石欣隆 楊月琴 侯小改 薛嫻 李明聰 段明鉛 霍建華 曾繁梓

摘要：為明確殼寡糖（chitooligosaccharide，COS）對干旱下唐古特白刺（Nitraria tangutorum）相關生理特性的影響，以兩年生唐古特白刺為研究對象，設置對照組（蒸餾水）和COS處理組（40 mg/L），對唐古特白刺葉片進行整株噴施，測定不同干旱條件下（即斷水后第11、13、15、17、19 d）植株的相關生理指標。結(jié)果表明，與對照組相比，斷水第13 d及以后，COS處理組葉片的相對含水量提高12.76%～17.38%，葉綠素含量提高21.76%～45.46%，電解質(zhì)外滲率降低14.20%～28.36%，丙二醛含量降低19.13%～25.30%，可溶性糖含量提高20.44%～36.85%，可溶性蛋白含量提高8.19%～23.19%，脯氨酸含量提高10.55%～32.34%;斷水第15 d以后，COS處理組葉片超氧化物歧化酶活性提高22.85%～41.87%，過氧化物酶活性提高13.51%～25.80%，過氧化氫酶活性提高19.11%～28.50%。在不同斷水時期，外源COS可顯著提高唐古特白刺植株的相對含水量、葉綠素含量、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量和抗氧化酶活性，同時明顯降低了葉片電解質(zhì)外滲率和丙二醛含量。

關鍵詞：殼寡糖;唐古特白刺;干旱脅迫;葉綠素;抗氧化酶;滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)

中圖分類號： S718.43文獻標志碼： A文章編號：1002-1302（2020）13-0172-06

收稿日期：2019-11-21

基金項目：國家自然科學基金（編號：U1804233）;河南省自然科學基金（編號：162300410105）;河南科技大學學科提升振興A計劃（編號：13660001）;河南科技大學2017-2018學年實驗技術(shù)開發(fā)基金（編號：SY1718052）。

作者簡介：石欣?。?994—），男，河南林州人，碩士研究生，主要從事植物生理生態(tài)學研究。E-mail：975184724@qq.com。

通信作者：楊月琴，博士，副教授，主要從事生態(tài)學和藥材資源開發(fā)利用研究。E-mail：yyqyxf@126.com。干旱影響植物生長發(fā)育。研究發(fā)現(xiàn)，某些植物生長調(diào)節(jié)物可以增強植物對干旱、冷害、高鹽等非生物脅迫的耐受性[1-4]，使植物在同等逆境脅迫下生命力更旺盛，更有競爭力。殼寡糖（chitooligosaccharide，COS）是由殼聚糖通過降解得到的一種低聚糖，因具有高效、環(huán)保、來源廣的特性被大量用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)[5-6]。研究表明，干旱下，外源COS能提高植物葉片相對含水量，降低電解質(zhì)外滲率，減少過氧化有害產(chǎn)物積累量，從而減小干旱對植物細胞膜系統(tǒng)及大分子生命物質(zhì)的損傷[7];也能誘導光系統(tǒng)Ⅱ最大化光化學效率（Fv/Fm），明顯提高光化學熒光猝滅系數(shù)（qP）和光系統(tǒng)Ⅱ電子傳遞量子產(chǎn)量（ΦPSⅡ）[8]，增加可溶性糖（soluble sugar，SS）、可溶性蛋白（soluble protein，SP）、脯氨酸（prolin，Pro）等滲透調(diào)節(jié)相關代謝產(chǎn)物含量，從而改變細胞質(zhì)膜的相對滲透率[9]，增強植物耐旱性;還能提高植物體內(nèi)超氧化物歧化酶（superroxide dismutase，SOD）、過氧化物酶（peroxidase，POD）、過氧化氫酶（catalase，CAT）等保護酶活性[10]，從而提高植物對干旱的抵抗能力。

唐古特白刺（Nitraria tangutorum）為蒺藜科（Zygophyllaceae）白刺屬（Nitraria L.）的一種多年生小灌木，抗逆性強，經(jīng)濟價值高，是我國西北部和北部干旱地區(qū)的主要建群種[11-13]。近年來，國內(nèi)外學者對唐古特白刺的品種選育和鑒定[14]、表型性狀評價和種質(zhì)遺傳多樣性[15]、栽培管理技術(shù)[16]等方面進行了研究，在唐古特白刺抗逆性方面也有涉及，祁迎林綜述了唐古特白刺抗旱性、抗鹽堿性、抗風沙性及開發(fā)價值[17]。杜玉玲研究了外源水楊酸對鹽脅迫下唐古特白刺活性氧（reactive oxygen species，ROS）代謝及抗壞血酸-谷胱甘肽（AsA-GSH）循環(huán)的影響[18]。Yang等研究了鹽對白刺愈傷組織中抗氧化酶的影響[19]。楊穎麗研究了硝普納處理對白刺愈傷組織膜脂過氧化及抗氧化酶活性的影響[20]。但是國內(nèi)外關于COS對干旱下唐古特白刺幼苗生理特性的影響鮮有報道。

本研究采用逐漸干旱[21]的方式，研究不同斷水條件（斷水后11、13、15、17、19 d）下葉面噴施COS對兩年生盆栽唐古特白刺抗旱性的影響，探討外源COS促進植物生長、提高植物干旱適應性的作用機制，以期闡明唐古特白刺抗旱機制，為進一步提高唐古特白刺抗旱性尋找新的途徑和方法。

1材料和方法

1.1試驗材料

供試唐古特白刺（Nitraria tangutorum）為兩年生播種苗，由青海省烏蘭縣農(nóng)場提供，2016年4月定植于花盆（口徑20 cm，高20 cm）中，以等量純凈河沙作為栽培基質(zhì)，每盆1株，用Hoalglands完全營養(yǎng)液澆灌并在溫室（25 ℃）中培養(yǎng)。供試殼寡糖購自上海圻明生物科技有限公司，分子量<3 000，為淺色或微黃色粉末，易溶于水，是以豐富的海洋生物資源（蝦、蟹殼）為原料，通過先進的生物酶降解技術(shù)得到的聚合度低于20的低聚糖，由氨基葡萄糖以β-1，4糖苷鍵連接而成，又稱β-1，4-寡聚-葡萄糖胺或幾丁寡糖。

1.2試驗設計

試驗在河南科技大學農(nóng)場進行，于2016年5月25日澆透水后進行逐漸干旱[21-22]，設置2個處理組：CK組（對照組）和COS處理組，每組處理20盆植株。斷水5 d后，采用整株噴施法連續(xù)3 d噴施蒸餾水（CK）和COS溶液（40 mg/L，該濃度在預試驗下效果最佳），以葉片上下表面滴水為標準[23]，每株噴施量約為20 mL。噴施結(jié)束2 d后開始取樣，每次取3株，取樣時間為09：00—10：00，取葉部位為基徑以上20～50葉，以后每2 d取樣1次，即斷水后11、13、15、17、19 d取唐古特葉片進行相關指標測定，備用葉片置于-80 ℃冰箱內(nèi)保存。

1.3測定指標與方法

1.3.1葉片相對含水量采用飽和含水量法[24]測定葉片相對含水量（relative water content，RWC）。

RWC=[（FW-DW）/（TW-DW）]×100%。

式中：FW為葉片鮮質(zhì)量;TW為吸水24 h后的葉片質(zhì)量;DW為80 ℃下烘干48 h后的葉片質(zhì)量。

1.3.2葉綠素含量采用丙酮法[24]測定葉綠素含量（chlorophyll content）。

1.3.3葉片電解質(zhì)外滲率和丙二醛含量電解質(zhì)外滲率（electrolyte leakage）采用電導儀法，用DD3-307型電導率儀測定;丙二醛（malondialdehyde，MDA）含量采用用硫代巴比妥酸法測定[25]。

1.3.4葉片保護酶活性超氧化物歧化酶活性采用氮藍四唑比法測定;過氧化物酶活性采用愈創(chuàng)木酚氧化法測定，以1 min內(nèi)D470 nm增加0.01為1個酶活性單位（U）;過氧化氫酶活性采用紫外分光光度法測定，以1 min內(nèi)D240 nm減少0.1為1個酶活性單位（U）[25]。

1.3.5葉片滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)采用蒽酮乙酸乙酯法測定可溶性糖含量;采用考馬斯亮藍G250法測定可溶性蛋白含量;采用磺基水楊酸法測定脯氨酸含量[24-25]。

1.4數(shù)據(jù)處理

采用Excel 2010整理數(shù)據(jù)，SPSS 19.0分析軟件進行LSD顯著性檢驗，Origin 2018繪圖。

2結(jié)果與分析

2.1COS對干旱下唐古特白刺葉片相對含水量的影響

隨著斷水時間的延長，唐古特白刺葉片相對含水量逐漸降低。由圖1可知，相同斷水時間內(nèi)，COS處理組葉片相對含水量較CK組分別提高3.11%、14.75%、12.76%、14.01%和17.38%;斷水后第11、13天2處理下葉片相對含水量差異不顯著;斷水后15、17、19 d，COS處理組葉片相對含水量顯著高于同時期CK組，另外，試驗中觀察發(fā)現(xiàn)，斷水后第19天COS處理組唐古特白刺生長正常，而CK組出現(xiàn)萎蔫（葉片含水量46.98%）現(xiàn)象，說明隨著干旱程度的加劇，葉面噴施COS能顯著提高唐古特白刺葉片的保水能力。

2.2COS對干旱下唐古特白刺葉片葉綠素含量的影響

隨著斷水時間的延長，CK組和COS處理組唐古特白刺葉片葉綠素含量均呈先上升后下降趨勢（圖2）。相同斷水時間內(nèi)，COS處理組葉綠素含量均高于CK組，特別在斷水后13、15、17、19 d，COS處理組葉片葉綠素含量比同時期CK組分別顯著提高了21.76%、28.31%、32.94%、45.46%，表明斷水條件下，葉面噴施COS可顯著增加唐古特白刺葉片的葉綠素含量。

2.3COS對干旱下唐古特白刺葉片電解質(zhì)外滲率和MDA含量的影響

隨著斷水時間的延長，COS處理組和CK組唐古特白刺植株葉片的電解質(zhì)外滲率和MDA含量均呈現(xiàn)上升趨勢（圖3）。與CK組相比，斷水后第11和13天，COS處理組唐古特白刺葉片電解質(zhì)外滲率差異不顯著，斷水后15、17和19 d，分別顯著降低了14.20%、20.68%和28.36%（圖3-A）;斷水后第11天，唐古特白刺葉片MDA含量差異不顯著，斷水后13、15、17、19 d，分別顯著降低了21.58%、19.13%、23.76%、25.30%（圖3-B）。說明在干旱下葉面噴施COS能減小唐古特白刺植株葉片電解質(zhì)外滲率，減少細胞膜脂過氧化產(chǎn)物生成量，且在斷水中后期，外源COS對唐古特白刺葉片電解質(zhì)外滲率和MDA含量的影響達到顯著水平。

2.4COS對干旱下唐古特白刺葉片保護酶活性的影響

隨著斷水時間的延長，唐古特白刺葉片SOD、POD、CAT活性均表現(xiàn)為先上升后下降的趨勢（圖4）。與CK組相比，斷水后11和13 d，COS處理組唐古特白刺葉片SOD、CAT活性差異不顯著，斷水后第15、17和19天，SOD活性分別顯著提高了22.85%、41.87%和28.77%（圖4-A），CAT活性分別顯著提高了19.11%、28.50%和24.01%（圖4-C）;斷水后11 d，COS處理組唐古特白刺葉片POD活性差異不顯著，斷水后13、15、17和19 d，分別顯著提高了11.94%、13.51%、24.56%和25.80%（圖4-B）。這說明干旱下噴施COS對唐古特白刺保護酶SOD、POD、CAT活性的影響較為明顯，因此可初步認為，COS與提高唐古特白刺抗旱性和保護酶活性有關，且COS對唐古特白刺葉片SOD、POD、CAT活性的影響均在斷水中后期達到顯著水平。

2.5COS對干旱下唐古特白刺葉片滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的影響

隨著斷水時間的延長，COS處理組唐古特白刺葉片中SS、SP、Pro含量均呈先升高后降低趨勢且均在斷水后第15 d達到最高值（圖5）。與CK組相比，斷水后第11天，COS處理組唐古特白刺葉片的SS、Pro含量差異不顯著，斷水后13、15、17、19 d，SS含量分別顯著提高了20.44%、33.46%、36.85%、27.05%（圖5-A），Pro含量則分別顯著提高了10.55%、17.21%、13.69%和32.34%（圖5-C）;整個斷水期間，COS處理組唐古特白刺葉片的SP含量分別顯著提高了9.66%、17.40%、8.39%、8.19%和23.19%（圖5-B）。以上結(jié)果表明，干旱下葉面噴施外源COS整體上可顯著提高唐古特白刺葉片滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)SS、SP、Pro含量，有效增強植物抵御干旱的能力。

3結(jié)論與討論

我國西北部地區(qū)大多為荒漠或半荒漠，氣候惡劣，干旱頻發(fā)，水分變化是影響該地區(qū)植被生長發(fā)育和分布的關鍵生態(tài)因子[26]。研究表明，植物葉片中的相對含水量隨著干旱脅迫程度增加而逐漸降低[27]，較高的葉片相對含水量可以保持細胞結(jié)構(gòu)，提高葉綠素含量，促進植物進行光合作用[28]。本試驗結(jié)果表明，唐古特白刺植株在干旱條件下，土壤中可利用水分減少，植株葉片相對含水量降低，干旱時間越長，水分虧缺越嚴重，但COS處理組植株葉片相對含水量均高于同時段CK組植株，且在斷水中后期（斷水15 d）達到顯著水平。隨著斷水時間的延長，CK組和COS處理組唐古特白刺葉片葉綠素含量均呈先上升后下降趨勢，可能因為干旱前期植物通過自身調(diào)節(jié)抵御了一定脅迫，但隨著干旱時間的延長，脅迫程度超出了植物自身調(diào)節(jié)的范圍，植物組織水分虧缺，葉綠體結(jié)構(gòu)被破壞，因而葉綠素含量降低。相同斷水時間內(nèi)，COS處理組葉綠素含量整體上顯著高于CK組，這表明干旱條件下，葉面噴施COS可通過維持唐古特白刺葉片較高的相對含水量來保持細胞結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性，顯著增加唐古特白刺葉片的葉綠素含量，從而使植株保持較高水平的光合作用，進而提高植株的保水能力。

逆境條件下，植物葉片電解質(zhì)外滲率和MDA含量可反映植株受自由基毒害的程度[29]。試驗期間隨著斷水時間的延長，唐古特白刺葉片電解質(zhì)外滲率上升，MDA含量增加，表明干旱打破了植物細胞膜內(nèi)外滲透壓的動態(tài)平衡，細胞膜質(zhì)過氧化反應加快，細胞結(jié)構(gòu)破壞嚴重，植物受毒害程度加大。相同斷水時間內(nèi)，COS處理組葉片電解質(zhì)外滲率和MDA含量整體上均顯著低于CK組，表明干旱下外源噴施COS對植物抗旱和維持細胞穩(wěn)態(tài)有一定促進作用[30]，能在一定程度上維持植物細胞內(nèi)外滲透壓平衡，減緩細胞膜質(zhì)過氧化反應，進而降低MDA含量，降低干旱對植物造成的損傷。

植物在長期演化過程中形成了一套有效的酶促清除活性氧系統(tǒng)，正常情況下，植物體內(nèi)的水分含量相對穩(wěn)定，活性氧產(chǎn)生與清除處于動態(tài)平衡狀態(tài)，不會導致細胞結(jié)構(gòu)損傷和代謝紊亂，逆境下，植物可以通過提高體內(nèi)抗氧化酶活性和滲透調(diào)節(jié)相關物質(zhì)的含量[27]，增強對脅迫的抵抗能力[31-33]。本研究中，唐古特白刺葉片SOD、POD和CAT的活性隨著干旱程度的加劇均呈現(xiàn)先升高后降低趨勢，表明在輕度干旱下，唐古特白刺植株可通過自身調(diào)節(jié)提高SOD、POD和CAT的活性來有效清除逐漸增多的活性氧自由基，提高植物適應干旱的能力，但隨著干旱時間延長和脅迫程度的加劇，植物體內(nèi)活性氧積累量超出自身清除范圍，植物受毒害程度加重，細胞結(jié)構(gòu)遭到破壞，SOD、POD和CAT等酶活性逐漸降低，植物受毒害程度加重。植物體內(nèi)的抗氧化酶SOD、POD和CAT具有協(xié)同作用，相同斷水時間內(nèi)，COS處理組葉片SOD、POD和CAT的活性整體上均顯著高于CK組，表明干旱下外源噴施COS可以有效提高植物體內(nèi)抗氧化保護酶活性，從而增強唐古特白刺的抗旱能力。孫君艷等研究也表明外施COS能增強花生幼苗葉片保護酶SOD、POD和CAT的生理活性，延緩干旱對花生幼苗的傷害，從而增強花生早期的抗旱能力[10]。

植物組織中的SS、SP和Pro是植物體內(nèi)重要的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)，植物抵抗外界脅迫的能力與SS、SP和Pro等滲透調(diào)節(jié)相關物質(zhì)的含量密切相關[27]。本研究中，COS處理組和對照組唐古特白刺植株葉片中SS、SP、Pro含量均呈先升高后降低趨勢，說明干旱下植物自身調(diào)節(jié)能力有限[34]，輕度干旱下，植物可通過增加體內(nèi)SS、SP、Pro含量來維持細胞滲透平衡，從而抵御脅迫，但隨著干旱時間的延長，脅迫程度超出植物自身調(diào)節(jié)范圍，細胞膜結(jié)構(gòu)遭到破壞，胞內(nèi)氨基酸、糖類等物質(zhì)外滲，細胞滲透勢改變，細胞內(nèi)環(huán)境不穩(wěn)定，最終導致葉片SS、SP、Pro含量逐漸降低。周艷霞研究COS提高菜心（Brassica campestris L.）品質(zhì)及抗旱性的作用機制，結(jié)果表明，在幼苗時期噴施50 μg/L COS能有效提升菜心品質(zhì)，而且在輕度、中度和重度干旱脅迫下，噴施低濃度殼寡糖能顯著增加SS、SP、Pro含量以及提高CAT、POD、SOD活性，通過抑制MDA產(chǎn)生的方式增強菜心幼苗的抗旱性[35]，與本研究結(jié)果一致。由此可初步認為，外源COS不僅可以提高唐古特白刺植株的抗氧化酶活性，還可以通過增加植物體內(nèi)滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的含量，增強其抵御干旱脅迫的能力。

綜上，干旱下外源噴施40 mg/L COS能顯著提高唐古特白刺葉片的相對含水量、葉綠素含量，顯著提高葉片中抗氧化保護酶SOD、POD和CAT的活性，增強其抗氧化能力，顯著提高滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)SS、SP、Pro含量，增強細胞維持滲透平衡的能力，顯著降低電解質(zhì)外滲率和MDA含量，對清除干旱下唐古特白刺葉片中活性氧自由基、維持細胞滲透勢、提高細胞保水能力有重要促進作用，可有效緩解干旱對植物體的毒害作用。本研究通過生理特性研究闡明了殼寡糖緩解唐古特白刺干旱脅迫的機制，進一步豐富了COS在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)應用中的理論基礎，為提高唐古特白刺抗旱性研究提供了新的途徑和方法，但也存在諸多不足。未來研究將嘗試探尋COS噴施對唐古特白刺植株花期、籽粒產(chǎn)量及籽油品質(zhì)等的影響，以確定不同條件下的最佳噴施劑量，研究唐古特白刺根部對干旱的應答機制，并從基因?qū)用嫜芯客庠碈OS對干旱下唐古特白刺抗旱基因表達的影響。

參考文獻：

[1]趙肖瓊，梁泰帥，趙潤柱. 殼寡糖對PEG脅迫下小麥幼苗生長及抗氧化系統(tǒng)的影響[J]. 中國農(nóng)業(yè)科技導報，2018，20（4）：20-28.

[2]Guan Y J，Hu J，Wang X J，et al. Seed priming with chitosan improves maize germination and seedling growth in relation to physiological changes under low temperature stress[J]. Journal of Zhejiang University-Science B，2009，10（6）：427-433.

[3]張艷艷，劉威，宣亞楠，等. 水楊酸對鹽脅迫下唐古特白刺活性氧代謝和細胞膜透性抑制的緩解效應[J]. 東北林業(yè)大學學報，2013，41（12）：56-59.

[4]張錦春，趙明，張應昌，等. 植物生長劑和固沙劑對民勤沙區(qū)植被生長的影響[J]. 中國水土保持科學，2006，4（1）：35-39.

[5]Khan Bilal Mukhtar Ahmed，Khan M A，Siddiqui H，et al. Chitosan and its oligosaccharides，a promising option for sustainable crop production- a review[J]. Carbohydrate Polymers，2020，227：115331.

[6]Yuan X B，Zheng J P，Jiao S M，et al. A review on the preparation of chitosan oligosaccharides and application to human health，animal husbandry and agricultural production[J]. Carbohydrate Polymers，2019，220：60-70.

[7]阮松林，薛慶中. 殼聚糖包衣對雜交水稻種子發(fā)芽和幼苗耐鹽性的影響[J]. 作物學報，2002，28（6）：803-808.

[8]劉曉霞，鄒成林，李訓碧，等. 殼寡糖對干旱脅迫下甘蔗葉片生理指標的影響[J]. 南方農(nóng)業(yè)學報，2014，45（10）：1759-1763.

[9]李艷，曾秀娥，李洪艷，等. 殼寡糖對干旱脅迫下油菜葉片生理指標的影響[J]. 生態(tài)學雜志，2012，31（12）：3080-3085.

[10]孫君艷，李淑梅，仝勝利. 干旱脅迫下殼寡糖對花生幼苗葉片光合特性及保護酶的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學，2015，43（6）：98-100.

[11]王尚德，康向陽. 唐古特白刺研究現(xiàn)狀與建議[J]. 植物遺傳資源學報，2005，6（2）：231-235.

[12]Ming Z，Ma J B，Bi H T，et al. Characterization and cardioprotective activity of anthocyanins from Nitraria tangutorum Bobr. by-products[J]. Food & Function，2017，8（8）：2771-2782.

[13]Zhao B T，Jing L，Xin C，et al. Purification，structure and anti-oxidation of polysaccharides from the fruit of Nitraria tangutorum Bobr.[J]. RSC Advances，2018，8（21）：11731-11743.

[14]柴文敏，李毅，蘇世平，等. 唐古特白刺（Nitrariatangutorum）抗旱優(yōu)良家系的生理特性[J]. 中國沙漠，2017，37（6）：1158-1170.

[15]唐欣，王瑞輝，楊秀艷，等. 唐古特白刺液泡膜Na+/H+逆向運輸?shù)鞍谆騈tNHX1的克隆與表達分析[J]. 林業(yè)科學，2014，50（3）：38-44.

[16]刁慶發(fā). 唐古特白刺繁殖栽培技術(shù)及保護利用[J]. 中國園藝文摘，2012（8）：130-131.

[17]祁迎林. 唐古特白刺抗逆性及開發(fā)價值[J]. 柴達木開發(fā)研究，2003（5）：48-50.

[18]杜玉玲. 外源水楊酸對鹽脅迫下唐古特白刺ROS代謝及 AsA-GSH循環(huán)的影響[D]. 哈爾濱：東北農(nóng)業(yè)大學，2017.

[19]Yang Y L，Shi R X，Wei X E，et al. Effect of salinity on antioxidant enzymes in calli of the halophyte Nitraria tangutorum Bobr.[J]. Plant Cell Tissue and Organ Culture，2010，102（3）：387-395.

[20]楊穎麗，范慶，魏學玲，等. 硝普納處理對白刺愈傷組織膜脂過氧化及抗氧化酶活性的影響[J]. 植物研究，2009，29（3）：303-307.

[21]Guo L，Guo D L，Yin W L，et al. Tolerance strategies revealed in tree peony （Paeonia suffruticosa; Paeoniaceae） ecotypes differentially adapted to desiccation[J]. Applications in Plant Sciences，2018，6（10）：e01191.

[22]Zhao D Q，Zhang X Y，F(xiàn)ang Z W，et al. Physiological and transcriptomic analysis of tree peony （Paeonia section Moutan DC.） in response to drought stress[J]. Forests，2019，10（2）：135.

[23]彭小琴，惠竹梅，張暉，等. 24-表油菜素內(nèi)酯對農(nóng)藥處理下葡萄葉片光合特性和抗逆性的影響[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究，2015，33（3）：130-138.

[24]張志良，翟偉菁，李小芳. 植物生理學實驗指導[M]. 北京：高等教育出版社，2000：62-123.

[25]李合生，孫群，趙世杰，等. 植物生理生化實驗原理與技術(shù)[M]. 北京：高等教育出版社，2000：105-263.

[26]褚建民. 干旱區(qū)植物的水分選擇性利用研究[D]. 北京：中國林業(yè)科學研究院，2007.

[27]劉世鵬，劉濟明，陳宗禮，等. 模擬干旱脅迫對棗樹幼苗的抗氧化系統(tǒng)和滲透調(diào)節(jié)的影響[J]. 西北植物學報，2006，26（9）：1781-1787.

[28]Colom M R，Vazzana C. Photosynthesis and PSⅡ functionality of drought-resistant and drought-sensitive weeping lovegrass plants[J]. Environmental and Experimental Botany，2003，49（2）：135-144.

[29]Shao H B，Chu L Y，Shao M A，et al. Higher plant antioxidants and redox signaling under environmental stresses[J]. Comptes Rendus Biologies，2008，331（6）：433-441.

[30]Hussain S，Zhang J H，Chu Z，et al. Effects of salt stress on rice growth，development characteristics，and the regulating ways：a review[J]. Journal of Integrative Agriculture，2017，16（11）：2357-2374.

[31]王金緣，婁鈉，徐萌，等. PEG預處理對干旱和鹽復合脅迫下水稻幼苗AsA-GSH循環(huán)的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學，2018，46（7）：51-54.

[32]辛松林，秦文，孫傳紅，等. 腐皮鐮孢霉菌侵染及保鮮劑處理對秋葵相關抗性酶的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學報，2018，34（5）：1161-1168.

[33]陳天，劉云根，王妍，等. 外源磷對砷脅迫下挺水植物抗氧化酶系統(tǒng)的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學報，2019，35（5）：1040-1046.

[34]孫志虎，王慶成. 應用PV技術(shù)對北方4種闊葉樹抗旱性的研究[J]. 林業(yè)科學，2003，29（2）：33-38.

[35]周艷霞. 殼寡糖提高菜心品質(zhì)及抗旱性機理的研究[D]. 南寧：廣西大學，2012.陳碧露，羅素梅，劉小平，等. 不同品種月季的耐熱性鑒定[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學，2020，48（13）：178-180.doi：10.15889/j.issn.1002-1302.2020.13.035