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      HOTTIP在口腔鱗癌中的表達及意義

      2020-06-01 07:32:16宋洪寧雷印濤邢在臣劉敏
      中國實用醫(yī)藥 2020年13期
      關(guān)鍵詞:腫瘤標志物

      宋洪寧 雷印濤 邢在臣 劉敏

      【摘要】 目的 探討口腔鱗狀細胞癌(OSCC, 簡稱鱗癌)中HOXA遠端轉(zhuǎn)錄本(HOTTIP)的表達及意義。方法 采用實時熒光定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)方法檢測HOTTIP在正常人口腔黏膜角質(zhì)形成細胞(HOK)和人OSCC細胞系(HSC-4)中的表達情況;對HSC-4細胞轉(zhuǎn)染HOTTIP-inhibitor,?qRT-PCR檢測轉(zhuǎn)染后HOTTIP的表達量, MTT實驗、細胞劃痕實驗檢測轉(zhuǎn)染后對HSC-4細胞增殖、遷移的影響。結(jié)果 通過qRT-PCR檢測HOTTIP的表達量, HSC-4細胞中的HOTTIP表達量(1.521±0.117)顯著高于HOK細胞的(1.060±0.036), 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);對HSC-4細胞轉(zhuǎn)染HOTTIP-inhibitor,?qRT-PCR檢測HSC-4細胞轉(zhuǎn)染后HOTTIP的表達量, HOTTIP-inhibitor組HOTTIP的表達量(0.336±0.070)均明顯低于Control組和Inhibitor-NC組的(1.062±0.092)、(1.023±0.103), 差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);MTT實驗證實HSC-4細胞轉(zhuǎn)染HOTTIP-inhibitor后, HOTTIP-inhibitor組相對于Control組和Inhibitor-NC組, 細胞增殖能力明顯下降, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05), 提示敲低HOTTIP的表達能顯著降低HSC-4細胞的增殖能力;細胞劃痕實驗中, HOTTIP-inhibitor組細胞的劃痕愈合速度減慢, HOTTIP-inhibitor組轉(zhuǎn)染后24 h細胞劃痕占比(53.27±1.85)均大于Control組和Inhibitor-NC組的(21.10±0.78)、(25.13±1.69), 差異均具有統(tǒng)計學意義(P<0.05), 提示HOTTIP的低表達能有效地降低細胞遷移能力。

      結(jié)論 與HOK細胞相比, HSC-4細胞中HOTTIP表達明顯上調(diào), 敲低HOTTIP的表達能顯著降低HSC-4細胞的增殖能力、遷移能力, 證實其在OSCC中發(fā)揮促癌作用。

      【關(guān)鍵詞】 口腔鱗癌;HOXA遠端轉(zhuǎn)錄本;腫瘤標志物

      DOI:10.14163/j.cnki.11-5547/r.2020.13.085

      Expression and significance of HOTTIP in oral squamous cell carcinoma? ?SONG Hong-ning, LEI Yin-tao, XING Zai-chen, et al. Department of Oral and Maxillofacial Surgery, Second Affiliated Hospital of Shandong First Medical University, Taian 271000, China

      【Abstract】 Objective? ?To discuss the expression and significance of HOXA transcript at the distal tip (HOTTIP) in oral squamous cell carcinoma (OSCC). Methods? ?Real-time fluorescent quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (qRT-PCR) was used to detect the expression of HOTTIP in normal human oral keratinocytes (HOK) and human OSCC cell line (HSC-4). The expression of HOTTIP after transfection was detected by qRT-PCR, and the effects of transfection on proliferation and migration of HSC-4 cells were detected by MTT assay and cell scratch assay. Results? ?The expression of HOTTIP was detected by qRT-PCR. The expression of HOTTIP in HSC-4 cells (1.521±0.117) was significantly higher than? (1.060±0.036) in HOK cells, and the difference was statistically significant (P<0.05). HSC-4 cells were transfected with HOTTIP-inhibitor. QRT-PCR was used to detect the expression of HOTTIP in HSC-4 cells. The expression of HOTTIP in the HOTTIP-inhibitor group (0.336±0.070) was significantly lower than (1.062±0.092) and (1.023±0.103) in the Control group and Inhibitor-NC group, their differences were statistically significant (P<0.05). MTT experiments confirmed that after HSC-4 cells were transfected with HOTTIP-inhibitor, the cell proliferation ability of HOTTIP-inhibitor group was significantly lower than that of Control group and Inhibitor-NC group, and the difference was statistically significant (P<0.05), suggesting that the expression of HOTTIP can significantly reduce the proliferation ability of HSC-4 cells. In the cell scratch test, the scratch healing speed of the cells in the HOTTIP-inhibitor group was slowed down. The percentage of cell scratches (53.27±1.85) in the HOTTIP-inhibitor group at 24 h after transfection was greater than (21.10.±0.78) and (25.13±1.69) in the Control group and Inhibitor-NC group, and the differences were statistically significant (P<0.05), suggesting that the low expression of HOTTIP can effectively reduce the cell migration ability. Conclusion? ?Compared with HOK cells, the expression of HOTTIP in HSC-4 cells was significantly up-regulated. Knocking down the expression of HOTTIP can significantly reduce the proliferation and migration of HSC-4 cells, confirming that it plays a pro-cancer role in OSCC.

      【Key words】 Oal squamous cell carcinoma; HOXA transcript at the distal tip; Tumor markers

      口腔鱗狀細胞癌(oral squamous cell carcinoma, OSCC)在口腔頜面部惡性腫瘤中占比高達80%以上, 每年約有50萬新增病例, OSCC易發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移, 晚期可發(fā)生遠處轉(zhuǎn)移, 經(jīng)治療后, 患者5年生存率只有50%~60%[1], 預(yù)后較差, 腫瘤的局部復(fù)發(fā)和遠處轉(zhuǎn)移特性是治療失敗的最重要因素[2], 其發(fā)病機制尚未闡明。因此, 探索與OSCC發(fā)生、發(fā)展和預(yù)后相關(guān)的生物學標記物顯得十分重要。近年來許多研究證實[3, 4],

      在許多惡性腫瘤中, 都會存在一個共同現(xiàn)象即長鏈非編碼RNA(long non-coding RNA, lncRNA)的異常表達, 其與腫瘤的發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切, HOXA遠端轉(zhuǎn)錄本(HOXA transcript at the distal tip, HOTTIP)屬于lncRNA的一種, 研究發(fā)現(xiàn)其在多種惡性腫瘤中的表達同樣具有差異性, 并通過影響腫瘤細胞的增殖、侵襲、凋亡、轉(zhuǎn)移等參與腫瘤的形成和發(fā)展[5-7]。但關(guān)于其在OSCC中的表達情況的研究甚少, 本研究采用qRT-PCR方法檢測HOTTIP在HOK和HSC-4細胞中的表達情況, 并研究敲低HOTTIP對HSC-4細胞增殖及遷移的影響, 以期為OSCC的診斷及分子治療提供重要的參考。

      1 材料與方法

      1. 1 試劑與儀器 HOK和HSC-4細胞獲自American Type Culture Collection(ATCC, Manassas, VA, 美國), 胎牛血清(FBS)及RPMI1640培養(yǎng)基均購自美國GIBCO公司, Lipofectamine TM 2000、TRIzol購自美國Invitrogen公司, RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、qRT-PCR試劑盒、RNA酶抑制劑、dNTPs SYBR Mastermix均購于大連TaKaRa公司。HOTTIP引物、GAPDH引物均購自Sigma公司。MTT購自美國sigma公司。HOTTIP-inhibitor和Inhibitor-NC購自RiboBio (中國廣州)。主要儀器:細胞培養(yǎng)箱購自美國Thermo公司, Prism 7000型熒光定量PCR儀購自美國ABI公司, Elx800型全自動酶標儀購自美國Bio Tek公司, 生物分光光度儀購于美國Thermo公司。

      1. 2 實驗方法

      1. 2. 1 細胞培養(yǎng) 用含10%FBS的RPMI1640培養(yǎng)基培養(yǎng)細胞, 置于37℃、含5%二氧化碳(CO2)及飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每隔2~3 d換液, 待其達70%~80%融合度時, 可進行后續(xù)轉(zhuǎn)染實驗。

      1. 2. 2 qRT-PCR檢測HOK和HSC-4細胞中HOTTIP的表達量 參照說明書進行qRT-PCR檢測HOK細胞和HSC-4細胞中的HOTTIP水平。由上海生工生物工程有限公司設(shè)計并合成HOTTIP及內(nèi)參GAPDH的引物。引物序列:HOTTIP上游:5-CCTAAAGCCACGCTTCTTTG-3, 下游:5-TGCAGGCTGGAGATCCTACT-3;GAPDH上游:5-GGGAGCCAAAAGGGTCAT-3, 下游:5-GAGTCCTTCCACGATACCAA-3。逆轉(zhuǎn)錄按照Prime-Script TM逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書逆轉(zhuǎn)錄成互補脫氧核糖核酸(cDNA), 反應(yīng)條件:30℃ 10 min, 60℃ 30 min, -80℃保存?zhèn)溆谩崟r熒光定量PCR按照SYBR Green說明書配制反應(yīng)體系。取cDNA進行qRT-PCR, 定量PCR條件如下:95℃ 30 min預(yù)變性, 然后進行40個循環(huán):95℃ 10 s, 60℃ 20 s, 然后70℃延伸10 s。每個樣品3管重復(fù)。根據(jù)繪制的標準曲線得到HOTTIP基因以及內(nèi)參基因GAPDH的相對表達量, 采用2-△△CT計算方法進行統(tǒng)計分析。

      1. 2. 3 細胞轉(zhuǎn)染 將指數(shù)生長的HSC-4細胞在含有10%FBS的RPMI1640培養(yǎng)基中培養(yǎng)24 h, 然后用HOTTIP-inhibitor, Inhibitor-NC轉(zhuǎn)染。根據(jù)制造商的方案使用Lipofectamine?2000試劑(Invitrogen?)轉(zhuǎn)染。用HOTTIP-inhibitor轉(zhuǎn)染后的細胞被認為是HOTTIP-inhibitor組;用Inhibitor-NC轉(zhuǎn)染后的細胞被認為是Inhibitor-NC組;未經(jīng)任何處理的細胞被認為是Control組。轉(zhuǎn)染48 h后, 使用qRT-PCR進行檢測。

      1. 2. 4 MTT檢測 采用MTT法檢測敲低HOTTIP水平對HSC-4細胞增殖的影響。將對數(shù)生長期細胞以1×105個接種于96孔板中, 分別于轉(zhuǎn)染24、48、72、96 h后, 加入5 μg/μl預(yù)先配好的MTT溶液20 μl, 孵育4 h后加入二甲基亞砜(DMSO)(150 μl/孔), 在450 nm波長下檢測各組的吸光度(A值)。以Control組為參考, 計算其余各組A值與Control組的比值以此計為增殖率。實驗重復(fù)3次。

      1. 2. 5 細胞劃痕實驗 將轉(zhuǎn)染的HSC-4細胞接種在24孔板中24 h, 然后通過使用10 μl移液管機械傷害細胞并用磷酸緩沖鹽溶液(PBS)除去碎片。再孵育48 h后, 洗滌孔以除去培養(yǎng)基, 并使用倒置顯微鏡以100X視圖捕獲代表性圖片。使用Image-Pro Plus 6.0記錄和分析傷口區(qū)域。實驗重復(fù)≥3次。該測定在轉(zhuǎn)染后48 h進行。

      1. 3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS17.0統(tǒng)計學軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。計量資料以均數(shù)±標準差( x-±s)表示, 采用t檢驗。P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學意義。

      2 結(jié)果

      2. 1 qRT-PCR檢測HOTTIP的表達量 通過qRT-PCR檢測HOTTIP的表達量, 采用2-△△CT計算方法進行統(tǒng)計, 分析結(jié)果顯示HSC-4細胞中的HOTTIP表達量(1.521±0.117)顯著高于HOK細胞的(1.060±0.036), 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見圖1。

      2. 2 HOTTIP-inhibitor轉(zhuǎn)染及qRT-PCR檢測轉(zhuǎn)染后HOTTIP的表達量 對HSC-4細胞轉(zhuǎn)染HOTTIP-inhibitor, qRT-PCR檢測轉(zhuǎn)染HOTTIP-inhibitor后HOTTIP的表達量, 結(jié)果顯示, HOTTIP-inhibitor組HOTTIP表達量(0.336±0.070)均明顯低于Control組的(1.062±0.092)和Inhibitor-NC組的(1.023±0.103), 差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見圖2。

      2. 3 MTT檢測 對HSC-4細胞轉(zhuǎn)染HOTTIP-inhibitor, MTT實驗證實HSC-4轉(zhuǎn)染HOTTIP-inhibitor后, HOTTIP-inhibitor組相對于Control組和Inhibitor-NC組, 細胞增殖能力明顯下降, 差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05), 提示敲低HOTTIP的表達能顯著降低HSC-4細胞的增殖能力。見圖3。

      2. 4 細胞劃痕實驗 細胞劃痕實驗中, HOTTIP-inhibitor組細胞的劃痕愈合速度減慢, HOTTIP-inhibitor組轉(zhuǎn)染后24 h細胞劃痕占比(53.27±1.85)均大于Control組的(21.10±0.78)和Inhibitor-NC組的(25.13±1.69), 差異均具有統(tǒng)計學意義(P<0.05), 提示HOTTIP的低表達能有效地降低細胞遷移能力。見圖4, 圖5。

      3 討論

      起初, lncRNA被認為是基因組轉(zhuǎn)錄的“噪音”, 不具有任何生物學功能, 隨著研究的逐漸深入, 發(fā)現(xiàn)其實lncRNA在疾病學、細胞學等領(lǐng)域是極其具備醫(yī)學價值的?,F(xiàn)在科學家已經(jīng)研究出來的lncRNA基因的數(shù)量已經(jīng)達到了5萬左右。越來越多的實踐以及實驗發(fā)現(xiàn), 在各大腫瘤的產(chǎn)生、轉(zhuǎn)移、發(fā)展期間都離不開lncRNAs[8]。其中與腫瘤相關(guān)的lncRNA主要有H19、肺腺癌轉(zhuǎn)移相關(guān)轉(zhuǎn)錄本1(metastasis-associated lung adenocarcinoma transcript-1, MALAT-1)、同源異型框基因反義基因間RNA(homeobox antisense intergenic RNA, HOTAIR)、前列腺癌抗原3(prostate cancer antigen 3, PCA3)等。HOTTIP作為lncRNA的一類, 其首次被發(fā)現(xiàn)是在人體末梢的成纖維細胞[9], 其位于7號染色體短臂1區(qū)5號帶2亞帶, 即7p 15.2, 其所發(fā)生的轉(zhuǎn)錄其 實是在HOXA13的5 ′端上游300個堿基處, 經(jīng)5′ 端剪 切成熟后將RNA輸送至胞質(zhì)內(nèi),其所形成的非編碼RNA,核苷酸分子長度為3764個。HOTTIP的重要作用是對機體細胞的新陳代謝進行有效調(diào)控, 主要是通過影響Wnt/β-catenin、Bax/Bcl-2等的信號傳導(dǎo)來實現(xiàn), 當然, 對核染色質(zhì)發(fā)揮修飾作用也是其具有的功能之一, 譬如較為常見的賴氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶就可以通過調(diào)控來實現(xiàn)對相關(guān)基因表達的掌控[9]。

      HOTTIP得到了科學家們的廣泛關(guān)注, 其可在肝癌、結(jié)腸癌等眾多惡性腫瘤中表現(xiàn)出一定的特異性變化, Quagliata等[10]就對HOTTIP與HOXA13進行了具體的分析, 發(fā)現(xiàn)它們在患者體內(nèi)的含量和患者肝癌病變程度有著密切聯(lián)系, 呈現(xiàn)正比狀態(tài);Gu等[11]對患有食管癌的患者進行研究, 尤其是對鱗狀細胞癌患者分析, 發(fā)現(xiàn)HOTTIP出現(xiàn)異常的患者生命受損比普通患者更為嚴重, 其生存機會比普通患者要少;Li等[12]與其團隊針對胰腺導(dǎo)管癌和慢性胰腺炎展開研究, 運用基因芯片對患者進行比對證明了患者體內(nèi)HOTTIP出現(xiàn)的顯著異常, 將癌細胞與周邊細胞間進行對比發(fā)現(xiàn)癌細胞所含HOTTIP成分明顯優(yōu)于周邊細胞;Ye等[13]在對胃癌患者進行剖析時, 也發(fā)現(xiàn)了相似的狀況, 相關(guān)癌細胞內(nèi)含有的HOTTIP量均高于其他組織, 且關(guān)系著患者病情、腫瘤的尺寸及出現(xiàn)死亡的幾率。目前, HOTTIP是如何參與惡性腫瘤的進展尚不清楚, 其具體作用機制尚未明確, 但無疑其表達量增加是促進腫瘤發(fā)生、發(fā)展的重要因素之一。

      本實驗通過分析, 發(fā)現(xiàn)HSC-4細胞中的HOTTIP表達量顯著高于HOK細胞, 這也意味著在OSCC患者病情發(fā)展過程中, HOTTIP起著一定的促進作用。本次實驗尚存在一些不足之處, 如缺少對其具體機制的研究, 后期的研究中將進一步通過細胞實驗探討HOTTIP的具體作用機制。

      綜上所述, HOTTIP在口腔鱗癌治療過程中有著一定的指導(dǎo)意義, 可有效幫助實現(xiàn)對患者病情的掌控。

      參考文獻

      [1] Parkin DM, Bray F, Ferlay J, et al. Global cancer statistics, 2002. CA Cancer J Clin, 2005, 55(2):74-108.

      [2] Petti S, Masood M, Scully C. The magnitude of tobacco smoking-betel quid chewing-alcohol drinking interaction effect on oral cancer in South-East Asia. A meta-analysis of observational studies. PLoS One, 2013, 8(11):e78999.

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