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      破膜劑對(duì)流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)小腸中ILC3頻率的影響*

      2020-12-15 07:34:14張曉敏王培昌
      關(guān)鍵詞:破膜小腸染色

      曹 敏,張曉敏,王培昌,劉 靜

      (首都醫(yī)科大學(xué)宣武醫(yī)院檢驗(yàn)科,北京 100053)

      固有淋巴樣細(xì)胞(ILCs)是最近發(fā)現(xiàn)的一種天然免疫細(xì)胞,ILCs是由造血干細(xì)胞(HSC)分化而來(lái),HSC向ILCs分化的途徑為:長(zhǎng)期造血干細(xì)胞(LT-HSCs)→ 短期造血干細(xì)胞(ST-HSCs)→多能祖細(xì)胞(MPPs)→共同淋系祖細(xì)胞(CLP )→髓樣淋巴祖細(xì)胞(CMP)→ILC前體細(xì)胞(ILCP)→各類ILCs[1]。ILCs主要分為3個(gè)亞群:ILC1亞群(ILC1s)、ILC2亞群(ILC2s)和ILC3亞群(ILC3s)[2]。目前研究認(rèn)為,ILC1s存在于腸道和肝臟中,在病毒感染早期及肝臟損傷中發(fā)揮免疫作用[3-4];ILC2s主要存在與腸道、肺部和血液中,與哮喘、過(guò)敏性皮炎有關(guān)[5-6];ILC3s主要存在于淋巴結(jié)和腸道中,在炎癥性腸病及清除胞內(nèi)寄生菌感染中發(fā)揮免疫作用[7-8]。目前檢測(cè)小腸組織中ILC3頻率的方法主要依靠流式細(xì)胞術(shù)結(jié)合胞內(nèi)染色,但是在染色過(guò)程中諸多因素會(huì)影響檢測(cè)結(jié)果。由于小腸中ILC3含量較少且含有胞內(nèi)抗原,需對(duì)其固定破膜后染色,固定破膜效果如何將成為影響小腸中ILC3檢測(cè)水平的一項(xiàng)重要因素[9]。本研究中,課題組比較不同廠家的破膜試劑(BD公司破膜劑、eBioscience公司破膜劑、聯(lián)科生物公司破膜劑)對(duì)小腸中ILC3檢測(cè)效率的影響,目的在于提高小腸組織中ILC3檢出頻率,為后續(xù)實(shí)驗(yàn)奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1材料

      1.1.1動(dòng)物實(shí)驗(yàn)小鼠 均為無(wú)特定病原體(SPF)級(jí)雌性小鼠(月齡3個(gè)月),體質(zhì)量(20±5)g,購(gòu)自北京華阜康生物科技股份有限公司。

      1.1.2儀器 Gallios流式細(xì)胞儀(美國(guó) Beckman公司),高速冷凍離心機(jī)(美國(guó)Thermo Scientific公司),1 mL注射器、1.5 mL、50 mL離心管(北京蘭博利德商貿(mào)有限公司),200目尼龍紗網(wǎng)、流式細(xì)胞儀試管(美國(guó)BD公司)。

      1.1.3試劑 eBioscience公司Transcription Factor Staining Buffer Set破膜劑(貨號(hào):00-5523-00),BD公司Cytofix/Cytoperm破膜劑(貨號(hào):554714),聯(lián)科生物公司Fix&Perm Kit破膜劑(貨號(hào):70-GAS003)。抗小鼠Lin-405、抗小鼠CD45-FITC、抗小鼠CD127-PECy7、抗小鼠RORγt-APC購(gòu)自eBioscience公司。3.5%水合氯醛、10×磷酸鹽緩沖液(PBS)干粉、Hank′s平衡鹽溶液(HBSS)、5 mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA)、N-2-羥乙基哌嗪-N′-2-乙磺酸(HEPES)、膠原酶、Dnase I購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司,胎牛血清購(gòu)自以色列Biological Industries公司。

      1.2方法

      1.2.1小腸組織單細(xì)胞懸液制備 取月齡3個(gè)月的實(shí)驗(yàn)小鼠,3.5%水合氯醛腹腔注射麻醉后斷頸處死,剪開(kāi)腹部皮膚,暴露腹腔臟器,用手術(shù)剪在胃與十二指腸連接處、回盲腸連接處剪斷,分離全段小腸置于1%冷PBS中,剝除腸系膜并用1%冷PBS沖洗小腸,剪下小腸派爾集合淋巴結(jié)(PP結(jié)),將小腸置于5~10 mL solution Ⅰ(HBSS+5 mmol/L EDTA+10 mmol/L HEPES)中,37 ℃ 100 r/min搖床中消化15~20 min,重復(fù)4~5次,直至小腸組織呈無(wú)色透明狀,棄上清液并收集小腸組織置于solution Ⅱ(HBSS+2%FBS+0.5 mg/mL膠原酶Ⅱ+0.5 mg/mL膠原酶Ⅲ+0.5 mg/mL DNase Ⅰ)中,再次消化,37 ℃ 100 r/min搖床中消化30 min,重復(fù)2~3次,將小腸組織消化液于200目尼龍紗網(wǎng)中過(guò)濾后,將上清液收集于50 mL離心管中[10]。

      1.2.2細(xì)胞染色 將收集的小腸組織單細(xì)胞懸液根據(jù)使用的破膜劑分為3組:eBioscience組(EB組)、BD組、聯(lián)科組(MS組)。每份標(biāo)本中分別加入Lin-405、CD45-FITC、CD127-PECy7進(jìn)行表面染色,冰上避光孵育1 h,3 000 r/min離心1 min,3組標(biāo)本中分別加入不同公司的適量破膜劑,溫度4 ℃,分10、20及60 min 3種不同處理時(shí)間,用配套的破膜洗液洗滌兩遍后,在小腸組織單細(xì)胞懸液標(biāo)本中分別加入RORγt-APC抗體冰上避光染色1 h,染色結(jié)束后分別加入適量配套的破膜洗液洗滌兩遍,2 h內(nèi)上機(jī)檢測(cè)。

      1.2.3樣品檢測(cè)與分析 開(kāi)啟Gallios流式細(xì)胞儀在前向角散射光(FSC)/側(cè)向角散射光(SSC)散點(diǎn)圖中顯示細(xì)胞群,圈出淋巴細(xì)胞群,利用ISO管、單陽(yáng)管調(diào)節(jié)電壓、補(bǔ)償?shù)葏?shù)。在淋巴細(xì)胞群中,圈出Lin-CD45+CD127+RORγt+的ILC3[11],利用FlowJo (version 7.6)軟件分析細(xì)胞群比例。

      2 結(jié) 果

      2.1小鼠小腸ILC3圈門策略 如圖1所示,可見(jiàn)明顯ILC3細(xì)胞群。相同破膜時(shí)間不同組別中小腸ILC3典型圖如圖2所示。將相同破膜時(shí)間不同破膜劑處理的ILC3檢出頻率進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)EB組[(19.66±0.33)%]和BD組[(20.73±0.49)%] Lin-CD45+CD127+RORγt+的ILC3檢出率高于MS組[(10.79±0.25)%],差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),但BD組和EB組小腸組織中ILC3的檢出頻率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),如圖3所示。

      注:A為小腸中淋巴細(xì)胞群分布;B為淋巴細(xì)胞群;C為L(zhǎng)in-細(xì)胞群;D為CD127+RORγt+的ILC3。

      2.2破膜時(shí)間對(duì)檢測(cè)小腸中ILC3頻率的影響 3種破膜劑分別對(duì)小腸ILC3處理不同時(shí)間,結(jié)果表明,對(duì)細(xì)胞處理10 min,破膜效果較差,然而破膜60 min,破膜過(guò)度,小腸ILC3檢出頻率低,細(xì)胞形態(tài)受破壞。當(dāng)細(xì)胞處理20 min時(shí),破膜效果最佳,小腸中ILC3檢出頻率最高。見(jiàn)表1。

      注:A為MS組小腸ILC3頻率;B為EB組小腸ILC3頻率;C為BD組小腸ILC3頻率。

      注:與MS組比較,*P<0.05;“n.s.”表示差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

      表1 破膜時(shí)間對(duì)3組破膜劑檢測(cè)ILC3細(xì)胞頻率的影響

      2.3實(shí)驗(yàn)的可重復(fù)性 在相同實(shí)驗(yàn)條件下,同一份標(biāo)本由不同操作者進(jìn)行,結(jié)果差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),同一份標(biāo)本由同一操作者重復(fù)2遍,CV值均小于5%。

      3 討 論

      隨著流式細(xì)胞技術(shù)的不斷發(fā)展,流式細(xì)胞術(shù)廣泛應(yīng)用于各大實(shí)驗(yàn)室,特別是隨著激光管的不斷增加,熒光素的不斷開(kāi)發(fā),多色流式細(xì)胞儀的應(yīng)用能夠更加快速準(zhǔn)確靈敏地檢測(cè)多個(gè)指標(biāo),例如在檢測(cè)自然殺傷(NK)細(xì)胞和ILC1時(shí),NK細(xì)胞與ILC1均屬于第一類ILC細(xì)胞,且由于ILCs發(fā)現(xiàn)較晚,ILC1常與NK細(xì)胞相混淆,但由于多色流式細(xì)胞技術(shù)的發(fā)展,研究人員發(fā)現(xiàn)在CD3-NKp46+NK1.1+的基礎(chǔ)上,CD49a+CD49b-的細(xì)胞是ILC1,而CD49a-CD49b+的細(xì)胞是NK細(xì)胞[12]。在原有基礎(chǔ)上,增加兩種熒光素,能夠準(zhǔn)確區(qū)分兩種不同細(xì)胞,為后續(xù)實(shí)驗(yàn)奠定了基礎(chǔ)。

      利用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞時(shí),對(duì)于胞內(nèi)抗原染色,細(xì)胞的固定與破膜是否恰當(dāng)將嚴(yán)重影響染色效果,目前常用的破膜劑主要是BD Cytofix/Cytoperm試劑盒、Beckman Coulter試劑盒、eBioscience Fix & Perm試劑盒等,選擇合適的破膜劑,能夠更好地保持細(xì)胞的大小和完整性,增加細(xì)胞膜的通透性。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)應(yīng)用EB公司的破膜劑和BD公司破膜劑能夠更好的檢測(cè)出小腸中ILC3,在多次實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),使用配套的破膜洗液洗滌細(xì)胞后,能夠有效地減少非特異性結(jié)合,并提高染色效率。但延長(zhǎng)破膜時(shí)間并沒(méi)有提高破膜效率,反而由于破膜時(shí)間過(guò)長(zhǎng),細(xì)胞腫脹,可能會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞死亡。對(duì)于低水平表達(dá)的抗原,在做配色時(shí),應(yīng)選擇強(qiáng)熒光集團(tuán),并適當(dāng)增加染色時(shí)間,以提高染色效率,同時(shí)當(dāng)流式標(biāo)本制作完成后,應(yīng)盡快進(jìn)行上機(jī)檢測(cè),減少細(xì)胞死亡,使實(shí)驗(yàn)結(jié)果更加準(zhǔn)確。

      本實(shí)驗(yàn)所研究的ILC3屬于第三類ILCs,ILC3分為NKp46+的ILC3和NKp46-的淋巴樣組織誘導(dǎo)細(xì)胞(LTi)[13],ILC3主要存在于腸道、皮膚黏膜中,受到TCF1、Notch和RUNX1等轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控[14]。ILC3主要存在于小腸固有層,產(chǎn)生IL-22和IL-17等細(xì)胞因子,對(duì)維持腸道免疫功能發(fā)揮重要作用[14]。在利用流式細(xì)胞儀檢測(cè)小腸中ILC3時(shí),由于RORγt屬于胞內(nèi)抗原,且抗原表達(dá)水平較低,本實(shí)驗(yàn)室選擇了熒光素較強(qiáng)的APC做配色[15],同時(shí)選用合適的破膜劑,能夠更好的檢測(cè)小腸內(nèi)ILC3。流式細(xì)胞術(shù)作為一項(xiàng)被廣泛應(yīng)用的實(shí)驗(yàn)技術(shù),在開(kāi)始正式實(shí)驗(yàn)前,應(yīng)仔細(xì)考慮本實(shí)驗(yàn)的配色方案是否合理,并利用少量標(biāo)本進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,調(diào)整實(shí)驗(yàn)方法,最終獲得理想的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

      4 結(jié) 論

      本研究通過(guò)比較不同公司破膜劑對(duì)檢測(cè)小鼠小腸中ILC3頻率的影響,發(fā)現(xiàn)EB公司破膜劑和BD公司破膜劑能提高流式細(xì)胞儀檢測(cè)頻率,同時(shí)驗(yàn)證了增加破膜時(shí)間并不能提高破膜效率。本研究比較了3種不同公司的破膜劑對(duì)檢測(cè)小鼠小腸中ILC3的影響,為后續(xù)實(shí)驗(yàn)奠定了基礎(chǔ)。

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