飼料生產(chǎn)企業(yè)停止生產(chǎn)含有促生長(zhǎng)類藥物飼料添加劑(中藥類除外)的商品飼料,使得中獸藥的發(fā)展迎來(lái)重大契機(jī)。前期研究發(fā)現(xiàn),杠板歸汁液對(duì)大腸桿菌具有良好的抑菌活性,但未對(duì)其提取液進(jìn)行研究。雖然杠板歸在臨床上的應(yīng)用研究較多,但其有效成分的提取優(yōu)化以及在獸醫(yī)上的開(kāi)發(fā)應(yīng)用較少。因此,為拓展中藥杠板歸的運(yùn)用,筆者運(yùn)用Plackett-BurnmanDesign(PBD)和Box-BehnkenDesign法(BBD)設(shè)計(jì),優(yōu)化建立杠板歸中槲皮素的提取工藝,并檢驗(yàn)提取物的抗菌活性,以期為該中藥的開(kāi)發(fā)和利用提供依據(jù)。

      1材料與方法

      1.1材料與試劑

      供試菌株,大腸桿菌ATCC25922標(biāo)準(zhǔn)株、沙門氏菌ATCC13076標(biāo)準(zhǔn)株、金黃色葡萄球菌ATCC6538標(biāo)準(zhǔn)株,均由貴州省畜牧獸醫(yī)研究所獸用中草藥研究室保存;杠板歸分析樣品,由貴州省畜牧獸醫(yī)研究所獸用中草藥研究室提供,經(jīng)貴州省畜牧獸醫(yī)研究所尚楊粵黔鑒定為PolygonumperfoliatumL.。槲皮素對(duì)照品,購(gòu)于中國(guó)食品藥品檢定研究院,批號(hào)110957—201808;水解酪蛋白肉湯(MHbroth)和水解酪蛋白瓊脂(MHagar),購(gòu)自廣州環(huán)凱微生物科技有限公司。其他試劑為色譜純或分析純。

      1.2主要設(shè)備與儀器

      LC-20型島津高效液相色譜儀(日本島津公司)、HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋(成都美普達(dá)儀器有限公司)、BSA224S型電子分析天平(賽多利斯科學(xué)儀器有限公司)、潔拓超聲波清洗儀(深圳市潔拓超聲清洗設(shè)備有限公司)、DHG-9240A電熱恒溫干燥箱(上海齊欣科學(xué)儀器有限公司)、RE-5205型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠)。

      1.3試驗(yàn)方法

      1.3.1槲皮素的定量檢測(cè)方法[7]

      (1)色譜條件,以十八烷基硅烷鍵合硅膠為填充劑,甲醇-0.4%磷酸溶液(50∶50)為流動(dòng)相;檢測(cè)波長(zhǎng)為360nm,流速:1.0mL/min,柱溫:30℃,進(jìn)樣量10μL。

      (2)對(duì)照品溶液的制備,取槲皮素對(duì)照品適量,精確稱定,加甲醇制成每1mL含30μg的溶液,即得對(duì)照品溶液。

      (3)供試品溶液的制備,取本品粉末(過(guò)三號(hào)篩)約0.7g,精確稱定,置于具塞錐形瓶中,精確加入甲醇-鹽酸(4∶1)混合溶液50mL,稱定質(zhì)量,置90℃水浴中加熱回流1h,放冷,再稱定質(zhì)量,采用甲醇補(bǔ)足減失的質(zhì)量,搖勻、濾過(guò),取續(xù)濾液,即得供試品溶液。

      (4)線性關(guān)系考察,精確稱取槲皮素對(duì)照品16.05mg置于50mL容量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,分別吸取對(duì)照品溶液1.6、3.2、7.8、12.5、17.2mL于50mL容量瓶中,甲醇定容至刻度,所得對(duì)照品質(zhì)量濃度分別為10.00、20.50、50.00、80.02、110.40μg/mL,分別取各質(zhì)量濃度標(biāo)準(zhǔn)品溶液10μL進(jìn)樣,記錄色譜圖峰面積。以峰面積值(y)對(duì)對(duì)照品質(zhì)量濃度(x)進(jìn)行回歸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線方程。

      (5)精密度試驗(yàn),精確吸取槲皮素對(duì)照品溶液(20.50μg/mL)10μL,按上述色譜條件,重復(fù)進(jìn)樣6次,記錄峰面積,計(jì)算峰面積的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)。

      (6)穩(wěn)定性試驗(yàn),取供試品溶液,于制備后0、1、2、4、8、12h分別進(jìn)樣10μL,計(jì)算峰面積的RSD。

      (7)重現(xiàn)性試驗(yàn),取杠板歸藥材6份,制備樣品供試品溶液,取供試品溶液進(jìn)樣10μL檢測(cè),計(jì)算槲皮素含量。

      (8)加樣回收試驗(yàn),取已知含量(0.32mg/g)的樣品0.5g,共6份,精確稱定,置于具塞錐形瓶中,分別加入槲皮素對(duì)照品溶液(20.50μg/mL)5mL,制備樣品供試品溶液,進(jìn)行測(cè)定,以供試品溶液中對(duì)照品絕對(duì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)計(jì)算加樣回收率。

      1.3.2PBD篩選主要因素

      取10g杠板歸采用水浴回流提取,取濾液檢測(cè)槲皮素含量,運(yùn)用Minitab19進(jìn)行PBD試驗(yàn)??疾旄鱾€(gè)因素對(duì)槲皮素提取量的影響,試驗(yàn)對(duì)A(浸泡時(shí)間)、B(乙醇體積分?jǐn)?shù))、C(溶劑量)、D(溫度)、E(提取時(shí)間)、F(提取次數(shù))等6個(gè)主要因素進(jìn)行評(píng)價(jià),根據(jù)預(yù)試驗(yàn)結(jié)果確定每個(gè)因素高(代碼:1)、低(代碼:-1)2個(gè)水平共12組試驗(yàn),篩選對(duì)槲皮素提取量的影響主要因子。PBD試驗(yàn)因素和水平見(jiàn)表1。

      1.3.3BBD試驗(yàn)優(yōu)化提取工藝

      取10g杠板歸采用水浴回流進(jìn)行提取,根據(jù)PBD試驗(yàn)結(jié)果,以槲皮素含量(y)為目標(biāo)響應(yīng)值,選取乙醇體積分?jǐn)?shù)(x1)、溶劑量(x2)和提取時(shí)間(x3)設(shè)計(jì)3因素3水平的響應(yīng)面分析試驗(yàn),響應(yīng)因素水平見(jiàn)表2。

      1.3.4中藥提取物制備

      稱取杠板歸中草藥200g粉末,采用優(yōu)化后的工藝提取,合并提取液,過(guò)濾,烘干并粉碎,采用10%甲醇溶解并稀釋成不同濃度的溶液,相同方法配制槲皮素溶液,置于4℃冰箱中貯存,備用。

      1.3.5菌液制備

      將大腸桿菌、沙門氏菌、金黃色葡萄球菌接種于含MH液體培養(yǎng)基的試管中,置于37℃、200r/min條件下培養(yǎng)12h,并采用液體培養(yǎng)基將菌液的D600nm調(diào)整為0.8,再用培養(yǎng)基稀釋1000倍,相當(dāng)于菌液濃度為105~106CFU/mL,保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.3.6最小抑菌濃度(MIC)的測(cè)定

      采用微量肉湯二倍稀釋法,于無(wú)菌96孔板每一孔中均加入100μL肉湯,再分別向第一孔中加入100μL配備好的藥液,混勻后依次倍比稀釋,直到最后一孔混勻后棄去100μL混合液。每孔加入配備好的100μL細(xì)菌稀釋液,同時(shí)設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照組(加菌不加藥)和陰性對(duì)照組(不加菌不加藥)。在正式試驗(yàn)之前設(shè)置有機(jī)溶劑對(duì)照組,即對(duì)每株菌進(jìn)行有機(jī)溶劑的對(duì)照試驗(yàn),將藥液換成甲醇,保證所有供試菌株存活的最大溶劑含量,以便制備藥液所用的溶劑含量遠(yuǎn)低于此值。將供試菌株37℃恒溫培養(yǎng)24h后取出,觀察細(xì)菌生長(zhǎng)情況。每組試驗(yàn)至少重復(fù)3次。

      采用TTC法對(duì)MIC結(jié)果進(jìn)行判定。向上述培養(yǎng)24h后的96孔板每孔分別加入20μL0.5%的2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC),37℃避光培養(yǎng)2h,觀察菌液的顏色變化。試驗(yàn)組眼觀溶液澄清、顏色未發(fā)生變化的最低藥物質(zhì)量濃度則作為該藥的MIC。

      1.3.7最小殺菌濃度(MBC)的測(cè)定

      將上述試驗(yàn)組澄清的各孔中液體取100μL涂布于相應(yīng)的營(yíng)養(yǎng)培養(yǎng)基上,于37℃培養(yǎng)48h,以肉眼觀察無(wú)菌落生長(zhǎng)的最低藥物質(zhì)量濃度為其MBC[19]。

      2結(jié)果與分析

      2.1槲皮素定量檢測(cè)試驗(yàn)的可靠性

      線性關(guān)系試驗(yàn)得出標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=4×107x-35941,r2=0.9996,進(jìn)樣濃度在10.00~110.40μg/mL,表明進(jìn)樣濃度和峰面積線性關(guān)系良好。槲皮素對(duì)照樣品和檢測(cè)樣品的HPLC色譜圖見(jiàn)圖1。精密度試驗(yàn)得出對(duì)照品平均峰面積為674579.33,RSD<2%,說(shuō)明儀器精密性良好。穩(wěn)定性試驗(yàn)表明,槲皮素色譜峰面積RSD值為1.56%,樣品供試液在12h內(nèi)穩(wěn)定性良好。重現(xiàn)性試驗(yàn)得出杠板歸樣品平均含量為0.31mg/g,RSD<2%,表明該樣品處理方法重現(xiàn)性好。加樣回收試驗(yàn)表明,槲皮素平均回收率為99.73%,RSD為0.98%,說(shuō)明本方法可靠、準(zhǔn)確度好,符合含量測(cè)定的要求。

      2.2影響杠板歸提取工藝的主要因素

      按照PBD試驗(yàn)設(shè)計(jì),得到各處理組的槲皮素提取量(表3)。運(yùn)用Minitab19軟件對(duì)各個(gè)因素進(jìn)行顯著性分析,由表4可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)、溶劑量、提取時(shí)間對(duì)槲皮素提取量的影響顯著,浸泡時(shí)間、提取次數(shù)、溫度的影響不顯著。因此,選取乙醇體積分?jǐn)?shù)、溶劑量、提取時(shí)間進(jìn)行BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì)。

      2.3槲皮素提取工藝回歸模型的建立

      根據(jù)BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì),得到不同水平條件下槲皮素的提取量(表5)。運(yùn)用Designexpert10.3.2軟件,以槲皮素含量(y)為響應(yīng)值分別對(duì)各因素進(jìn)行多元線性回歸和二項(xiàng)式擬合,得到y(tǒng)對(duì)x1、x2和x3的二次多項(xiàng)回歸方程:y=0.322-0.0025x1+0.0001x2+0.015x3+0.0075x1x2-0.0075x1x3+0.0125x2x3-0.0322x21-0.0022x22-0.0173x23。模型F值為3.18,P<0.05,響應(yīng)回歸模型顯著,失擬項(xiàng)P>0.05,失擬不顯著,由表6可知,根據(jù)模型擬合規(guī)律[22],說(shuō)明該回歸模型擬合程度較好。

      2.4槲皮素最佳提取工藝的建立

      以x1、x2、x3中任意1個(gè)變量固定,其余2個(gè)變量對(duì)y值作響應(yīng)面圖(圖2)。根據(jù)曲面圖分析原理[23],可以看出x1和x3對(duì)y值的交互作用不顯著,x1和x2,x2和x3對(duì)y值的交互作用明顯,根據(jù)回歸模型和曲面分析,得到槲皮素的最佳提取工藝為:加25倍59.92%體積分?jǐn)?shù)乙醇,60℃下回流提取時(shí)間3.4h,提取2次,預(yù)測(cè)值y=0.33mg/g。

      [FK(W31][TPTYJ2.tif][

      2.5最佳提取工藝的驗(yàn)證

      取杠板歸適量,加25倍59.92%乙醇浸泡24h,60℃下回流提取3.4h,提取2次,按此工藝參數(shù)進(jìn)行3次平行試驗(yàn),得到槲皮素平均提取量為0.34mg/g,由表7可知,槲皮素提取量與預(yù)測(cè)值相近,說(shuō)明建立的提取工藝具有良好的可信度。

      2.6杠板歸提取物和槲皮素的抑菌活性

      由表8可知,杠板歸提取物和槲皮素對(duì)3株細(xì)菌均有抑制作用。提取物對(duì)3株細(xì)菌的MIC分別為3.12、6.24、6.31g/L,MBC分別為12.52、24.08、25.41g/L,槲皮素對(duì)大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的MIC分別為7.11、3.16g/L,MBC分別為100.18、50.56g/L,與杠板歸提取物的殺菌活性相比,槲皮素單體的殺菌效果不如提取物。槲皮素對(duì)沙門氏菌的MIC和MBC均為3.27g/L,說(shuō)明沙門氏菌對(duì)槲皮素敏感,槲皮素對(duì)沙門氏菌的殺菌效果明顯優(yōu)于杠板歸提取物。

      3結(jié)論與討論

      通過(guò)PBD和BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化杠板歸中槲皮素的提取工藝,并進(jìn)行抑菌活性檢驗(yàn),得到最佳提取工藝為:加25倍59.92%乙醇浸泡24h,60℃下回流提取時(shí)間3.4h,提取2次。提取物和槲皮素單體對(duì)大腸桿菌、沙門氏菌和金黃色葡萄球菌均有良好的抑菌效果。

      在中藥有效成分提取中需考慮到多個(gè)單因素試驗(yàn)以及試驗(yàn)次數(shù)較多的正交設(shè)計(jì),工作費(fèi)時(shí)費(fèi)力且具有盲目性,因此本試驗(yàn)引用PBD設(shè)計(jì)。PBD是一種近飽和的2水平篩選試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法,通過(guò)比較各因子2水平的差異與整體的差異來(lái)確定因子的顯著性,能用最少的試驗(yàn)次數(shù)快速有效地篩選出顯著影響因子[24]。BBD具有結(jié)果直觀、預(yù)測(cè)性好的優(yōu)點(diǎn),試驗(yàn)預(yù)測(cè)值能更好地考察參數(shù)合理性和試驗(yàn)設(shè)計(jì)的準(zhǔn)確性[25]。本研究通過(guò)驗(yàn)證試驗(yàn),其驗(yàn)證結(jié)果大于預(yù)測(cè)值,說(shuō)明PBD聯(lián)合BBD設(shè)計(jì)在中藥提取中具有良好的可行性。

      本試驗(yàn)在篩選提取因素時(shí)藥材浸泡24h后槲皮素提取率有所提高,溫度對(duì)槲皮素提取的影響不明顯,溫度越高越不利于安全生產(chǎn),且造成資源浪費(fèi),因此在響應(yīng)面設(shè)計(jì)中不考慮加熱溫度的影響。同時(shí),在提取過(guò)程發(fā)現(xiàn)提取2次可使有效成分完全浸出,故每個(gè)平行試驗(yàn)均提取2次。通過(guò)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),本研究中供試藥材槲皮素的含量?jī)H為0.32mg/g,貴州地區(qū)杠板歸藥材槲皮素的含量0.017~0.495mg/g[26],說(shuō)明供試藥材的有效成分含量合理。在槲皮素的提取報(bào)告中多采用甲醇-酸作為提取液,出于安全考慮,本試驗(yàn)只采用乙醇作為提取液,且結(jié)果與甲醇-酸相差不大。杠板歸槲皮素的提取優(yōu)化未有報(bào)道,沙芮以艾蒿為原料,得出槲皮素提取需加16倍甲醇[27],與之相比,本研究只加25倍59.92%乙醇,更節(jié)約成本。

      在抑菌活性研究中,槲皮素對(duì)沙門氏菌的MIC和MBC未超過(guò)3.30g/L,但高于滕楠報(bào)道的槲皮素對(duì)沙門氏菌的最低抑菌濃度2.17g/L[28]。槲皮素對(duì)大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的MIC分別為7.11、3.16g/L,MBC分別為100.18、50.56g/L,與秦曉蓉等的報(bào)道[13]相符。杠板歸提取物對(duì)大腸桿菌的抑菌活性最好,MIC和MBC分別為3.12、12.52g/L,對(duì)沙門氏菌和金黃色葡萄球菌MIC和MBC均未超過(guò)3.50、26.00g/L。黃學(xué)彬等研究得出,75%乙醇、乙酸乙酯和正丁醇提取物對(duì)金黃色葡萄球菌、大腸埃希菌、綠膿桿菌、枯草芽孢桿菌等具有良好的抑菌效果[12],說(shuō)明杠板歸具有良好的藥用價(jià)值,值得進(jìn)一步研究。

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