• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      NTPHGPX基因過(guò)表達(dá)和敲除對(duì)煙草苗期耐鹽性的影響

      2021-01-18 13:35:07郭鵬誠(chéng)楊曉毛輝王學(xué)波申展劉旦楊愛(ài)國(guó)王元英
      中國(guó)煙草科學(xué) 2021年2期
      關(guān)鍵詞:耐鹽性過(guò)氧化物株系

      郭鵬誠(chéng) 楊曉 毛輝 王學(xué)波 申展 劉旦 楊愛(ài)國(guó) 王元英

      摘要:為研究NIPHGPX基因?qū)煵菽望}性的影響,通過(guò)轉(zhuǎn)基因技術(shù)獲得VIPHGPR基因過(guò)表達(dá)和CRISPR/Cast9敲除材料,利用150mmol/LNACI對(duì)轉(zhuǎn)基因材料處理14d,研究鹽處理下轉(zhuǎn)基因材料根長(zhǎng)、GPx酶活性、丙二醛(MDA)和過(guò)氧化氫(H2O2)含量的變化。結(jié)果表明,NIPHGPX基因表達(dá)在鹽脅迫3h后即受到誘導(dǎo);鹽處理顯著抑制了野生型煙草根部的生長(zhǎng),提高了丙二醛和過(guò)氧化氫的積累;鹽脅迫下過(guò)表達(dá)株系的根長(zhǎng)比野生型更長(zhǎng),MDA和HO2含量較低,而基因敲除材料根的生長(zhǎng)則進(jìn)一步受到抑制,GPx酶活性明顯降低,地上部MDA和H2O2的積累顯著高于野生型。綜上所述,過(guò)表達(dá)NIPEGPX基因提高了煙草的耐鹽性,而敲除NIPHGPX3基因則減弱了煙草的耐鹽性,推測(cè)NIPHGPX基因可能通過(guò)影響煙草體內(nèi)活性氧物質(zhì)的清除活性參與植株對(duì)鹽害的脅迫響應(yīng)。

      關(guān)鍵詞:磷脂氫谷胱甘肽過(guò)氧化物酶;耐鹽性;基因功能;煙草

      鹽害是影響植物生長(zhǎng)發(fā)育和產(chǎn)量的重要非生物脅迫叫,尋找植物耐鹽基因能夠幫我們了解植物耐鹽機(jī)理,為耐鹽種質(zhì)資源的發(fā)掘提供參考,也為培育優(yōu)質(zhì)耐鹽品種或改良優(yōu)良品種的耐鹽性提供依據(jù)。鹽脅迫可以改變土壤滲透勢(shì)導(dǎo)致植物吸水困難,過(guò)量的鹽離子還會(huì)對(duì)植物產(chǎn)生離子毒害,使植物無(wú)法維持體內(nèi)離子平衡2。鹽脅迫對(duì)細(xì)胞膜破壞巨大,高濃度的Na*和C會(huì)影響植物對(duì)Ca2+的吸收,細(xì)胞膜上的Ca2被Na取代,使細(xì)胞膜的選擇透過(guò)性變差,營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)外泄,膜脂過(guò)氧化程度提高,有害物質(zhì)積累,植物生長(zhǎng)發(fā)育受損。鹽脅迫使烤煙葉片葉綠體和線粒體嚴(yán)重受損,細(xì)胞核液濃度下降,核內(nèi)異染色質(zhì)化明顯,影響烤煙品質(zhì),與鹽脅迫類似的干旱脅迫造成烤煙葉片活性氧含量增加,葉綠體受到破壞,光合速率降低,植物生長(zhǎng)發(fā)育受到抑制。

      除滲透脅迫外,鹽害還會(huì)造成活性氧物質(zhì)(ROS)在體內(nèi)的積累,對(duì)植物產(chǎn)生氧化脅迫。低濃度的ROS作為信號(hào)分子調(diào)控脅迫相關(guān)基因的表達(dá),但高濃度的ROS會(huì)破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu)。植物受到氧化脅迫后迅速積累多種抗氧化酶來(lái)清除ROS,包括谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GPx)、超氧化物歧化酶SOD)、過(guò)氧化氫酶(CA)、谷胱甘肽還原酶(GR)及抗壞血酸過(guò)氧化物酶(APX)等01。茄科植物中GPx研究較少,DEPEGE等發(fā)現(xiàn)機(jī)摩擦能誘導(dǎo)番茄GPx的表達(dá),并參與ROS的清除,而ALEIARBY等發(fā)現(xiàn)鹽處理抑制了番茄中GPx的mRNA水平。

      相比其他GPx家族成員,PHGPX能特異性清除膜上的磷脂氫過(guò)氧化物,對(duì)于維持細(xì)胞膜的穩(wěn)態(tài)具有重要意義1611。楊曉東等對(duì)蘿卜磷脂氫谷甘肽過(guò)氧化物酶基因(RSPHGPX)進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)其上游調(diào)控序列含有多個(gè)響應(yīng)激素、脅迫、光信號(hào)的元件,RNA印跡分析發(fā)現(xiàn)RSPHGPX受到脫落酸、連續(xù)光照和冷脅迫的調(diào)控。劉賽等2克隆了茶樹(shù)中的CSGPXL基因,其具有PEGPX特有的結(jié)構(gòu)域,過(guò)表達(dá)CSGPX1使煙草抗旱性得到提升。HERBETTE等2在番茄中過(guò)表達(dá)家鼠的GPx5基因類似于植物中的PHGPX)發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因番茄更能抵抗機(jī)械損傷的影響,但易受到生物脅迫。CHEN等2在煙草葉片中瞬時(shí)表達(dá)番茄LEPHGPX,發(fā)現(xiàn)LEPHGPX可保護(hù)煙草葉片免于氧化脅迫和凋亡因子Bax引起的細(xì)胞凋亡。

      目前有關(guān)煙草NTPHGPX的基因功能還鮮有報(bào)道。本研究發(fā)現(xiàn)在鹽處理下NTPHGPR的表達(dá)急劇上升,推測(cè)NTPHIGPX能夠參與煙草抵御鹽脅迫的過(guò)程,進(jìn)一步將該基因從煙草中克隆,利用基因過(guò)表達(dá)及敲除株系研究其在煙草抵抗鹽脅迫響應(yīng)中的作用,為解析NTPHGPX參與煙草響應(yīng)鹽脅迫的分子機(jī)制提供科學(xué)數(shù)據(jù)。

      1材料與方法

      1.1供試材料和處理

      試驗(yàn)于2020年在山東青島中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院煙草研究所進(jìn)行,試驗(yàn)材料為煙草品種凈葉黃,由中國(guó)煙草種質(zhì)資源庫(kù)提供。為了研究NTPEGPX是否受到鹽脅迫的誘導(dǎo),將煙草種子播于營(yíng)養(yǎng)土,待苗長(zhǎng)至4片真葉時(shí),洗去根部雜土,置于150mmol/LNaC溶液處理0、1、3、6、12和24h,取幼苗真葉的最上部完全展開(kāi)葉用于分析NTPHGPX基因在鹽脅迫下的表達(dá)模式,每個(gè)處理取3次重復(fù),每個(gè)重復(fù)取3棵煙株混樣,液氮研磨提取RNA。正常條件下生長(zhǎng)至4片真葉時(shí),分別取煙草根、莖、葉等部位的組織,每個(gè)處理取3次重復(fù),每個(gè)重復(fù)取3棵煙株混樣,液氮研磨提取RNA,用于分析NTPHGPR基因表達(dá)的組織特異性。煙草植株在25℃、光周期為16h光照8h黑暗的培養(yǎng)室中進(jìn)行培養(yǎng)。

      為了研究轉(zhuǎn)基因材料耐鹽性是否發(fā)生改變,將煙草種子經(jīng)消毒后播于MS培養(yǎng)基,瓊脂濃度08%,發(fā)芽后選取生長(zhǎng)一致的幼苗分為兩組,一組移至MS培養(yǎng)基中,另一組移至含有150mmo/LNACI的MS培養(yǎng)基,生長(zhǎng)14d后測(cè)量根長(zhǎng),每個(gè)處理4次重復(fù),取地上部分用于測(cè)定GPx酶活性、MDA和H2O2含量等生理生化指標(biāo),每個(gè)處理3次重復(fù)。

      1.2NTPEGPX基因克隆、載體構(gòu)建及轉(zhuǎn)基因材料的獲得

      參考茄科基因組網(wǎng)站(https://solgenomics.net上收錄的煙草品種K326基因組信息,從K326的DNA中分離克隆磷脂氫谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(序列號(hào):mRNA_136682),命名為NtPHGPX,利用ln-FusionHDCloningKit(Takara公司)將克隆到的基因連接于用ECORI和SalI雙酶切后的表達(dá)載體PRI-eGFP,參照XING等2的方法,使用載體pKSE401構(gòu)建NTPHGPX基因敲除載體,將T-PHGPX-F和T-PHGPX-R稀釋成50umol/L,加入5×DNA寡核苷酸退火緩沖液(碧云天生物技術(shù)公司)退火形成雙鏈DNA,使用BsaI(NEB公司單酶切pKSE401載體,回收酶切產(chǎn)物,利用T4連接酶將靶位點(diǎn)連接到酶切后的pKSE401載體上。將構(gòu)建好的載體轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5,陽(yáng)性克隆進(jìn)行菌落PCR及測(cè)序驗(yàn)證,提取質(zhì)粒采用熱激法轉(zhuǎn)化農(nóng)杄菌感受態(tài)細(xì)胞EHA105。采用葉盤(pán)法轉(zhuǎn)化凈葉黃品種,獲得過(guò)表達(dá)T2代株系及基因敲除位點(diǎn)純合突變體。在靶位點(diǎn)上下游設(shè)計(jì)引物,PCR擴(kuò)增靶位點(diǎn)附近序列,將序列與野生型進(jìn)行比對(duì),靶位點(diǎn)比對(duì)無(wú)差異說(shuō)明未編輯,靶位點(diǎn)是雙峰說(shuō)明是編輯雜合狀態(tài),靶位點(diǎn)純合且有差異表明成功編輯且編輯位點(diǎn)純合。本試驗(yàn)所采用的引物見(jiàn)表1。

      1.3構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)

      在美國(guó)國(guó)家信息中心(National Center for BiotechnologyInformation,NCBI)數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行BLAST檢索,下載擬南芥(arabidopsis thaliana)中已知的GPx蛋白序列,分別為ATGPX1(NP180080.1)、ATGPX2(NP_194915.2)、ATGPX3(NP001189742.1)、ATGPX4(NP_566128.1)ATGPX5(NP191867.1)、ATGPX6(NP192897.2)、ATGPX7(NP_194915.2)、ATGPX8(NP564813.1)、ATPEGPX(OAO9876),馬鈴薯(Solanum tuberosum)中STPHGPX(XP0151687441)栽培番茄(Solanumlycopersicon)中SIPEGPX(XP_004245287.1)、野生番茄(Solanum pennellii)中SPPHGPX(XP_0150846271)、辣椒(Capsicum annuum)中CAPIGPX(XP_016554525.1);使用MEGA5.0軟件對(duì)蛋白序列進(jìn)行多序列比對(duì),并用鄰接法(Neighbor-joining method)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。

      1.4實(shí)時(shí)熒光定量PCR

      取100mg樣品,加入液氮研磨勻漿,使用Trizol法提取植物RNA,用Hiscriptr II Q RT SupermixforQPCR(諾唯贊)反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA。使用Lightcycle96型熒光定量PCR儀(Roche公司)進(jìn)行qRT-PCR,配置20L反應(yīng)體系,其中2Chamq SYBRColor QPCR MasterMix(諾唯贊)10uL、dIHO7.2uL,cDNA2uL、上游引物(10 umoL)和下游引物(10 umol/L)分別0.4uL,NIPHGPR基因表達(dá)量檢測(cè)引物和煙草內(nèi)參基因p-actin檢測(cè)引物序列見(jiàn)表1PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃30s;95℃10s,60℃30s,40個(gè)循環(huán);95℃10,65℃60s,97℃1s。每個(gè)反應(yīng)3次重復(fù)。通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析不同組織、鹽脅迫下以及過(guò)表達(dá)株系葉片中NTPHGPX基因的轉(zhuǎn)錄水平。

      1.5生理生化指標(biāo)測(cè)定

      使用丙二醛(MDA)測(cè)試盒、過(guò)氧化氫(H2O2)測(cè)試盒、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GPx)測(cè)試盒(蘇州科銘生物技術(shù)有限公司),按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行測(cè)定。采用硫代巴比妥酸比色法測(cè)定樣品丙二醛含量2,采用硫酸鈦比色法測(cè)定過(guò)氧化氫含量。GPx酶活性通過(guò)比色法測(cè)定NADPE的減少量確定。

      1.6數(shù)據(jù)分析

      使用SPSS21.0進(jìn)行數(shù)據(jù)的顯著性分析,采用LSD法進(jìn)行多重比較,采用5%的統(tǒng)計(jì)檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)使用GraphpadPrism8.0繪制圖表。

      2結(jié)果

      2.1NTPHIGPX基因克隆和進(jìn)化樹(shù)分析

      參考茄科基因組網(wǎng)站上序列信息設(shè)計(jì)引物,從煙草品種K326的cDNA中進(jìn)行克隆,電泳結(jié)果(圖1)顯示克隆出的片段大小約為585bp,與預(yù)期結(jié)果一致。序列比對(duì)結(jié)果表明,該序列與參考序列完全一致,將其命名為NTPHGPX。該片段編碼195個(gè)氨基酸,推測(cè)蛋白質(zhì)分子量21.7kDa,等電點(diǎn)位971。系統(tǒng)發(fā)生樹(shù)和序列分析結(jié)果表明,VTPHGPR中含有GPx家族的保守結(jié)構(gòu)域,其與馬鈴薯中預(yù)測(cè)為PHGPX蛋白的序列親緣關(guān)系最近,其次為番茄中PHGPX,但與擬南芥中已知的GPx蛋白和PHGPX蛋白親緣關(guān)系較遠(yuǎn),并非同源基因(圖2A,B)。

      2.2NTPHIGPX基因受到鹽脅迫誘導(dǎo)

      圖3A結(jié)果表明,NTPHIGPX基因在根莖葉中都有表達(dá),且在葉中表達(dá)量顯著高于根和莖中,表達(dá)量分別為后兩者的1.66倍和1.74倍。圖3B結(jié)果表明,NtPEGPX基因表達(dá)量明顯受到NaC溶液處理的誘導(dǎo),在處理3h后其表達(dá)量比處理前升高了120.01%;而鹽處理24h后,其表達(dá)量則大幅升高了4倍左右。該試驗(yàn)結(jié)果表明NTPHIGPR基因可能在煙草對(duì)鹽脅迫響應(yīng)中發(fā)揮作用。

      2.3NIPHGPX過(guò)表達(dá)促進(jìn)煙草在鹽脅迫下根的生長(zhǎng)

      利用NTPEIGPX過(guò)表達(dá)T2代株系OX-1

      (Overexpression line1),OX-2(overexpression line2)及基因敲除純合株系Ci進(jìn)行表型鑒定。兩個(gè)過(guò)表達(dá)株系OX-1、OX-2的表達(dá)量分別為野生型的7.21倍和5.52倍(圖4A)。對(duì)CRISPR/Cas9系統(tǒng)編輯材料的突變位點(diǎn)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,結(jié)果顯示基因敲除純合株系Ci在靶位點(diǎn)插入一個(gè)堿基G,造成編碼氨基酸發(fā)生移碼,導(dǎo)致肽鏈提前終止(圖4B)。

      將野生型及轉(zhuǎn)基因材料分別在正常條件和NaCl脅迫下處理(圖4C,D),在不加NaC的MS培養(yǎng)基上,野生型煙草、過(guò)表達(dá)株系OX-1、OX-2、基因敲除株系Cri之間根長(zhǎng)無(wú)顯著差異;在含有150mmol/LNacl的MS培養(yǎng)基上,野生型煙草根的生長(zhǎng)受到明顯抑制,比正常條件下的野生型植株根長(zhǎng)減少28.16%,而兩個(gè)過(guò)表達(dá)株系根的生長(zhǎng)未受到抑制;基因敲除株系Ci在NaCl脅迫下根長(zhǎng)更短,相比正常MS培養(yǎng)基上的C株系減少了46.00%。上述結(jié)果表明,過(guò)表達(dá)NTPEGPX能夠增強(qiáng)煙草對(duì)鹽脅迫的耐性。

      2.4NTPHGPX過(guò)表達(dá)對(duì)鹽脅迫下煙草葉片中GPx酶活性、H2O2和MDA的影響

      圖5結(jié)果顯示,正常條件下,野生型與轉(zhuǎn)基因材料葉片中GPx酶活性無(wú)顯著差異,NaC處理誘導(dǎo)野生型植株葉片中GP酶活性顯著提高,酶活性比正常條件下升高約69.68%;NaC處理同樣導(dǎo)致過(guò)表達(dá)和基因敲除株系中GPx酶活性升高,但在基因敲除株系C中,GPx酶活性升高的幅度較低,顯著低于野生型WT和過(guò)表達(dá)株系OX-2。

      正常條件下,野生型與轉(zhuǎn)基因材料體內(nèi)H2O2含量無(wú)顯著差異,而鹽脅迫下野生型植株葉片內(nèi)H2O2含量大幅增加了70.74%,過(guò)表達(dá)材料葉片內(nèi)H2O2含量也表現(xiàn)為上升的趨勢(shì),但HO2含量顯著低于野生型對(duì)照,并與正常條件下野生型沒(méi)有顯著差異,這表明過(guò)表達(dá)NTPHIGPX基因?qū)η宄}脅迫下H2O2的積累具有一定的作用;基因敲除株系Cri中H2O2積累顯著高于其他材料,相比正常條件下的增加了114.139%(圖6A)。正常條件下,野生型與過(guò)表達(dá)材料間MDA含量差異不顯著,但基因敲除株系Cn的MDA含量顯著高于野生型。鹽脅迫下,野生型植株葉片內(nèi)MDA含量明顯上升,增幅16.20%;過(guò)表達(dá)材料MDA含量無(wú)明顯上升,而基因敲除材料MDA含量增幅較大,加了19、54%,且MDA含量顯著高于野生型和過(guò)表達(dá)材料(圖6B)。試驗(yàn)結(jié)果表明,在鹽脅迫下煙草需要NTPHGPX基因清除過(guò)氧化物,維持細(xì)胞膜的氧化還原平衡。

      3討論

      磷脂氫谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(PHGPX)是生物體內(nèi)一種重要的抗氧化酶,在動(dòng)植物中均有存在。研究表明PHGPX能特異性地還原氧化的磷脂和脂肪酸,而磷脂是細(xì)胞膜的重要組成成分,因此PIGPX對(duì)修復(fù)細(xì)胞膜的氧化損傷具有重要作用2。本研究克隆了一個(gè)煙草中的NtPHGPX基因,發(fā)現(xiàn)其具有GPx家族的保守結(jié)構(gòu)域,系統(tǒng)進(jìn)化分析發(fā)現(xiàn)其與茄科代表作物馬鈴薯、番茄等中的PIGPX親緣關(guān)系較近,而與擬南芥中已知的GPx家族關(guān)系較遠(yuǎn)(圖2),表明NTPHGPR可能是擬南芥中所不具有的一類GPx基因,其功能值得進(jìn)一步研究。有研究表明植物中PHGPX表達(dá)量受到多種脅迫反應(yīng)誘導(dǎo)。WANG等28發(fā)現(xiàn)在鹽生植物鹽爪爪(Kalidium foliatum)中PHGPX基因在不同濃度NaCl處理后表達(dá)水平顯著增加;LI等2從水稻中分離到一個(gè)PHGPX基因,在H1O2和A處理后表達(dá)明顯提高;SUGMOTO等在擬南芥中克隆到個(gè)可能的PEGPX基因,在NaC和AFe處理后表達(dá)量同樣受到誘導(dǎo)。與上述研究結(jié)果一致,本研究發(fā)現(xiàn)在煙草中NTPHGPX在鹽脅迫的誘導(dǎo)下表達(dá)量明顯提高(圖3B),說(shuō)明PHGPX可能參與植物對(duì)不同逆境脅迫的響應(yīng)。進(jìn)一步研究表明,過(guò)表達(dá)NTPHGPR能夠促進(jìn)煙草幼苗在鹽脅迫培養(yǎng)基上根的生長(zhǎng),而NTPHGPX敲除株系根的生長(zhǎng)則對(duì)鹽脅迫更敏感(圖4C,D),這暗示了NTPHGPR可能在煙草抵御鹽脅迫中起正向調(diào)控作用。

      植物在遭受逆境脅迫時(shí)往往會(huì)產(chǎn)生大量的活性氧物質(zhì),過(guò)量的活性氧會(huì)破壞膜結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性和完整性,對(duì)細(xì)胞造成損害。植物能夠通過(guò)包括GPx在內(nèi)的多種酶促反應(yīng)系統(tǒng)清除體內(nèi)過(guò)量的活性氧,維持細(xì)胞內(nèi)的氧化還原穩(wěn)態(tài)。作為GPx家族成員,PHGPX對(duì)逆境脅迫的影響可能與其活性氧物質(zhì)清除能力相關(guān)。本研究中總GPx酶活性在過(guò)表達(dá)株系與野生型材料中均受到鹽脅迫的顯著誘導(dǎo),但二者之間沒(méi)有顯著性差異(圖5),這可能是由于煙草體內(nèi)含有多種GPx同工酶,過(guò)表達(dá)一種VTPHGPX對(duì)煙草體內(nèi)GPx酶總活性的影響有限。更為重要的是鹽脅迫下敲除株系中GPx酶活性顯著低于野生型,與之相對(duì)應(yīng)的,鹽脅迫處理下NTPHIGPX基因敲除株系中H2O2和MDA的含量則顯著高于野生型(圖6)。與本研究結(jié)果類似,胡楊中PEGPX基因過(guò)表達(dá)后在鹽脅迫培養(yǎng)基上也表現(xiàn)為根長(zhǎng)更長(zhǎng)且GPx酶活顯著高于野生型,這表明NTPHGPX在鹽脅迫下植物清除活性氧物質(zhì)的過(guò)程中起到重要的作用。與此同時(shí),還有研究表明水稻中OSPHGPR過(guò)表達(dá)可提高水稻抵御百草枯氧化傷害的能力3,茶樹(shù)中CSGPX1(屬于PHGPX)基因的過(guò)表達(dá)可提高體內(nèi)GPx酶活性,從而增加茶樹(shù)的耐旱性2,而原核表達(dá)蘿卜RSPHGPX和谷胱甘肽共同作用可以減少小鼠NH3T3細(xì)胞氧化損傷3,這些研究表明PHGPX可能與植物抵御鹽害、干旱、除草劑等逆境引起的氧化脅迫均有關(guān),但其參與的鹽脅迫響應(yīng)途徑是如何被上游基因調(diào)控等科學(xué)問(wèn)題仍需更加深入的研究。

      4結(jié)論

      本研究首次從煙草中克隆了一個(gè)磷脂氫谷胱甘肽過(guò)氧化物酶基因NTPEGPX,發(fā)現(xiàn)其表達(dá)受鹽脅迫誘導(dǎo)。在鹽脅迫下,煙草NTPEGPX過(guò)表達(dá)株系根長(zhǎng)顯著長(zhǎng)于野生型,MDA和H2O2積累較野生型低;而敲除株系根長(zhǎng)顯著短于野生型,MDA和H2O積累較野生型顯著升高。研究結(jié)果表明,NIPEGPX可能通過(guò)清除活性氧積累造成的過(guò)量脂質(zhì)過(guò)氧化物,從而維持植物體內(nèi)膜的氧化還原平衡,進(jìn)而增強(qiáng)煙草的耐鹽性。本研究初步揭示了NTPHGPX的耐鹽功能,為培育和改良優(yōu)質(zhì)高產(chǎn)耐鹽煙草新品種提供一定理論基礎(chǔ),但其參與的鹽脅迫響應(yīng)途徑是如何被上游基因調(diào)控等仍需更加深入的研究。

      參考文獻(xiàn)

      [1] GUAN C, LI X, TIAN D, et al. Adp-ribosylation factors improve biomass yield and salinity tolerance in transgenic switchgrass (Panicum virgatum L.)[J]. Plant Cell Reports, 2020, 39(12)1623-1638

      [2]王佺珍,劉情,高婭妮,等植物對(duì)鹽堿脅迫的響應(yīng)機(jī)制究進(jìn)展生態(tài)學(xué)報(bào),2017,37(16):5565-57

      [3] PARIDA A K, DAS A B. Salt tolerance and salinity effects on plants a review[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2005, 60(3)324-349

      [4] CHEN D, YIN L, DENG X, et al. Silicon increases salt tolerance b influencing the two-phase growth response to salinity in wheat (Triticum aestivum L.)[J]. Acta Physiologiae Plantarum, 2014, 36(9)2531-2535

      [5]楊莎,侯林琳,郭峰,等.鹽脅迫下外源Ca2對(duì)花生生長(zhǎng)發(fā)育、生理及產(chǎn)量的影響應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2017,28(3):894-900

      [6]曹巖坡,代鵬,戴素英.鹽脅迫對(duì)蘆筍幼苗生長(zhǎng)和體內(nèi)Na,K,Ca2+分布的影響.西南大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2014,36(10):31-36.

      [7]王程棟,王樹(shù)聲,胡慶輝,等NaC脅迫對(duì)烤煙葉肉細(xì)胞超結(jié)構(gòu)的影響中國(guó)煙草科學(xué),2012,33(2):57-61

      [8]王發(fā)展,金伊楠,李子瑋,等.干旱脅迫下外源ALA對(duì)烤煙幼苗光合特性和抗氧化能力的影啊.中國(guó)煙草科學(xué),2020,41(1)

      [9] MILLER G, SUZUKI N, CIFTCI-YILMAZ S, et al. Reactive oxygen species homeostasis and signalling during drought and salinity stresses [J]. Plant Cell and Environment, 2010, 33(4): 453-467

      [10] ARBONA V, MANZI M, de OLLAS C, et al. Metabolomics as a too to investigate abiotic stress tolerance in plants. International Journal of Molecular Sciences, 2013, 14(3): 4885-4911

      [11] GONG B, WEN D, VANDENLANGENHERG K, et al. Comparative effects of Nacl and NAHCO3 stress on photosynthetic parameters nutrient metabolism, and the antioxidant system in tomato leaves Scientia Horticulturae. 2013. 157: 1-12

      [12]薛鑫,張,吳金霞.植物體內(nèi)活性氧的研究及其在植物抗逆方面的應(yīng)用.生物技術(shù)通報(bào),2013(10):6-1

      [13] AHANGER M A, TOMAR N S, TITTAL M, et al. Plant growth under water/salt stress: ROS production: antioxidants and significance of added potassium under such conditions [J]. Physiology and Molecular Biology of Plants, 2017, 23(4): 731-744

      [14] DEPEGE N, VARENNE M, BOYER N Induction of oxidative stress and Gpx-like protein activation in tomato plants after mechanica stimulation [J]. Physiologia Plantarum, 2000, 110(2): 209-214

      [15] ALHARBY H F, METWALI E M R FULLER M P, et al. The alteration of MRNA expression of SOD and GPX genes, and proteins in tomato(Lycopersicon esculent im Mill)under stress of NACI and/or Zno nanoparticles [J]. Saudi Journal of Biological Sciences, 201623(6):773-781

      [16] AVERY A M, AVERY S V. Saccharomyces cerevisiae expresses three phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidases [J]. Journal of Biological Chemistry, 2001, 276(36): 33730-33735

      [17]李文君,劉進(jìn)元,趙南明.苦瓜谷胱甘肽磷脂氫過(guò)氧化物酶CDNA

      的克隆及其特征分析.生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,2001(6)908-911

      [18]雷明光,張舒,張冰,等.谷胱甘肽磷脂氫過(guò)氧化物酶研究進(jìn)展生物學(xué)通報(bào),2005(5)

      [19]楊曉東,劉進(jìn)元.蘿卜磷脂氫谷胱甘肽過(guò)氧化物酶基因結(jié)構(gòu)及其調(diào)控序列分析(英文)生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,2005(7)

      649-656

      [20]劉賽,劉碩謙,龍金花,等,茶樹(shù)谷胱甘肽過(guò)氧化物酶編碼基因CSGPXI功能分析.茶葉科學(xué),2019,39(4):382-391

      [21] HERBETTE S, de LABROUHE D T, DREVET J R, et al. Transgenic tomatoes showing higher glutathione peroxydase antioxidant activity are more resistant to an abiotic stress but more susceptible to biotic stresses [J]. Plant Science, 2011, 180(3): 548-553

      [22] CHEN S R, VAGHCHHIPAWALA Z, LI W, et al. Tomato phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase inhibits cell death induced by Bax and oxidative stresses in yeast and plants[J]. Plant Physiology,2004,135(3):1630-1641

      [23] XING H, DONG L, WANG Z, et al. A CRISPR/Cas9 toolkit for multiplex genome editing in plants [J]. BMC Plant Biology, 2014, 14

      [24] CUSTODIO-MENDOZA JA, VALENTE IM, RAMOS R M, et al Analysis of free malondialdehyde in edible oils using gas-diffusion microextraction [J]. Journal of Food Composition and Analysis, 201982:103254

      [25]劉小為,陳忠林,沈吉敏,等.硫酸鈦光度法測(cè)定OHO2體系中低濃度HO2中國(guó)給水排水,2010,26(16):126-129

      [26]喬新榮,張繼英.植物谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GP)研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報(bào),2016,32(9):7-13

      [27] IMAI H, NAKAGAWA Y. Biological significance of phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase (PHGPX, GPX4)in mammalian cells JI. Free Radical Biology and Medicine, 2003, 34(2): 145-169

      [28] WANG Z G, ZHANG PX, SHAO Y T, et al. Molecular cloning and the expression pattern of a phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase in Kalidium foliatum under Nacl treatment. Russian Journal of Plant Physiology, 2020, 67(4): 750-757

      [29] LI W J, FENG H, FAN J H, et al. Molecular cloning and expression of a phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase homolog in Oryza sativa [J]. Biochim Biophys Acta, 2000, 1493(1): 225-230

      [30] SUGIMOTO M, SAKAMOTO W. Putative phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase gene from Arabidopsis thaliana induced by oxidative stress [J]. Genes Genetic Systems, 1997, 72(5311-316

      [31]烏鳳章.三個(gè)越橘品種對(duì)鹽脅迫的生長(zhǎng)和生理響應(yīng)及耐鹽性差異.植物生理學(xué)報(bào),2019,55(1):1638-1646

      [32] GILL S S, TUTEJA N. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiology and Biochemistry, 2010, 48(12): 909-930

      [33]王非,丁明全,鄧澍榮,等.胡楊谷胱甘肽過(guò)氧化物酶PEGPX基因的克隆及轉(zhuǎn)化植株耐鹽性分析.基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué)2012,31(3):231-239

      [34]宋建輝,李甜,吳秀云,等.OSPHGPX基因的過(guò)量表達(dá)增強(qiáng)水稻抗氧化能力.生物技術(shù)通報(bào),2014(11):107-11

      [35]劉冠蘭,李甜,劉進(jìn)元,等,原核表達(dá)的蘿トPHGPX和谷甘肽對(duì)NIH3T3細(xì)胞氧化損傷的聯(lián)合保護(hù)作用.中國(guó)生物工程雜志,2010,30(9):13-18

      猜你喜歡
      耐鹽性過(guò)氧化物株系
      銀納米團(tuán)簇的過(guò)氧化物模擬酶性質(zhì)及應(yīng)用
      Co3O4納米酶的制備及其類過(guò)氧化物酶活性
      過(guò)表達(dá)NtMYB4a基因增強(qiáng)煙草抗旱能力
      郁金香耐鹽性鑒定方法研究
      嫦娥5號(hào)返回式試驗(yàn)衛(wèi)星小麥育種材料研究進(jìn)展情況
      源于大麥小孢子突變體的苗期耐鹽性研究
      三個(gè)大豆品種萌發(fā)期和苗期的耐鹽性比較
      過(guò)氧化物交聯(lián)改性PE—HD/EVA防水材料的研究
      衢州椪柑變異株系—黃皮椪柑相關(guān)特性研究
      浙江柑橘(2016年1期)2016-03-11 20:12:31
      提高有機(jī)過(guò)氧化物熱穩(wěn)定性的方法
      安仁县| 杭州市| 靖边县| 扶沟县| 临汾市| 黑山县| 韶山市| 井研县| 陇川县| 囊谦县| 永和县| 大余县| 台安县| 宁波市| 曲阜市| 凤山县| 麻江县| 辰溪县| 崇义县| 天台县| 乐清市| 广平县| 长子县| 中卫市| 石阡县| 赤壁市| 依安县| 车致| 忻城县| 赣榆县| 连南| 安化县| 绥江县| 新安县| 东丽区| 博罗县| 萝北县| 德昌县| 宁河县| 西平县| 柳江县|